云南省食源性沙门菌血清分型及脉冲场凝胶电泳的指纹图谱
Serotyping and PFGE Type of Salmonella Isolates in Yunnan Province
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摘要: 目的 研究云南省食源性沙门菌的血清型, 用脉冲场凝胶电泳 (PFGE) 方法对优势血清型进行分子分型, 建立云南省食源性沙门菌PFGE指纹图谱资料库, 为食源性疾病溯源提供数据.方法 对2013年至2016年从云南省食源性疾病监测中分离到的322株食源性沙门菌进行血清学分型, 采用Bio Numerics软件对148株沙门菌DNA酶切图谱进行类聚分析, 通过聚类比较分析菌株间的相关性, 建立指纹图谱库.结果 322株沙门菌血清分型主要包括A、B、C、D、E、F、G群等7个群, 鼠伤寒沙门氏菌是主要血清型, 占11.4% (37/322) .采用Bio Numerics软件对148株沙门菌DNA酶切图谱进行类聚分析, 根据电泳产生条带的位置和数量的不同, 共分为102个不同的PFGE带型.按照90%的相似度, 这些PFGE带型可以分为39个大小不一的聚类群, 呈现多样性.结论 云南省食源性沙门菌分子分型复杂, 以鼠伤寒沙门氏菌为主, PFGE带型呈现多样性.Abstract: Objective To study the serotypes and molecular characteristics of foodborne Salmonella in Yunnan Province using pulsed field gel electrophoresis (PFGE) and to establish PFGE fingerprint database.Methods This study was carried out on the basis of the Serological typing of 322 strains of foodborne Salmonella which was isolated from Yunnan national foodborne disease surveillance from 2013 to 2016. The clustering analysis was conducted on 148 strains of Salmonella DNA restriction enzyme map by using the software of Bio Numerics. Fingerprint database was established through the comparison of clustering analysis correlation on bacterial strain. Results The serotype of 322 strains of Salmonella mainly included A, B, C, D, E, F, G and other 7 groups, among which Salmonella typhimurium was the major type, accounting for 11.4% (37/322) . Cluster analysis was applied using Bio Numerics software in 148 strains of Salmonella DNA restriction enzyme map.According to the different number and the different positions, electrophoresis strips were divided into 102 different PFGE patterns (Figure 1) , which was categorized into 39 clusters if 90% of the strips was similar. Conclusion Foodborne salmonella molecular classification is complex. Salmonella typhimurium is the major type. PFGE belt type presents diversity.
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喙尾琵甲（Blaps rhynchoptera Fairmaire）是鞘翅目（Coleoptera）拟步甲科（Tenebrionidae）琵甲属（Blaps）昆虫，主要分布在我国西南地区，云南省内各地区均有分布，以滇中、滇东高原较为集中，俗名臭壳虫、小黑虫、打屁虫等[1-3]。其性辛辣、温、有毒，具有解表祛风、镇痉止痛、抗菌消炎等功效，可用于治疗发烧、咳嗽、胃炎、疔疮、肿痛，以及心血管、类风湿和肿瘤等疾病。喙尾琵甲在云南民间应用历史悠久，彝族、壮族、苗族等少数民族治疗各种疑难病症的处方中80%以上都含有该昆虫，有很好的民间药用基础[4]。
