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儿茶酚抑素与慢性心力衰竭的相关性

朱国富 全强 武力勇 阮志敏 张明国 楚天舒

邓勇军, 陈倩, 邹建彬, 宫政, 刘焕鹏. ZIC1基因过表达激活P53信号通路抑制胸膜间皮瘤细胞增殖[J]. 昆明医科大学学报, 2024, 45(4): 35-40. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20240405
引用本文: 朱国富, 全强, 武力勇, 阮志敏, 张明国, 楚天舒. 儿茶酚抑素与慢性心力衰竭的相关性[J]. 昆明医科大学学报, 2019, 40(07): 56-61.

儿茶酚抑素与慢性心力衰竭的相关性

基金项目: 

云南省科技厅-昆明医科大学应用基础研究联合专项基金资助项目[2017FE468(-028)];

  • 摘要: 目的探讨血清儿茶酚抑素(CST)与慢性心力衰竭(CHF)的相关性。方法收集CHF患者120例及正常对照组40例。ELISA法检测血清CST浓度,荧光免疫定量分析法检测氨基末端B型脑利钠肽前体(NT-proBNP)水平,超声心动图检测左室射血分数(LVEF),采用NYHA心功能分级将CHF患者分为4组:心功能Ⅰ级(n=20),心功能Ⅱ级(n=38),心功能Ⅲ级(n=40),心功能Ⅳ级(n=22)。采用PEARSON相关性分析评价CST浓度与NYHA心功能分级、NT-proBNP及LVEF的关系。受试者工作特征曲线(ROC)评价CST对CHF患者的诊断参考价值。结果(1)CHF组患者血清NT-proBNP、CST水平明显高于正常对照组(P<0.001),而LVEF(P<0.05)明显低于正常对照组;(2)不同NYHA心功能组患者的年龄、性别、药物使用(包括Β受体阻滞剂、ACEI/ARB、螺内酯)及吸烟、高血压、糖尿病、肌酐等无统计学差异(P>0.05);(3)不同NYHA心功能组患者的NT-proBNP及CST组间存在差异(P<0.001),且随着心功能的加重而增加... 更多
  • 恶性胸膜间皮瘤(malignant pleural mesothelioma,MPM)是1种相对罕见的发生于胸膜间皮细胞的侵袭性恶性肿瘤[1],虽然MPM被归类为1种相对罕见的恶性肿瘤,但它是所有间皮瘤中最常见的1种,是1种高度侵袭性和致死性癌症,MPM的预后通常较差,据报道,诊断后的中位总生存期约为1 a[2],且尚无明确治愈方法。MPM的发生与发展是由于MPM细胞增殖及侵袭的结果,而MPM 细胞的增殖与侵袭受到包括癌基因、抑癌基因和细胞因子等多因素的调节[3]。小脑锌指结构1 (zinc finger of the cerebellum gene1,ZIC1)在小脑中强烈表达,因此被命名为小脑锌指结构蛋白,实际上它是1种转录因子,该因子不仅在脊椎动物的神经嵴和小脑的发育中起着关键作用[4-5],而且在一些肿瘤的发生发展过程中也起着促癌基因或者抑癌基因的作用,在胃癌中ZIC1的低表达淋巴结转移和胃癌患者的不良预后相关,并且ZIC1能抑制胃癌的转移[6];在肝癌中ZIC1敲低促进肝癌细胞自我更新和增殖,同时减弱细胞凋亡,并伴有异种移植肿瘤的加速形成和转移[7]。另外ZIC1能促进成骨[8],并且和椎骨转移相关[9]。目前,对ZIC1基因在恶性胸膜间皮瘤中的作用的研究相对较少,那么,在恶性胸膜间皮瘤的发生、发展过程中, ZIC1基因究竟扮演着什么角色呢?为了进一步探讨这一问题,本研究通过构建慢病毒介导的ZIC1表达载体,并稳定转染至胸膜间皮瘤SMC-1细胞中,观察转染ZIC1基因对胸膜间皮瘤细胞增殖、凋亡的影响及可能的作用机制。

    1.1.1   细胞株与质粒

    人间皮瘤细胞(SMC-1细胞)购自中国科学院细胞库,含ZIC1基因的慢病毒质粒及空质粒由吉玛公司构建。

    1.1.2   主要仪器及试剂

    CO2 恒温培养箱(Termo Forma公司,美国)、Fresco-17型台式高速低温离心机(Termo Scientific公司,美国)、7900T实时荧光定量聚合酶链式反应(RT-qPCR)仪、Western bolt装置、RPMI-1640 培养基(Corning公司);胎牛血清(FBS,上海康晟生物科技有限公司);青链霉素混合液(北京华越洋生物科技有限公司),磷酸缓冲生理盐水(PBS) 、胰蛋白酶及无血清培养基(购自康为生物科技有限公司),Trizol购自Invitrogen公司、羊抗人ZIC1多克隆抗体购自Santa Cruz 公司,BCA蛋白测定试剂盒、RIPA裂解液(中)购自碧云天生物技术研究所。

