留言板

尊敬的读者、作者、审稿人, 关于本刊的投稿、审稿、编辑和出版的任何问题, 您可以本页添加留言。我们将尽快给您答复。谢谢您的支持!

姓名
邮箱
手机号码
标题
留言内容
验证码

趋化因子受体CX3CR1基因T280M多态性在云南彝族人群中的分布

陈志彬 莫艳萍 杨钰 陈灿昆 杨靖宜 万瑞雪 范志祥 龙莉

冯大莺, 陈华英, 潘虹英, 杨芝兰, 晏姗, 周莉. 血浆proBDNF水平与原发性干燥综合征伴抑郁症状的相关性研究[J]. 昆明医科大学学报, 2023, 44(6): 54-58. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20230605
引用本文: 陈志彬, 莫艳萍, 杨钰, 陈灿昆, 杨靖宜, 万瑞雪, 范志祥, 龙莉. 趋化因子受体CX3CR1基因T280M多态性在云南彝族人群中的分布[J]. 昆明医科大学学报, 2017, 38(08): 35-39.
Daying FENG, Huaying CHEN, Hongying PAN, Zhilan YANG, Shan YAN, Li ZHOU. Correlation between Plasma proBDNF Level and Primary Sjögren’s Syndrome with Depressive Symptoms[J]. Journal of Kunming Medical University, 2023, 44(6): 54-58. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20230605
Citation: Chen Zhi Bin , Mo Yan Ping , Yang Yu , Chen Can Kun , Yang Jing Yi , Wan Rui Xue , Fan Zhi Xiang , Long Li . 趋化因子受体CX3CR1基因T280M多态性在云南彝族人群中的分布[J]. Journal of Kunming Medical University, 2017, 38(08): 35-39.

趋化因子受体CX3CR1基因T280M多态性在云南彝族人群中的分布

基金项目: 

基金: 国家自然科学基金资助项目 (81160164); 云南省自然科学基金资助项目 (2008CD117); 昆明医科大学大学生创新性实验计划基金资助项目 (昆医大〔2017〕2号);

趋化因子受体CX3CR1基因T280M多态性在云南彝族人群中的分布

Funds: 

基金: 国家自然科学基金资助项目 (81160164); 云南省自然科学基金资助项目 (2008CD117); 昆明医科大学大学生创新性实验计划基金资助项目 (昆医大〔2017〕2号);

  • 摘要:

    目的 研究云南省晋宁县彝族人群CX3CR1基因T280M多态性分布的情况, 为探讨CX3CR1基因相关性疾病的发病机制奠定基础.方法 采用PCR-RFLP技术对居住在云南省晋宁县268例彝族健康个体的CX3CR1基因T280M多态性进行分析, 计算MM、MT、TT基因型频率和M、T等位基因频率, 与其他人群该位点多态性进行比较.结果 云南省晋宁县彝族CX3CR1基因的MM、MT、TT基因型频率分别为1.12%、11.94%和86.94%, M和T等位基因频率分别为7.09%和92.91%.与汉族、维吾尔族、希腊、法国、塞尔维亚、印度、意大利和高加索人群比较, 无论是基因型分布还是基因频率差异有统计学意义 (P<0.05) p="">0.05) .结论 CX3CR1基因T280M多态性分布存在民族、种族差异, 且种族间的差异大于民族间的差异.

  • 原发性干燥综合征(primary sjögren’s syndrome,pSS)是一种复杂的异质性自身免疫性疾病,主要累及女性。而抑郁是pSS的常见合并症,可能加重病情,影响患者生活质量[1]。多个研究发现,pSS可合并焦虑、抑郁障碍,且焦虑、抑郁的发病率高于类风湿关节炎患者[2-5]

