Expression of Zinc Finger Transcription Factor Sall4 In Pancreatic Cancer and Its Impact on Cell Invasion and Migration
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摘要:
目的 研究胰腺癌组织中锌指转录因子4（spalt like transcription factor 4，Sall4）的表达，探究抑制其基因表达后对胰腺癌细胞侵袭和迁移的影响。 方法 选取2014年1月至2018年1月昆明医科大学第二附属医院诊治的64例胰腺癌患者的肿瘤组织及癌旁样本进行研究。通过免疫组织化学染色检测胰腺癌及癌旁组织中Sall4蛋白表达，并用实时定量PCR法检测癌和癌旁组织中Sall4 mRNA水平。同时，分析患者组织蜡块和临床资料与Sall4蛋白表达的关系。从胰腺癌细胞系中筛选高表达Sall4的细胞，分为对照组、shRNA-1组和shRNA-2组。用Sall4慢病毒（抑制基因序列）转染shRNA-1组和shRNA-2组，对照组仅转染试剂。通过Western blotting法检测Sall4表达量，并筛选出Sall4抑制明显的胰腺癌细胞进行侵袭性和迁移性能力研究； 结果 64例胰腺癌组织样本中有28例Sall4（43.8%）呈阳性，蛋白表达阳性率高于癌旁组织5例（7.8%），强阳性有16例，中等至弱阳性12例。样本中有11例胰腺癌患者发生了复发，差异具有统计学意义（P < 0.05），且其表达与淋巴结转移情况、肿瘤的分化程度以及肿瘤的分期具有相关性。研究表明相比于癌旁组织，Sall4在胰腺癌组织中的表达更为明显（P < 0.05）。此外，胰腺癌组织中Sall4表达水平的升高可能与患者术后复发率的增加密切相关。shRNA-1组和shRNA-2组成功抑制了Sall4的表达，而shRNA-1组的抑制效果更明显。与对照组相比，shRNA-1组的SW480细胞侵袭和迁移能力降低（P < 0.05）。 结论 胰腺癌患者的Sall4表达越高，术后越容易复发；抑制Sall4的表达能够显著抑制胰腺癌的细胞侵袭和迁移能力。 -
关键词:
- 胰腺癌 /
- 锌指转录因子Sall4 /
- 细胞侵袭 /
- 细胞迁移
Abstract:Objective To investigate the expression of spalt like transcription factor 4 （Sall4） in pancreatic cancer tissues and its clinical significance, as well as the impact of inhibiting its gene expression on the migration and invasion of pancreatic cancer cells. Methods This study involved 64 patients with pancreatic cancer treated at the 2nd Affiliated Hospital of Kunming Medical University from January 2014 to January 2018. Immunohistochemical staining was used to detect the expression of Sall4 protein in adjacent non-tumor tissues and pancreatic cancer tissues, respectively. Real-time quantitative PCR was used to measure the mRNA expression levels of Sall4 in the cancerous and adjacent non-tumor tissues, respectively. The relationship between the clinicopathological data of these patients and the expression of Sall4 protein was also analyzed. The cells of high Sall4 expression were screened from the human pancreatic cancer cell lines PANC-1, Capan-1, SW 1990, HPAC, and HPAF-II. The