    1.2.1   胸膜间皮瘤细胞培养

    将胸膜间皮瘤SMC-1细胞接种于T25培养瓶,以1640完全培养基(含10% FBS和1%双抗)置于37℃、5% CO2的培养箱中培养,每2 d换液,待细胞密度达到70%~80%时,用胰酶消化后传代,取对数生长期的细胞进行实验。

    1.2.2   慢病毒载体pLV-ZIC1-PGK-Puro

    的构建及细胞转染 慢病毒载体pLV-ZIC1-PGK-Puro 的构建参照笔者前期的实验方法[10],在转染前22 h将处于对数生长期的细胞用胰酶消化,按3×103个细胞/孔浓度接种于6孔板内,37 ℃培养至细胞密度为70%~80%时,加入含ZIC1载体的病毒悬液,构建稳定的ZIC1质粒转染细胞株,操作按试剂说明书进行,构建成功后继续在培养箱中培养48 h。

    1.2.3   实验分组

    按实验目的将细胞分为3组:(1)Zic1过表达组:用上述方法构建的pcDNA3.1-ZIC1质粒载体和pcDNA3.1转染SMC-1细胞;(2)空载体组:用pcDNA3.1空载质粒转染SMC-1细胞;(3)空白对照组:常规培养未进行转染的SMC-1细胞。

    1.2.4   细胞总蛋白提取

    细胞转染质粒48 h后,六孔板内加入蛋白酶抑制剂和细胞裂解液,提取细胞总蛋白,采用BCA测蛋白浓度试剂盒,按照说明书操作方法测定蛋白浓度,分装后置于-20 ℃冰箱备用,同时提取阴性对照组和空白对照组的细胞总蛋白。

    1.2.5   Western blot检测各组蛋白表达水平

    配制分离胶及浓缩胶,并以所提取的各组蛋白作为样品,放置于80 V电泳120 min,用20V电压半干转至PVDF膜20 min,快速封闭液封闭20 min,TBST漂洗5 min×4次,随后将兔抗人ZIC1单克隆抗体(1∶2000)及鼠抗人β-actin单克隆抗体(1∶8000)用含PBST封闭液稀释后分别加入孵育体系,4 ℃孵育过夜,TBST漂洗5 min×4次后,加入二抗孵育2 h,TBST漂洗5 min×4次,采用化学发光底物进行曝光。

    1.2.6   CCK-8细胞增殖试验

    采用CCK-8(cell counting kit-8)细胞增殖试验试剂盒对SMC-1细胞增殖能力进行检测,将3组肿瘤细胞以4×103/孔的密度,均匀种于96 孔板中,采用CCK-8试剂盒检测3组SMC-1细胞72 h内的增殖能力,每孔加入10 μL预先混匀的CCK-8试剂以及100 μL新鲜PRIM-1640培养液,37 ℃环境下将其孵化2 h,在酶联免疫检测仪上于450 nm波长处测量吸光度值(OD值)。检测时间为接种细胞后以细胞贴壁时为0 h,贴壁后8 h、12 h、24 h、36 h、48 h和72 h,定时检测各孔OD 值,设置3个平行组,每次实验重复3次。

    1.2.7   Hoechst-PI双染色法检测细胞凋亡

    按照细胞密度为2.5×105个/孔分别将3组细胞接种于6孔板中培养72 h,中间24 h时更换1次新鲜培养基,弃原有培养液,每孔加入1 mL PBS洗涤,随后加入5 μL Hoechst染色液和5 μL PI染色液,混匀,室温下避光孵育20 min。用PBS洗去多余染色液,并在各孔内加100 μL PBS洗涤,用荧光显微镜观察细胞染色情况。结果判断:经Hoechst染色后可见细胞亮蓝色亮点为细胞早期凋亡的表现,而PI染色的细胞可见呈红色亮点,为细胞晚期凋亡现象,将二者结合起来,可以很好地鉴定凋亡细胞。

    采用SPSS22.0软件与GraphPad Prism5.0软件进行统计分析,计量资料用均数±标准差($ \bar x \pm s $)表示,采用t检验、单因素方差分析或重复测量的方差分析,以P < 0.05为差异有统计学意义。