    脑源性神经营养因子(brain-derived neurotrophic factor,BDNF)属于神经营养蛋白家族,在中枢神经系统(central nervous system,CNS)和免疫系统(如单核细胞和B细胞)中均有表达[6-7]。BDNF首先以pre-proBDNF的形式存在,然后裂解为BDNF前体蛋白(proBDNF)。proBDNF在细胞内的弗林蛋白酶、转化酶 PCSK6 和 PC5-6B或细胞外的组织纤溶酶原激活物(Tissue Plasminogen Activator,tPA)、基质金属蛋白酶蛋白水解酶作用下形成BDNF成熟体蛋白(mature BDNF,mBDNF)。已有研究提示,proBDNF信号通路在免疫介导的炎症性疾病发病机制中也发挥重要作用[8-9]。我们之前的研究表明,血清proBDNF水平升高或mBDNF/proBDNF比值降低可能是抑郁症的标志物[10]。而proBDNF在pSS伴随抑郁症状的患者中发挥的作用研究不多,本研究就pSS患者血浆BDNF水平与抑郁症状的关系进行探讨。

    本研究经昆明医科大学第一附属医院伦理委员会审批通过,招募了2022年1月至12月收住昆明医科大学第一附属医院风湿科(门诊和住院)、符合 2016 年美国风湿病协会pSS分类诊断标准[11],且年龄在20~69岁的患者作为研究对象。排除当前或既往有甲状腺功能障碍、感染、慢性肝病、肾功能不全、代谢性骨病、严重心脑血管疾病和精神病史的患者,以尽量减少其对心理社会变量的潜在混杂效应。同一时期年龄、性别与病例组相匹配的健康体检者作为对照组,招募同时排除患有急性疾病并使用抗抑郁药物的患者和健康受试者。干燥综合征组治疗主要为糖皮质激素和羟氯喹。

    获得病人的知情同意后,采用自制的人口学问卷及抑郁症筛查量表(PHQ-9)、简易应对方式问卷(SCSQ)、社会支持评定量表(SSRS)进行调查和评分,欧洲抗风湿病联盟干燥综合征疾病活动指数量表(EULARSS disease activity index,ESSDAI)评估pSS疾病活动度。并检测及比较所有研究对象外周血proBDNF水平;检测并比较pSS伴或不伴抑郁症状患者球蛋白、IgG、IgA、IgM、C3、C4、ESR、CRP实验室指标及心理状态。

    1.2.1   病活动指数(ESSDAI)评分

    根据ESSDAI评分对SS疾病活动度进行全面评估,评分越高,表示疾病活动度越高。

    1.2.2   抑郁评分调查

    PHQ-9的总分范围为0~27,0~4分无抑郁症状,5~9分为轻度,10~14分为中度,15分以上为重度,本研究中以5分判断为具有抑郁症状,将总pSS组分为无抑郁症状组(pSS组)和伴随抑郁症状组(pSS-D组)。

    1.2.3   应对方式调查

    简易应对方式问卷(SCSQ)是国内测量应对方式的重要工具之一,共20个条目,包括积极应对和消极应对两个维度,积极应对维度由条目1~12组成,重点反映了积极应对的特点,消极应对维度由条目13~20组成,重点反映了消极应对的特点。采用0~3 4级评分,积极应对评分越高,表明被调查者越倾向于采用积极的应对方式;消极应对评分越高,表明被调查者越倾向于采用消极的应对方式。

    1.2.4   社会支持调查

    通过社会支持评定量表(SSRS)评 价,共包含3个维度(10个条目):客观支持(3 个条目)、主观支持(4 个条目)和对社会支持利用度(3个条目)。总分≤22 分数属于低水平,23~44 分属于中等水平,45~66 分属于高水平。

    在知情同意的前提下,于早晨空腹时用非抗凝负压采血管抽取外周静脉血约 2~5 mL,分离血浆并储存在-80 ℃下备用。血浆中proBDNF水平的检测根据(R&D Systems,Minneapolis,MN,USA)制造商的说明书通过ELISA进行。同时测量其他实验室数据,包括球蛋白、IgM、IgA、IgG、血沉(ESR)、C反应蛋白(CRP)和补体(C3、C4)水平。