喙尾琵甲成虫能分泌具有药用价值的防御液，近年来研究表明其防御液的主要化学成分为2-甲基-1，4-苯醌、2 -乙基-1，4-苯醌和1-十三烯，这些小分子物质具有潜在的抗肿瘤、抑菌等活性[5-6]，而喙尾琵甲虫体的化学成分主要是酚类 、环肽类以及氨基酸类化合物[7-9]，其虫体本身也具有浓烈的刺激性气味，提示其可能含有大量的挥发性成分。然而目前针对喙尾琵甲虫体挥发性成分的研究不多，仅有罗建蓉等[10-11]对全虫的正己烷和石油醚提取物进行分析，指出不饱和脂肪酸类化合物是其油脂的主要化学成分。本文以喙尾琵甲虫体为研究对象，采用顶空固相微萃取方法，结合气相色谱-质谱联用技术对其中挥发性成分进行了分析鉴定，并利用面积归一化法确定各组分的相对含量，旨在为合理开发利用这一重要的药用昆虫资源提供科学依据。
1. 材料与方法
1.1 仪器与试剂
喙尾琵甲样品购自云南大理，标本保存在昆明医科大学药学院。HP6890GC/5973MS气相色谱-质谱联用仪（美国Agilent Technologies公司），Supelco 65 μm PDMS/DVB手动固相微萃取头（美国SUPELCO公司），BSA224S型电子天平（上海梅特勒托利多公司）。
1.2 方法
1.2.1 GC-MS条件
Agilent HP-5MS石英毛细管柱（30 m×0.25 mm，0.25 μm）；柱温：起始温度40 ℃，程序升温3 ℃/min至80 ℃，再5 ℃/min升温至280 ℃，保持20 min；柱流量为1.0 mL/min；进样口温度250 ℃；柱前压100 kPa；分流比5∶1；载气为高纯氦气；分析检测时间共40 min。
1.2.2 质谱条件
电离方式EI；电子能量70 eV；传输线温度250 ℃；离子源温度230 ℃；四极杆温度150 ℃；扫描质量范围35～500 amu。
1.2.3 样品处理
称取0.5 g粉碎后的喙尾琵甲粉末置于10 mL顶空瓶中，压盖密封。插入装有萃取纤维头的手动进样器，室温下顶空萃取50 min后移出萃取头，然后立即插入气相色谱仪进样口进行解析，解析温度为250 ℃，解析时间为 5 min。
2. 结果
喙尾琵甲虫体挥发性成分GC-MS总离子流图，见图 1，经质谱扫描结合wiley7n.l和NIST98.L标准谱库检索对比，并采用面积归一化法计算出各成分的相对百分含量，共鉴定出其中40个成分，占总峰面积的92.80%，见表1。成分分析结果显示，其挥发性成分中含有烃类成分16种，占总含量的35.73%；脂肪酸类成分8种，占总含量的35.87%，其中7种为短链脂肪酸；胺类成分3种，占总含量的7.29%；醇类成分4种，占总含量的5.54%；酯类成分4种，占总含量的3.87%；醛类成分2种，占总含量的2.83%；此外，还检测到酚类、酮类和醚类成分各1种，分别占总含量的0.80%、0.54%和0.33%。含量在5%以上的成分有5种，分别是十三烷（21.47%）、3-甲基丁酸（16.88%）、2-甲基丁酸（7.67%）、三甲胺（6.59%）和乙酸（5.47%），占总含量的58.08%；含量在1%～5%之间的有11种，占总含量的22.52%；其余成分含量均在1%以下，共24种，占总含量的12.20%。此外，虫体中含有10种C12～C20的直链和支链烷烃，占总含量的28.86%。
图 1 喙尾琵甲挥发性成分总离子流图Figure 1. GC-MS ion flow map of volatile components from Blaps rhynchoptera表 1 喙尾琵甲挥发性成分分析结果Table 1. Volatile components from Blaps rhynchoptera序号 保留时间（min） 化合物名称 分子式 分子量 含量（%） 1 1.16 三甲胺 N，N-Dimethylmethylamine C3H9N 59.11 6.59 2 1.67 乙酸 Acetic acid C2H4O2 60.05 5.47 3 2.15 异戊醛 3-Methylbutanal C5H10O 86.13 1.25 4 2.63 丙酸 Propanoic acid C3H6O2 74.08 0.96 5 3.92 异丁酸 Isobutyric acid C4H8O2 88.11 2.92 6 4.11 2，3-丁二醇 2，3-Butanediol C4H10O2 90.12 1.34 7 4.32 1，3-丁二醇 1，3-Butanediol C4H10O2 90.12 2.99 8 6.06 异戊酸乙酯 Ethyl isopentanoate C7H14O2 130.18 2.69 9 6.81 3-甲基丁酸 Isovaleric acid C5H10O2 102.13 16.88 10 7.17 2-甲基丁酸 2-Methyl butyric acid C5H10O2 102.13 7.67 11 9.10 二乙二醇单甲醚 Ethanol，2-（2-methoxyethoxy）- C5H12O3 120.15 0.33 12 10.22 4-甲基戊酸 4-Methylvaleric acid C6H12O2 116.16 1.10 13 10.32 4-甲基戊酸乙酯 Ethyl 4-methylvalerate C8H16O2 144.21 0.51 14 11.30 苯酚 Phenol C6H6O 94.11 0.54 15 11.39 1，2，4-三甲基苯 1，2，4-trimethyl-benzene C9H12 120.19 0.62 16 11.52 己酸 Hexanoic acid C6H12O2 116.16 0.37 17 13.04 N-（2-甲基丙基）乙酰胺 N-（2-Methylpropyl）acetamide C6H13NO 115.17 0.38 