pancreatic cancer cells of high Sall4 expression were divided into three groups: control group, shRNA-1 group, and shRNA-2 group. The shRNA-1 and shRNA-2 groups were transfected with the corresponding Sall4 lentiviral inhibitory gene sequences, while the control group was transfected with the reagent without an interference sequence. Western blotting was used to measure the expression of Sall4, and cells with significantly reduced expression were selected for subsequent experiments. The transfected cells were then assessed for their invasive and migratory abilities. Results Among the 64 samples of pancreatic cancer tissues, 28 cases （43.8%） were positive for Sall4 expression, a rate significantly higher than 5 cases （7.8%） in adjacent non-tumor tissues. Furthermore, 16 cases exhibited strong positivity, while 12 cases showed moderate or weak positivity. Recurrence occurred in 11 pancreatic cancer patients. The difference was statistically significant. The expression of Sall4 was correlated with tumor differentiation, staging, and lymph node metastasis, suggesting that Sall4 positivity might be an independent risk factor affecting the prognosis of pancreatic cancer. Among the five cell lines, PANC-1 had the highest relative expression of Sall4 and was selected for further experiments. The shRNA-1 and shRNA-2 groups successfully suppressed the expression of Sall4, with the shRNA-1 group showing a more pronounced effect. Compared to the control group, the invasive and migratory abilities of SW480 cells were significantly reduced in the shRNA-1 group （P < 0.05）. Conclusion Sall4 is highly expressed in pancreatic cancer tissues, and higher expression is associated with a greater likelihood of postoperative recurrence. Inhibiting the expression of Sall4 can significantly suppress the invasion and migration abilities of human pancreatic cancer cells. -
Key words:
- Pancreatic cancer /
- Zinc finger transcription factor 4 /
- Cell invasion /
- Cell migration