    采用SPSS20.0统计学软件处理数据,符合正态分布($\bar x \pm s $)且方差齐的定量资料采用单因素方差分析,定性资料(%)采用χ2检验;不符合正态分布者以MP25P75)表示,统计采用非参数秩和检验,比较有差异后采用Logistic回归分析进行多因素分析,探讨抑郁症状的危险因素,相关性分析采用Spearman相关分析,P < 0.05为差异有统计学意义(双侧)。

    最终纳入pSS患者42例,以PHQ-9≥5分判断为具有抑郁症状,将42例pSS患者分为无抑郁症状组(pSS组,n = 12)和伴随抑郁症状组(pSS-D组,n = 30);与之匹配的对照组81例。3组一般人口学资料的比较差异无统计学意义(P > 0.05,定量资料采用Fisher精确检验)。3组在PHQ-9评分中差异有统计学意义,两两比较结果显示,对照组与pSS组PHQ-9得分差异无统计学意义(P = 0.088), pSS-D组与对照组及pSS组PHQ-9得分差异均有统计学意义(P = 0.001),见表1

    表  1  对照组、pSS组和pSS-D组一般人口学资料的比较[n(%)/M(P25,P75)/($ \bar x \pm s$)]
    Table  1.  Comparison of the demographic data among control group,pSS group and pSS-D group [n(%),M(P25,P75),($ \bar x \pm s$)]
    项目对照组pSS组pSS-D组χ2/t/FP
    n = 81)n = 12)n = 30)
    性别
     男
     女

    3(3.7)
    78(96.3)

    0(0)
    12(100)

    2(6.7)
    28(93.3)
    0.868
    0.769

    年龄 43.72 ± 9.26 45.50 ± 10.05 47.57 ± 10.51 1.776 0.174
    PHQ-9 2.30 ± 0.84 3.08 ± 1.08 7.90 ± 2.06a 216.047 0.001*
    病程(月) 42(2.25,60.00) 24(10.50,72.00) 185.500 0.878
    ESDAI评分 2(2.00,3.00) 2(2.00,3.00) 144.500 0.271
      pSS-D组与对照组及pSS组PHQ-9得分差异均有统计学意义,*P < 0.05。
    下载: 导出CSV 
    | 显示表格

    ELISA结果显示,对照组、pSS组与pSS-D组血浆proBDNF水平分别为480(285.65,702.54)pg/mL、596.92(444.40,988.37) pg/mL和541.09(384.51,1069.77) pg/mL。Kruskal-Wallis检验结果为:H = 6.622,P = 0.036,按照α = 0.05的检验标准,可以认为3组血浆proBDNF水平有差别。经过两两比较,对照组与pSS-D组之间患者血浆proBDNF水平差异有统计学意义(调整后P = 0.035),见图1

    图  1  对照组、pSS组和pSS-D组之间血浆proBDNF水平的比较
    Figure  1.  Comparison of plasma proBDNF levels among control,pSS and pSS-D groups
    *P < 0.05。

    2组在球蛋白、IgG、IgA、IgM、C3、C4、ESR及CRP检测指标的比较差异无统计学意义(P > 0.05),见表2

    表  2  pSS组和pSS-D组实验室指标的比较[($\bar x \pm s $),g/L]
    Table  2.  Comparison of laboratory indicators between pSS and pSS-D groups [($\bar x \pm s $),g/L]
    项目pSS组pSS-D组tP
    球蛋白 36.54 ± 2.82 36.86 ± 1.54 −0.107 0.916
    IgG 19.60 ± 1.94 19.72 ± 1.04 −0.060 0.952
    IgA 2.55 ± 0.36 2.64 ± 0.35 −0.161 0.873
    IgM 1.37 ± 0.24 1.44 ± 0.16 −0.239 0.812
    C3 1.01 ± 0.06 1.05 ± 0.04 −0.499 0.621
    C4 0.19 ± 0.02 0.23 ± 0.02 −1.169 0.250
    ESR(mmH2O/h) 26.08 ± 6.70 32.07 ± 4.90 −0.677 0.503
    CRP(mg/L) 4.27 ± 1.44 3.00 ± 0.55 1.010 0.319
    下载: 导出CSV 
    | 显示表格