18 13.38 泛酰内酯 Pantolactone C6H10O3 130.14 0.29 19 14.15 γ-己内酯 4-Hexalactone C6H10O2 114.14 0.38 20 14.95 2-吡咯烷酮 2-Pyrrolidinone C4H7NO 85.10 0.32 21 16.09 芳樟醇 Linalool C10H18O 154.25 0.47 22 16.25 壬醛 Nonanal C9H18O 142.24 1.58 23 18.66 3，5，5-三甲基环己烯 3，5，5-Trimethy-cyclohexene C9H16 124.22 1.13 24 19.03 萘 Naphthalene C10H8 128.17 0.29 25 19.37 α-松油醇α-Terpineol C10H18O 154.25 0.74 26 19.67 十二烷 Dodecane C12H26 170.33 0.54 27 22.11 壬酸 Nonanoic acid C9H18O2 158.24 0.50 28 22.54 1-十三烯 1-Tridecene C13H26 182.34 3.55 29 22.8 十三烷 Tridecane C13H28 184.36 21.47 30 25.56 十四烷 Tetradecane C14H30 198.39 0.59 31 27.18 2，6，10-三甲基十二烷 2，6，10-Trimethyldodecane C15H32 212.41 0.78 32 27.49 2，6-二（叔丁基）-4-羟基-4-甲基-2，5-环己二烯-1-酮
2，6-Di（tert-butyl）-4-hydroxy-4-methyl-2，5-cyclohexadien-1-oneC15H24O2 236.35 0.80 33 27.94 1-十五烯 1-Pentadecene C15H30 210.40 0.83 34 28.14 十五烷 Pentadecane C15H32 212.41 2.60 35 28.37 α-法尼烯 α-Farnesene C15H24 204.35 0.45 36 30.52 十六烷 Hexadecane C16H34 226.44 1.37 37 31.65 2，6，10-三甲基十五烷2，6，10-Trimethylpentadecane C18H38 254.49 0.35 38 32.78 十七烷 Heptadecane C17H36 240.47 0.41 39 32.91 姥鲛烷 pentadecane，2，6，10，14-tetramethyl- C19H40 268.52 0.40 40 35.12 植烷 Hexadecane，2，6，10，14-tetramethyl- C20H42 282.55 0.35 3. 讨论
喙尾琵甲干燥虫体中含有大量的高级脂肪酸和脂肪酸酯等油脂类成分，如亚油酸、棕榈酸、亚油酸乙酯、油酸甲酯、棕榈酸甲酯、硬脂酸甲酯等，含量很高[10-12]。本研究首次采用顶空固相微萃取法结合气质联用技术对喙尾琵甲虫体中的挥发性成分进行了分析，有效避免了因溶剂提取导致的大量油脂类成分的干扰，更真实的反应了喙尾琵甲中的挥发性成分的种类和含量。
研究结果显示喙尾琵甲虫体的挥发性物质中烷烃类和短链脂肪酸类化合物相对较多，以十三烷和3-甲基丁酸为代表。十三烷等烷烃属于昆虫告警信息素，对昆虫的行为活动起着至关重要的作用[13-14]，本研究首次揭示了喙尾琵甲虫体中含有大量的十三烷。除烃类化合物以外，其他24种成分（酸类、胺类、醇类、酯类、醛类、酚类、酮类、醚类等）均首次从该虫体中发现。3-甲基丁酸等7种酸类成分为短链脂肪酸，这类成分主要由肠道菌群以膳食纤维为底物发酵产生，是肠道微生物群及宿主肠上皮细胞的重要能量来源，能够维持肠道酸碱平衡，抑制有害病原菌生长，调节宿主肠道免疫，降低肠道炎症反应并增强肠道屏障功能[15-16]。短链脂肪酸还具有神经活性，能够直接或间接参与微生物群-肠-脑轴的交流，对免疫和内分泌系统产生广泛的影响[17-18]。分析结果显示了喙尾琵甲虫体的挥发性物质与其臀腺分泌的防御性物质在化学成分上有很大差异，文献报道[4-5]的防御性分泌物中主要含有苯醌类、1-十三烯、烯酰胺等成分，本研究从虫体中仅检测到少量的1-十三烯，并未分离得到分泌物中的两个主要物质2-甲基苯醌和2-乙基苯醌，也未发现其他苯醌衍生物，进一步证实了取代苯醌可能主要富集于喙尾琵琶甲的防御腺，其他组织中分布极少[11]。对喙尾琵甲虫体中挥发性成分的分析和鉴定，可为该药用昆虫资源的进一步开发利用提供参考。
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[1]周湘晖, 刘帅仁, 萧福元, 等.2013-2015年湘潭市食品中金黄色葡萄球菌和沙门菌的污染状况及耐药性分析[J].实用预防医学, 2016, 23 (8) :989-991. [2]王玉平.沙门菌分子鉴定和分型方法的研究进展[J].中国卫生检验杂志, 2014, 24 (10) :1518-1520. [3]赵嘉咏, 郝宝林, 谢志强, 等.河南省一起斯坦利沙门菌聚集性病例的病原学研究及溯源分析[J].中国人兽共患病学报, 2016, 32 (5) :497-499. [4]林茂锐, 周旋, 李明友, 等.84株沙门菌耐药特征及分子分型结果分析[J].中国人兽共患病学报, 2016, 32 (6) :553-557. [5] 郭云昌, 严卫星, 李宁.2014年国家食源性疾病监测工作手册[S].