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头颈部癌症是人类第6大常见癌症，约占总癌症种类的3%，这其中48%属于口腔癌。全世界每年约有30万例新发口腔鳞状细胞癌病例，中国口腔癌的发病率约为5～6人/10万[1]。口腔癌具有进展快、浸润广、预后差的特点，尽管目前手术及放化疗等治疗技术在不断提高，但是远未达到理想效果，口腔癌的长期生存率仍然低于50%[1-2]。若能深入阐明其发病的分子机制，综合多项分子靶点进行预测或治疗，则有望在口腔癌的早期诊断、治疗方面有所突破。
SOX5（SRY-related high-mobility-group box 5）属于SOX转录因子家族的成员。近年的研究发现，SOX5在软骨组织分化、性别决定中起到重要的作用，并可促进多种肿瘤的发展与转移。而目前关于SOX5在口腔癌中的表达情况以及其在口腔癌中的可能作用还不清楚。小分子RNA（miRNA）是一类长度为17～25 个核苷酸的非编码单链RNA分子，它们在转录后基因表达调控中起着重要的作用。越来越多的研究表明，miRNA参与口腔癌的发生与发展过程，对口腔癌中miRNA的表达变化以及其调控基因的研究，有助于推进我们对口腔癌发生发展分子机制的认识。最近的研究表明，miR-219-5p做为新的癌症相关miRNA，可抑制包括结直肠癌、胃癌、卵巢癌及胶质瘤癌等多种癌细胞的增殖、迁移和侵袭过程，miR-219-5p在这些癌组织中的表达下调。但目前关于miR-219-5p在口腔癌中的表达和作用尚不清楚。
根据生物学软件的预测，以及对SOX5基因3’-UTR（非编码区域）的分析，作者发现SOX5 是miR-219-5p的一个潜在靶基因，那么SOX5和miR-219-5p是否参与到口腔癌的发生进展中呢？如果是，miR-219-5p是否通过对SOX5的靶调控参与了口腔癌的发生进展呢？为了解决以上问题，本研究拟对miR-219-5p / SOX5在口腔癌中的作用做一初探，拟为临床治疗提供全新的药物治疗靶点依据。
1. 材料与方法
1.1 实验材料
人舌鳞癌细胞株SCC4、SCC9和人正常皮肤成纤维细胞（HF）购自中国科学院上海细胞库。SCC4和SCC9细胞由中国科学院上海细胞库进行STR验证。本研究中没有使用错误识别和/或污染的细胞系。
miR-219-5p模拟物、miR-219-5p抑制剂、miRNA模拟物阴性对照（miR-NC）和siRNA阴性对照（miR-219-5p抑制剂，NC）由中国广州瑞博生物有限公司提供。用Lipofectamine 3000试剂盒（Invitrogen；Thermo Fisher Scientific，Inc.）进行细胞转染实验。
TRIzol® （Invitrogen；Thermo Fisher Scientific，Inc.）及miRNeasy mini kit （Qiagen AB）用于总RNA的提取，All-in-OneTM miRNA 定量RT-PCR检测试剂盒（GeneCopoeia公司）用于miR-219-5p 的RT-qPCR分析。用于miRNAhsa-miR-219-5p及U6 （内参基因） RT-PCR分析的引物购自Applied Biosystems及 Thermo Fisher Scientific公司。采用Moloney Murine Leukemia Virus Reverse Transcriptase （Takara Bio，Inc.） 及2× Mix SYBR Green I （Takara Bio，Inc.） 检测样本中SOX5 mRNA的表达水平。采用BCA试剂盒（北京生物技术公司）检测蛋白浓度。
1.2 细胞分组
细胞在制备好的培养基中经过第12代传代培养，该培养基成分为：Dulbecco’s Modified Eagle’s Medium （DMEM）/F12（DMEM）/F12 （ThermoFisher，上海，中国）、2 mmol/L谷氨酰胺、10%胎牛血清、100 U/mL青霉素和100 mg/mL链霉素（ThermoFisher科学，上海，中国）。在提供5% CO2、恒温37 ℃的培养箱中培养。
将1.5 μL miR-219-5p模拟物（3 μmol/L）、5 μL miR-219-5p抑制剂（2.5 μmol/L）或等量的Lipofectamine 3000试剂盒中的空白对照剂加入SCC4和SCC9细胞系进行瞬时转染。所使用的miRNA的序列描述如下：miR-219-5p 模拟物，UGAUUGUCCAAACGCAAUUCU；miR-219-5p模拟物空白对照（miR-NC），UGGAUUCCUUAACUUCCCAA；miR-219-5p 抑制剂，UUCAACCAGGAAAAG- UUGGGAAU；miR-219-5p 抑制剂空白对照（miR-219 inhibitor NC），AUGGCACGUGUACUCCUACAUAC。将浓度为1×106的各细胞系接种在培养皿中，按照制造商的说明书建议，在37 ℃下用上述试剂共培养48 h。随后，收集处理过的细胞进行进一步的分析，包括逆转录定量PCR （RT-qPCR）及Western blot实验等。