    pSS组和pSS-D组在SSRS总分及客观支持维度之间差异有统计学意义(P < 0.05),见表3

    表  3  pSS组和pSS-D组在SCSQ 、SSRS总分及SSRS3个维度得分间的比较($\bar x \pm s $
    Table  3.  Comparison of SCSQ,SSRS total score and SSRS scores between pSS and pSS-D groups ($\bar x \pm s $
    项目pSS组(n = 12)pSS-D组(n = 30)tP
    SCSQ 10.916 ± 5.248 9.067 ± 4.989 1.070 0.291
    SSRS总分 45.09 ± 9.137 37.39 ± 8.135 2.614 0.013*
    主观支持 10.45 ± 4.156 9.29 ± 3.133 0.971 0.338
    客观支持 25.82 ± 3.816 21.45 ± 6.115 2.745 0.010*
    对社会支持
    利用度
    7.73 ± 2.970 7.68 ± 2.286 0.057 0.995
      *P < 0.05。
    下载: 导出CSV 
    | 显示表格

    表3中pSS组和pSS-D组之间比较存在统计学意义的SSRS量表总分、客观支持维度及关注的变量血浆proBDNF浓度纳入Logistic回归,以评估对pSS是否伴随抑郁症状的影响。得到的Logistic模型具有统计学意义(χ2 = 14.338,P = 0.006),该模型能够正确分类81.0%的研究对象。最终,模型仅纳入SSRS量表总分(OR = 0.693,95%CI 0.494,0.972)。

    免疫系统和神经系统之间存在着密切的相互作用。研究表明,神经营养因子参与了炎症反应,包括炎症和自身免疫性疾病中免疫功能的调节和调控[12]

    PSS是一种全身性自身免疫性疾病,自身反应性B细胞活化是pSS的标志之一[13]。活化的人类T细胞和B细胞在体外产生功能性BDNF[12]。Lapchak等[14]通过在腹腔内注射IL-1β,发现可显著降低大鼠海马中BDNF mRNA的表达水平。Hu等[15]还发现proBDNF-p75NTR信号传导在多发性硬化(MS)患者和实验性自身免疫性脑脊髓炎(EAE)小鼠模型的淋巴细胞中表达上调,且抗proBDNF的单克隆抗体(McAb-proBDNF)可减轻临床评分、限制脱髓鞘并抑制EAE小鼠的促炎细胞因子的释放。ProBDNF可通过促进促炎细胞因子的过度表达(如IL-6,IFN-α、TNF-α等),使得与抗炎细胞因子(IL-4、TGF-β等)的比例失衡。但本研究中却发现无抑郁症状的pSS患者与对照组比较,血浆proBDNF虽有升高,但未达到统计学意义,与既往研究有不同[15-16]。其可能的原因是本次入组的pSS患者病情较轻,均未处于疾病的活动期,故血浆中proBNDF的水平较正常人升高不明显。且入组的pSS患者例数较少,检验效力不足,应在更大的样本中进行检验。

    其次,笔者还发现伴随抑郁症状的pSS-D患者与对照组及无抑郁症状的pSS患者比较,血浆proBDNF水平升高得最为明显。PSS患者的特征是慢性炎症,这与促炎细胞因子分泌增加有关[17]。这些促炎细胞因子可能会导致抑郁和焦虑的发生[5, 18],这可以解释我们的发现。ProBDNF不仅可以通过促进促炎症因子的释放加重pSS,亦促进了抑郁症状的发生。Liu等[19]发现,黄芩苷可以通过增加LPS处理后小鼠海马中mBDNF的水平,并提高了mBDNF/proBDNF的比率,到达抑制神经炎症和外周免疫反应引起的炎症来减轻LPS诱导的抑郁样行为。因此,是否可以通过抑制proBDNF的表达来缓解pSS伴随的抑郁症状是今后研究的重点问题。