    Western blot检测结果显示,3组细胞中ZIC1的相对蛋白表达量分别为:ZIC1蛋白过表达组(0.785±0.021)、空载体组(0.373±0.019)、空白组(0.358±0.022),见表1。统计学分析表明,ZIC1过表达组的蛋白表达量明显高于空白组及空载体组的蛋白含量,差异均有统计学意义(P < 0.05);而空白组与空载体组相比较,两者无明显差异(F = 2.356,P = 0.886)。表明ZIC1基因已经成功转染至胸膜间皮瘤SMC-1细胞中,并且将会在一定的时间内持续高表达,而在阴性对照组及空白对照组中则不表达或者低表达,见图1

    表  1  ZIC1在各组细胞中的蛋白表达
    Table  1.  The ZIC1 protein expression in tumor cells of each group
    组别ZIC1过表达组空载体组空白组FP
    相对表达量0.785±0.0210.373±0.0190.358±0.0224.6650.036*
      *P < 0.05。
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    图  1  ZIC1在各组细胞中的蛋白表达情况
    Mean±SD,n = 3,*P < 0.05。
    Figure  1.  The ZIC1 protein expression in tumor cells of each group

    CCK-8细胞增殖试验所测得的各组OD值,见表2。以测定时间为横坐标,OD值为纵坐标,绘制肿瘤细胞生长曲线图,见图2。统计学分析表明,在48 h之前,3组细胞的 OD值两两比较差异无统计学意义(P > 0.05)。而在 48 h之后,ZIC1过表达组的细胞增殖活性明显低于空白组及空载体组,差异有统计学意义(P < 0.05)。而空载体组与空白组的细胞增殖能力比较,两者差异无统计学意义(P > 0.05)。可见ZIC1过表达组的间皮瘤细胞的增殖活性明显受到抑制,提示恶性胸膜间皮瘤细胞中ZIC1基因的过表达能够抑制肿瘤细胞的增殖。

    表  2  各实验组在不同时间点的 OD值
    Table  2.  The optical density value of each group cell at different time points
    分组8 h12 h24 h36 h48 h72 h
    ZIC1过表达组0.677±0.0160.788±0.0180.913±0.0210.988±0.0171.023±0.0221.165±0.020
    空载体组0.798±0.0220.878±0.0241.233±0.0231.355±0.0162.238±0.0233.266±0.018
    空白组0.836±0.0230.955±0.0271.311±0.0261.402±0.0222.548±0.0283.476±0.023
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    图  2  3组肿瘤细胞的增殖能力比较
    Mean±SD,n = 3,*P < 0.05。
    Figure  2.  The ability of cell proliferation of three groups

    过表达ZIC1蛋白组的肿瘤细胞凋亡明显增加,见图3。在双变量流式细胞仪的散点图上,这3群细胞表现分别为:正常细胞为低蓝色/低红色(Hoechst 33342+/PI+),凋亡细胞为高蓝色/低红色(Hoechst 33342++/PI+),坏死细胞为低蓝色/高红色(Hoechst 33342+/PI++)。

    图  3  3组胸膜间皮瘤细胞凋亡情况(×200)
    采用HO-PI染色进行检测,红色荧光细胞为晚期凋亡或死亡细胞,蓝色荧光较亮的细胞为早期凋亡细胞,其他蓝色荧光强度较弱的细胞显示为活细胞和自然细胞。
    Figure  3.  Apoptosis of pleural mesothelioma cells in the 3 groups (×200)

    为了进一步探索ZIC1过表达对间皮瘤细胞抑制作用的分子机制,采用Western blot技术检测了细胞内P53介导的凋亡信号通路中一些关键蛋白的表达情况,包括P53蛋白、P53磷酸化位点Ser392、负反馈调节因子MDM2以及细胞周期蛋白依赖性激酶抑制剂P21,结果发现P53蛋白表达水平明显上升(P < 0.05),P53磷酸化位点Ser392的表达水平也明显上升(P < 0.05),其下游基因P21及MDM2的表达水平也明显升高(P < 0.05),见图4。这表明ZIC1 蛋白过表达能够通过激活P53介导的凋亡通路来促进细胞的凋亡,从而抑制胸膜间皮瘤细胞的生长。

    图  4  MDM2、P21、P53及P53(Ser392)在各组细胞中的蛋白表达情况
    Mean±SD,n = 3,*P < 0.05;**P < 0.01;*** P < 0.001。
    Figure  4.  The proteins expression of MDM2、P21、P53 and P53(Ser392) in each group of cells