1.3 miR-219-5p靶向SOX5基因及其结合区域的验证
根据miRMine （http://www.microrna.org）在线网站的计算，预测SOX5 mRNA的3′-UTR序列中miR-219-5p的结合位点为5′-GGACCAAA-3′，据此，设计验证实验中相应突变位点序列为5′-GCAGGCCA-3′。
应用荧光素酶报告基因检测验证口腔癌细胞中miR-219-5p靶向调控SOX5基因。通过分子克隆实验将野生型（wt）和突变型（mut）序列插入pmirGLO载体（购自Promega公司）。在荧光素酶活性测定实验中，miR-219-5p模拟物或抑制剂分别用wt-SOX5和mut-SOX5或对照报告质粒转染口腔癌细胞。转染48 h后，使用双荧光素酶报告分析系统（Promega，Madison，WI）测量萤火虫（firefly）和海肾（Renilla）的荧光素酶活性，设定海肾荧光素酶活性作为内部对照。萤火虫的荧光素酶活性以海肾Renilla的荧光素酶活性为准做标准化处理。所有实验均重复进行3次。
1.4 RT-qPCR
按发表文献的方法描述、运用RT-qPCR检测各细胞株中miR-219-5p和SOX5的相对表达水平[3]。参照样本中U6的表达水平对miR-219-5p的相对表达量参照进行标准化[4]。引物设计并购自Invitrogen （Thermo Fisher Scientific，Inc.），所用引物序列描述如下，hsa-miR-219-5p：正向， 5′-UAUCCACUUGAUCG-GCCUAC-3′；反向5′-GCUCCGCTGUAGACCUAUCUGCA-3′；GAPDH，正向5′-CGAGATCCCTCCAAAATCAA-3′，反向5′-TTCACACCCATGACGAACAT-3′；SOX5，正向5′-CGTAACGAGCCTATGCAAT-3′，反向5′-TACCGGAAGCTA-CAATGCA-3′。每个PCR反应由两部分组成，包括95 ℃初始变性3 min，多次循环扩增（36个循环，95 ℃ 10 s，56.5 ℃ 20 s，75 ℃ 30 s），随后95 ℃变性15 s，65 ℃退火10 s，最终95 ℃延伸10 s GAPDH 作为内参基因。用2-ΔΔCq法评价各基因的相对表达水平[5]。
1.5 Western blot 分析
Western blot检测SOX5蛋白在个样本中的表达水平。按BCA检测试剂盒说明书检测蛋白浓度。取蛋白质样品（40 μg）用10% SDS-PAGE分离，转移到硝化纤维素膜上（中国碧云天生物）。用5%的脱脂牛奶封闭纤维素膜2 h，随后，加入一抗SOX5 （1∶1000；cat.no.sc-293215；Santa Cruz 生物技术公司）和GAPDH （1∶500；cat.no.sc-47724；Santa Cruz 生物技术公司），4 ℃下孵育过夜。0.01 mol/L PBS漂洗3次，每次5 min；HRP标记的二抗IgG（1∶2000；cat. no. sc-516102）在20～24 ℃孵育2 h。用增强的化学发光试剂（EMD，Millipore）观察纤维膜上免疫印迹信号。以GAPDH作为蛋白表达的参考。蛋白质的印迹结果采用Bio-Rad化学发光凝胶成像系统（Bio-Rad，美国）显影，印迹的条带采用Image J软件（V1.8.0.172，美国）进行光密度值的分析。
1.6 统计学处理
运用SPSS 软件（SPSS inc.，version21.0，美国） 对数据进行统计分析。采用方差分析（ANOVA）和Student-Newman-Keuls检验（Student-Newman-Keuls test）测定各组间mRNA和蛋白表达水平是否具有显著性差异。计量数据表述方式采用均数±标准差 （standard deviation，SD），P < 0.05为差异有统计学意义。用Pearson相关系数分析miR-219-5p与SOX5的表达水平是否具有相关性。
2. 结果
2.1 在口腔癌细胞株中miR-219-5p 表达下调、SOX5表达上调