    本次研究发现,pSS-D患者与pSS患者相比,血浆proBDNF虽有升高,但未达到统计学意义。笔者的前期研究发现,proBDNF的水平与抑郁的严重程度成正比[10],但在本次的研究中却未得出该结果。分析原因可能有3点:(1)本次入组的pSS患者均未处于疾病的活动期(ESDAI评分均较低,有、无伴随抑郁症状2组的病程及实验室指标无差异),治疗药物糖皮质激素、羟氯喹均为低剂量,故对躯体情况及生活质量的影响不严重;(2)pSS-D患者抑郁的程度较轻(PHQ-9的评分为轻-中度),情绪对工作、生活的影响不明显;(3)与入组研究对象例数较少,故各量表的评分未完全反映患者的真实情况。故今后的研究还应扩大样本量,并纳入不同疾病严重程度的病例,以扩大检验效力。

    PSS患者多为40岁以上的中年女性,易受经济状况、家庭负担及自身激素水平等多因素的影响,加剧了患者焦虑抑郁情绪的进展。杨敏等[20]在研究中指出,负性生活事件值、社会关心、家庭关心素与pSS患者抑郁状态的发生有关,笔者回归分析的结果与该研究一致。对pSS患者的应对方式和社会支持进行评估后发现,较少的社会支持是pSS伴随抑郁症状的危险因子。故对于pSS患者,尤其是女性患者,家属及社会对患者的关心、支持可以减少出现抑郁症状的发生。

    综上所述,proBDNF促进了pSS伴随抑郁症状的发生,靶向BDNF及其信号通路可能是一种新的治疗pSS伴随抑郁症状的策略,且pSS患者合并抑郁症状时需要更多的社会支持。