    尽管目前针对信号传导通路的靶向治疗以及免疫治疗在一些恶性肿瘤如肺癌的治疗中获得了巨大的成功,这些传导途径包括细胞周期调节、细胞凋亡、生长因子途径和血管生成[11]。但不幸的是,针对这些分子过程的临床试验显示,这些治疗手段借鉴到恶性胸膜间皮瘤上,对MPM的疗效非常有限,甚至完全无效[12]。因此,需要对MPM的驱动基因、信号传导通路进一步研究。

    ZIC1基因是1种锌指转录因子,以前的研究发现该基因在脑神经系统的生长发育、肌肉细胞的产生以及骨骼发育中发挥着重要作用,最近的研究发现该基因在一些肿瘤中被公认为是1种抑癌基因,例如ZIC1在宫颈癌、胃癌、脂肪肉瘤中处于过度表达状态,提示ZIC1在该类肿瘤中发挥着抑癌基因的作用它可以通过激活或者抑制一些信号传到通路来抑制肿瘤细胞生长[13]。此外,ZIC1的高表达已成为一些肿瘤预后良好的潜在生物标记物[14]。本研究探讨了ZIC1基因过表达对胸膜间皮瘤SMC-1细胞增殖、凋亡的影响以及相应的机制,结果表明其在胸膜间皮瘤中起着抑癌基因的作用,其可能的作用机制为ZIC1基因过表达激活P53介导的细胞凋亡信号通路来实现。

    由于ZIC1基因在多个间皮瘤细胞株中处于沉默表达或者表达下降状态,因此在本研究中,笔者选择采用SMC-1细胞株转染真核表达质粒,结果发现胸膜间皮瘤SMC-1细胞在经过ZIC1过表达质粒成功转染之后,其增殖活力明显下降,而细胞的凋亡明显增加,提示ZIC1蛋白的过表达可以明显抑制胸膜间皮瘤细胞的增殖,并促进肿瘤细胞凋亡,这表明ZIC1基因在胸膜间皮瘤中和在大多数恶性肿瘤中一样,起着抑癌基因的作用。

    细胞凋亡是在内在的信号通路调控下发生的1种精确的程序性细胞死亡,已知由P53基因介导的信号传导通路是目前最常见的细胞凋亡调控通路,此外P53介导的肿瘤细胞凋亡对抑制肿瘤细胞的生长也具有重要作用[15]。因此,为了探讨ZIC1蛋白过表达对胸膜间皮瘤细胞增殖的抑制作用及促进其凋亡的作用机制,笔者检测了P53基因介导的肿瘤细胞凋亡信号通路中一些关键蛋白的表达情况,结果发现当过表达质粒ZIC1片段成功转染进入到SMC-1细胞后,P53基因表达上调,其下游的凋亡基因如MDM2和P21的表达也会发生上调,从而促进SMC-1细胞凋亡。由此推断其作用机制为在SMC-1细胞中过表达的ZIC1蛋白通过激活P53信号通路来促进恶性胸膜间皮瘤细胞的凋亡并抑制肿瘤细胞增殖。事实上,在其类似的研究中也发现,在细胞凋亡反应中,P53基因可以通过调控激活多个下游靶基因如MDM2和PUMA等的活性来共同发挥作用[14],被激活的P53基因也可以通过调节P21基因的活性来诱导细胞周期阻滞来促进细胞凋亡[16]

    P53基因的修饰方式(即活化方式)主要有磷酸化及乙酰化2种方式,在本研究中,笔者进一步探讨了P53基因的活化机制,发现P53基因的主要磷酸化位点Ser392的表达明显上调,这表明在本实验中P53基因的磷酸化修饰对该基因的激活发挥了重要的作用。到目前为止,已经发现关于P53磷酸化的位点有30个,磷酸化的位点不同,其所起的作用也不同,例如位点Ser6和Ser9的磷酸化可以通过TGF-β通路促进肿瘤发生和癌细胞的转移[17],而位点Ser15和Ser20的磷酸化修饰可以影响细胞的周期阻滞和DNA损伤修复[18-19]。而在本研究中笔者发现,当ZIC1过表达质粒转入SMC-1细胞后,P53基因磷酸化的位点为Ser392,其蛋白水平和活性发生改变,P53的稳定性及与反应原件的结合能力发生改变,从而启动细胞周期阻滞、凋亡、衰老和分化等细胞学效应。

    综上所述,本研究证实了在胸膜间皮瘤细胞中,ZIC1蛋白过表达可以抑制肿瘤细胞的增殖并促进肿瘤细胞凋亡,其可能的作用机制为通过上调磷酸化位点Ser392的表达来激活P53基因介导的信号通路来实现的,表明ZIC1蛋白在胸膜间皮瘤的发生和发展中起到抑癌基因的作用。

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