RT-qPCR及Western blot的检测结果显示：在人口腔癌细胞株SCC4及SCC9中，miR-219-5p 的表达下调（图1A），与正常细胞株HF相比有统计学差异（P < 0.05）；而SOX5的基因（图1B）及蛋白（图1C）表达水平显著增加，与正常细胞株HF相比有统计学差异（P < 0.05）；Pearson相关系数分析合并后各组数据结果显示，人口腔癌细胞株中miR-219-5p 及SOX5的表达水平r = -0.869，绝对值接近1，说明miR-219-5p 的表达水平和SOX5的表达水平呈现负性相关。
图 1 miR-219-5p及SOX5在人口腔癌细胞株SCC4及SCC9中的表达检测A：miR-219-5p在HF、SCC4及SCC9细胞株中的表达水平比较；B：SOX5 mRNA在HF、SCC4及SCC9细胞株中的相对表达水平；C：SOX5在HF、SCC4及SCC9各细胞株中的蛋白检测表达结果，左边为Western blot检测的印迹图，GAPDH为内参；右边为SOX5蛋白定量直方图。Figure 1. The expressions of miR-219-5p and SOX5 in oral squamous cell lines SCC4 and SCC92.2 miR-219-5p通过靶向3′- UTR区域调控口腔癌细胞中SOX5的表达
miR-219-5p通过靶向3′-UTR区域调控口腔癌细胞中SOX5的表达见图2。
图 2 miR-219-5p靶向3’-UTR特异性序列调控SOX5A：miRMine预测人SOX5 mRNA序列中miR-219-5p可能的结合位点，红色标注的为miR-219-5p与SOX5 mRNA靶向结合的潜在位点；B：根据预测结果设计的miR-219-5p与SOX5 mRNA靶向结合潜在位点的突变序列（黄色标示）；3’UTR，3’非编码区；C：SCC4细胞的双荧光素酶报告实验结果；D：SCC9细胞的双荧光素酶报告实验结果。SOX5 3'UTR-wt，SOX5 3'UTR结合位点野生型组（未突变组）；SOX5 3'UTR-mut，SOX5 3'UTR结合位点突变组；miR-NC，miR-219-5p空白对照剂转染；miR-219-5p，miR-219-5p转染。Figure 2. miR-219-5p regulates SOX5 by binding to specific sites in 3’-UTR由于SOX5和miR-219-5p在口腔癌细胞中表达趋势相反，呈现负性相关，笔者推测miR-219-5p可能通过特定的“种子”区域靶向调控SOX5 mRNA表达。为了验证这一推测，我们使用miRMine来预测SOX5 mRNA中miR-219-5p可能的结合位点。结果表明，SOX5 mRNA的3′- UTR上确实存在miR-219-5p的结合位点，SOX5是miR-219-5p的潜在靶基因（图2A，红色标注的为miR-219-5p与SOX5 mRNA靶向结合的潜在位点）。根据此结合位点，笔者设计验证实验中相应突变位点序列为5′-GCAGGCCA-3′（图2B，黄色标示的为突变后的序列）。
接下来的双荧光素酶报告实验揭示：与相应对照组（SOX5 3′UTR-wt+miR-NC）相比，未经突变处理的野生型SOX5 3′UTR-wt与miR-219-5p模拟物 （SOX5 3′UTR-wt+miR-219-5p）联合转染可显著降低SCC4与SCC9的荧光素酶活性（P < 0.05，图2C-D）。而在SOX5种子序列区做了突变处理即SOX53′-UTR-mut载体转染后的细胞中，miR-219-5p处理均不能诱导SCC4或SCC9细胞中荧光素酶活性降低 （SOX5 3′UTR-mut+miR-NC vs. SOX5 3′UTR-mut+miR-219-5，P > 0.05，图2C-D）。
为了进一步确定在口腔癌细胞中miR-219-5p是否靶向调节SOX5的表达水平，笔者用miR-219-5p模拟物或抑制剂处理SCC4和SCC9细胞，随后检测SOX5的表达水平。结果显示，miR-219-5p模拟物处理后显著抑制了SOX5表达，而miR-219-5p抑制剂处理显著恢复了SCC4 （图3A～B） 和SCC9 （图3C～D） 细胞中SOX5的表达水平，与各自的对照组相比具有统计学差异（P < 0.05）。这些结果验证了在口腔癌细胞中miR-219-5p通过与SOX5 mRNA3′-UTR中特定的序列结合而靶向调控SOX5的表达。