北京:国家食品安全风险评估中心, 2014. [6]谭南, 汪伟山, 林爱心, 等.6417例感染性腹泻患者沙门氏菌感染情况分析[J].医学动物防制, 2014, 35 (15) :2049-2050. [7]周国营, 张杰, 郑德生, 等.2013年北京市密云县食源性疾病主动监测结果分析[J].首都公共卫生, 2014, 8 (4) :163-165. [8]沙丹, 李泓, 管红霞, 等.无锡市腹泻病人沙门菌的病原学特征及分子分型研究[J].中国人兽共患病学报, 2017, 33 (4) :378-381. [9]陈艳, 严卫星.国内外急性胃肠炎和食源性疾病负担研究进展[J].中国食品卫生杂志, 2013, 25 (2) :190-193. [10] [10] M AJOWICZ S E, MUSTO J, SCALLAN E, et al.The globa lburden of nontyphoidal Salmonella gastroenteritis[J].Clin Infect Dis, 2010, 50 (6) :882-889. [11]袁平宗, 王小龙, 罗水斌, 等.内江地区2012~2014年食源性沙门菌监测及耐药分析[J].检验医学与临床, 2016, 13 (1) :4-5. [12] [12]BARTON BEHRAVESH C, JONES TF, VUGIA DJ, et al.Deaths associated with bacterial pathogens transmitted com m only through food:food-borne diseases active surveillance network (Food Net) , 1996-200[J].J Infect Dis, 2011, 204 (2) :263-267. [13] [13]PIRES S M, VIGRE H, M AKELA P, et al.Using outbreak data forsource attribution of hum an salm onellosis and cam pylobacteriosis in Europe[J].Foodborne Pathog Dis, 2010, 7 (11) :1351-1361. [14] [14]ZHU C H, MENG X, HOU H Y, et a1.Progress in research of Salmonella fimbriae[J].Chin J Anim Infecti Dis, 2013, 21 (2) :68-74. [15] [15]LO N W, CHU M T, LING J M.Increasing quinolone resistance and multidrug resistant isolates among Salmonella enteric in Hong Kong[J].J Infect, 2012, 65 (6) :528-540. [16] [16]ZHANG J, JIN H, HU J, et al.Serovars and antimicrobial resistance of non-typhoidal Salmonella from human patients in Shanghai, China, 2006-2010[J].Epidemiol Infect, 2014, 142 (4) :826-832. [17] [17]ABBASSI-GHOZZI I, JAOUANI A, AISSA RB, et al, Antimicrobial resistance and molecular analysi of nontyphidal salmonellaisolates from human in Tunisia[J].Pathol Biol (paris) , 2010, 59 (4) :207-212. [18] [18]BEN-BARAK Z, STECKEL W, YARON S, et al.The expression of the virulence-associated effector protein gene avr A is dependent on a Salmonella enterica-specific regulatory function[J].Int J Med Microbiol, 2006, 296 (1) :25-38. [19]陈建才, 樊粉霞, 王淑京, 等.2006-2010年中国鼠伤寒沙门菌分子分型分析[J].中国人兽共患病学报, 2012, 28 (12) :1161-1166. [20]赵嘉咏, 黄丽莉, 穆玉姣, 等.2011-2013年河南省鼠伤寒沙门菌耐药与分子分型研究[[J].中国人兽共患病学报, 2016, 32 (1) :56-60. [21] [21]DE LAPPE N, CONNOR J O, DORAN G, et al.Role of subtyping indetecting Salmonella cross contamination in the laboratory[J].BMC Microbiol, 2009, 9 (1) :155. -
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