  • [1] [1]IMAI T, HIESHIMA K, HASKELL C, et al.Identification and molecular charact-erization of fractalkine receptor CX3CR1, which mediates both leukocyte mi-gration and adhesion[J].Bioscience Biotechnology&Biochemistry, 1997, 91 (4) :521-530.
    [2] [2]KOBAYASHI T, OKAMOTO S, IWAKAMI Y, et al.Exclusive increase of CX3C-R1+CD28-CD4+T cells in inflammatory bowel disease and their recruitment as intraepithelial lymphocytes[J].Inflammatory Bowel Diseases, 2007, 13 (7) :837-846.
    [3] [3]SORIANO S G, AMARAVADI L S, WANG Y F, et al.Mice deficient in fractalkine are less susceptible to cerebral ischemia-reperfusion injury[J].Journal of N-euroimmunology, 2002, 125 (1-2) :59-65.
    [4] [4]OWLASIUK P, ZAJKOWSKA J M, PIETRUCZUK M, et al.Fractalkine structure, func-tions and biological activity[J].Polski Merkuriusz Lekarski Organ Polskiego Towarzystwa Lekarskiego, 2009, 26 (153) :253-257.
    [5] [5]KOZIOLEK M J, MLLER G A, ZAPF A, et al.Role of CX3C-chemokine CX3-CL/fractalkine expression in a model of slowly progressive renal failure[J].Nephrology Dialysis Transplantation, 2010, 25 (3) :684-698.
    [6] [6]MC DERMOTT D H, COLLA J S, KLEEBERGER C A, et al.Genetic polymorphism in CX3CR1 and risk of HIV disease[J].Science, 2000, 290 (5499) :2031.
    [7] [7]MAHO A, BENSIMON A, VASSART G, et al.Mapping of the CCXCR1, CX3C-R1, CCBP2 and CCR9 genes to the CCR cluster within the 3p21.3 region of the human genome[J].Cytogenetics&Cell Genetics, 2000, 87 (3-4) :265-268.
    [8]甄瑞峰, 唐灵.FKN与疾病的研究进展[J].医学综述, 2009, 15 (20) :3061-3064.
    [9] [9]ZHENDONG L I, SHIJIAN LUO, FENG WANG, et al.An association study betwe-en polymorphisms of the fractalkine receptor gene, CX3CR1, and cerebral in-farction in the Han Chinese population[J].Journal of the Neurological Sciences, 2012, 320 (1-2) :12-15.
    [10]刘明旭, 王福生, 洪卫国, 等.中国汉族和维吾尔族艾滋病病毒感染者与未感染人群中CX3CR1基因多态性的分布[J].中华流行病学杂志, 2003, 24 (7) :595-598.
    [11] [11]APOSTOLAKIS S, BARITAKI S, KOCHIADAKIS G E, et al.Effects of polymorphi-sms in chemokine ligands and receptors on susceptibility to co-ronary artery disease[J].Thrombosis Research, 2007, 119 (1) :63-71.
    [12] [12]ZERBIB J, PUCHE N, RICHARD F, et al.No association between the T280M p-olymorphism of the CX3CR1 gene and exudative AMD[J].Experimental Eye Research, 2011, 93 (4) :382-386.
    [13] [13]STOJKOVI L, DJURI T, STANKOVI A, et al.The association of V249I and T280M fractalkine receptor haplotypes with disease course of multiple sclero-sis[J].Journal of Neuroimmunology, 2012, 245 (1-2) :87-92.
    [14] [14]SINGH N, SINHA N, KUMAR S, et al.Suraks-ha Agrawal Polymorphism in c-hemokine receptor genes and risk of acute myocardial infarction in North In-dian population[J].Molecular Biology Reports, 2012, 39 (3) :2753-2759.
    [15] [15]NORATA G D, GARLASCHELLI K, ONGARI M, et al.Effects of fractalkine recept-or variants on common carotid artery intima-media thickness[J].Stroke, 2006, 37 (6) :1558-1561.
    [16] [16]FAURE S, MEYER L, COSTAGLIOLA D, et al.Rapid progression to AIDS in HIV+individuals with a structural variant of the chemokine receptor CX3CR1[J].Science, 2000, 287 (5461) :2247-2277.
    [17]叶峻杰, 王福生, 彭林, 等.云南傣族景颇族人群中与艾滋病相关的CX3CR1基因多态性分布[J].中国优生与遗传杂志, 2004, 12 (3) :16-17.
    [18] [18]WONG BWC, WONG D, MCMANUS BM.Characterization of fractalkine (C-X3CL1) and CX3CR1 in human coronary arteries with native atherosclerosis, diabetes mellitus, and transplant vascular disease[J].Cardiovascular Pathology, 2002, 11 (6) :332-338.
    [19] [19]YADAV A K, KUMAR V, JHA V.Association of chemokine receptor CX3C-R1 V249I and T280M polymorphisms with chronic kidney disease[J].Indian Journal of Nephrology, 2016, 26 (4) :275-279.
    [20] [20]BABAKURBAN S T, ERBEK S S, TERZI Y K, et al.Fractalkine receptor polymo-rphism and chronic to-nsillitis[J].European Archives of Oto-Rhino-Laryngology, 2014, 271 (7) :2045-2048.
    [21]彭旭, 张智博, 唐璐, 等.缺血性脑血管病患者趋化因子受体CX3C-R1基因T280M多态性的研究[J].临床神经病学杂志, 2008, 21 (5) :329-332.
    [22] [22]MCDERMOTT D H, HALCOX J P, SCHENKE W H, et al.Association between po-lymorphism in the chemokine receptor CX3CR1 and coronary vascular endo-thelial dysfunction and atherosclerosis[J].Circulation Research, 2001, 89 (5) :401-407.
    [23]龙莉, 杨榆玲, 瞿秋, 等.血管紧张素原基因M235T多态性在云南彝族人群中的分布[J].昆明医科大学学报, 2012, 33 (11) :4-7.
    [24]龙莉, 莫艳萍, 何永蜀, 等.血管紧张素转换酶基因I/D多态性在云南省彝族人群中的分布[J].昆明医科大学学报, 2009, 30 (7) :46-49.
    [25]杨榆玲, 龙莉, 瞿秋, 等.血管紧张素Ⅱ1型受体A1166C多态性在云南彝族人群中的分布[J].昆明医科大学学报, 2012, 33 (5) :43-46.
    [26]陈国文, 尤开, 龙莉, 等.MCP-1G-2518A多态性在云南彝族人群中的分布[J].昆明医科大学学报, 2016, 37 (2) :5-9.
    [27] 尤开, 陈国文, 刘珊灵, 等.CCR2b基因190G/A多态性在云南省彝族人群中的分布[J].昆明医科大学报, 2016, 37 (1B) :565-568.
  • [1] 马承娅, 杨江, 陈曦, 徐茜, 尹丕轩, 舒芯, 彭红瑜, 范志祥, 龙莉.  髓过氧化物酶-463G/A基因多态性与彝族原发性高血压的相关性, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20240408
    [2] 谭洪, 殷和佳, 李妍, 胡琴, 李斓, 任遵丹, 石柔.  DDAH1基因836A/T多态性与云南地区汉族2型糖尿病肾脏疾病的相关性分析, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20230621
    [3] 陆小华, 袁洪新.  BTLA、CTLA-4基因多态性与肝癌TACE联合靶向治疗疗效及预后相关性, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20230927
    [4] 陈新元, 吴晖, 莫亚雄, 韩雁冰, 陈新利, 朱文叶, 黄蕊, 唐薇.  NRG1-ErbB4基因多态性与局灶性癫痫易感性的关系, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20210607
    [5] 彭红瑜, 范志祥, 张延洁, 舒芯, 张馥麟, 龙莉.  CYP11B2基因-344C/T多态与云南双河乡彝族人群原发性高血压的相关性, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20210702
    [6] 皮婷, 梁月琴, 丁莉, 杨玲, 向盈盈.  妊娠期女性MTHFR 677C > T基因多态性分布特征及其与妊娠高血压疾病的相关性, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20210215
    [7] 王乐, 范志祥, 陈志彬, 彭红瑜, 张延洁, 张璐, 万瑞雪, 龙莉.  t-PA基因Alu重复序列I/D多态性在云南彝族人群中的分布, 昆明医科大学学报.
    [8] 欧阳培刚, 张桂敏, 刘寅强.  NAT2基因多态性与云南汉族华法林剂量的相关性, 昆明医科大学学报.
    [9] 吴騻, 何利平, 李晓梅, 白嫒莲, 季云瑞, 孟金良.  云南省彝族居民健康的公平性, 昆明医科大学学报.
    [10] 朱柯颖, 蒋涛, 盘婕, 范志祥, 张璐, 张延洁, 吴艳瑞, 龙莉.  CYP4A11基因rs9333025 A/G多态性在云南彝族人群中的分布, 昆明医科大学学报.
    [11] 陈灿昆, 陈志彬, 杨靖宜, 杨钰, 范志祥, 张延洁, 张璐, 龙莉.  CBS基因844ins68多态性在云南彝族中的分布, 昆明医科大学学报.
    [12] 黄红.  云南汉族原发性高血压ACE基因多态性与厄贝沙坦降压疗效相关性, 昆明医科大学学报.
    [13] 陈国文.  MCP-1 G-2518A多态性在云南彝族人群中的分布, 昆明医科大学学报.
    [14] 王祝君.  β-烯醇化酶基因多态性与COPD骨骼肌萎缩的相关性, 昆明医科大学学报.
    [15] 詹辉.  CD3+T淋巴细胞在膀胱癌肿瘤上皮与癌旁尿路上皮中的分布差异研究, 昆明医科大学学报.
    [16] 刘玲.  云南省重症新生儿黄疸与Gly71Arg基因多态性研究, 昆明医科大学学报.
    [17] 孟丽红.  Nogo及雌激素受体基因多态性与多发性硬化的研究, 昆明医科大学学报.
    [18] 杨榆玲.  血管紧张素II 1型受体A1166C多态性在云南彝族人群中的分布, 昆明医科大学学报.
    [19] 龙莉.  血管紧张素原基因M235T多态性在云南彝族人群中的分布, 昆明医科大学学报.
    [20] 文勇.  彝族新生儿先天性皮肤缺损1例诊治体会, 昆明医科大学学报.
  • 加载中
计量
  • 文章访问数:  2050
  • HTML全文浏览量:  693
  • PDF下载量:  36
  • 被引次数: 0
出版历程
  • 收稿日期:  2017-05-13

目录

/

返回文章
返回