图 3 在口腔癌细胞SCC4及SCC9中miR-219-5p靶向调控SOX5的表达A：miR-219-5p在SCC4细胞中对SOX5 mRNA水平的表达调控； B：miR-219-5p在SCC9细胞中对SOX5 mRNA水平的表达调控；C：miR-219-5p在SCC4细胞中对SOX5蛋白水平的表达调控，上方为Western blot检测的蛋白印迹图，GAPDH为内对照，下方SOX5蛋白水平的定量统计直方图；D：miR-219-5p在SCC9细胞中对SOX5蛋白水平的表达调控，上方为Western blot检测的蛋白印迹图，GAPDH为内对照，下方SOX5蛋白水平的定量统计直方图。Figure 3. miR-219-5p regulates the expression of SOX5 in SCC4 and SCC93. 讨论
作为SOX转录因子家族的成员，SOX5除了在软骨组织分化、性别决定中起到重要的作用，也是许多疾病的易感基因，可促进鼻咽癌[6]、舌癌[3]、肝癌[7]、乳腺癌[8]和前列腺癌[9]等多种肿瘤的发展与转移。Huang等发现SOX5通过调控SPARC的表达下降来促进鼻咽癌的进展，同时SOX5在鼻咽癌组织中的过表达与临床低生存率成正相关性[6]；在肝癌及乳腺癌中，SOX5通过Smad3-Sox5-Twist1信号通路促进上皮-间质转化及肿瘤细胞的入侵[7-8]；在前列腺癌中，SOX5通过调控Twist1的表达来调节TGF-β诱导的上皮-间质转化过程[9]。而本研究发现SOX5在人口腔癌组织以及细胞中表达异常增加，且其表达水平上调与患者的组织分型、临床表现及生存率呈现正相关。本研究首次揭示了SOX5在人口腔癌肿瘤组织中的表达，并与患者的临床表现呈现出恶性相关，即SOX5的表达水平增加可能导致了人口腔癌的恶化与预后不良。
为了检测SOX5表达水平改变的上游调控机制，笔者把研究目标转向了miRNA水平。miRNA通过与靶基因mRNA的3′-非翻译区（3′-UTR）互补结合从而诱导靶基因mRNA的直接降解，进而导致靶蛋白表达下降。目前的研究发现，超过30%的人类基因受miRNA调控，而同一种miRNA可以调控数百种mRNA的降解[10]。miRNA通过调节靶向基因的表达来参与细胞增殖与分化、发育、细胞凋亡、炎症及肿瘤发生与转移等过程[10-11]。研究表明，miRNA可以做为原癌基因或肿瘤抑制物来调节靶基因表达及旗下有信号通路的传导[12]。越来越多的研究表明正常组织与癌组织中的miRNA表达谱是不一样的。研究发现，不同类型的组织或细胞中都有特异表达的miRNA，不同癌组织中的特异miRNA表达谱可为临床诊断与治疗提供重要的信息。miRNA参与口腔癌的发生与发展过程，越来越多的研究表明，针对特异miRNA，如miR-196a-5p和miR-145，具有抑制口腔鳞状细胞癌的潜在作用[13-14]，因此，对口腔癌中miRNA的表达变化以及其调控基因的研究，有助于推进笔者对口腔癌发生发展分子机制的认识；同时miRNA介导的治疗为临床治疗提供了全新的药物治疗靶点依据。而本研究发现miR-219-5p通过特异性与SOX5基因的3′-UTR区互补结合，在转录水平实现了对SOX5的表达沉默，在人口腔癌中靶向调控了SOX5的表达。
值得注意的是，miR-219-5p做为新的肿瘤相关miRNA被证实参与了多种肿瘤的发生与进展。miR-219-5p在包括卵巢癌、胃癌以及结直肠癌等癌组织中的表达下调[15-19]。miR-219-5p通过调节Twist/Wnt/β-catenin信号通路来抑制表皮卵巢癌细胞的增殖、迁移和侵袭过程[15]；而在胃癌中，miR-219-5p通过调节LRH-1/Wnt/β-catenin信号通路来抑制胃癌细胞的增殖、迁移和侵袭过程[16]；在结直肠癌中，miR-219-5p通过下调calcyphosin和PDGF受体的表达来抑制癌细胞的增殖和侵袭过程[17-18]，同时可以通过下调LEBF1的表达来抑制结直肠癌上皮-间质转化及癌细胞转移过程[19]。
结合本研究结果，miR-219-5p在人口腔癌细胞株中的表达水平显著下降、而SOX5的表达增加，miR-219-5p表达水平下降与SOX5的表达水平增加呈现负相关，miR-219-5p模拟物处理后可诱导人口腔癌细胞中SOX5的表达增加，而将SOX5 mRNA上miR-219-5p靶向调控的潜在区域进行突变处理后可以消除miR-219-5p对SOX5的表达调控。这些结果提示miR-219-5p可能通过特异性靶向结合SOX5基因的3′非编码区调控了SOX5的表达；在口腔癌中miR-219-5p的表达缺失，导致SOX5表达失控而异常增加，可能与口腔癌的发生发展密切相关。本研究结果为口腔癌靶点基因的甄选及开展临床靶向治疗奠定了基础。
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图 1 胰腺癌患者Sall4免疫组化表达及对应组织HE染色情况（×200）
A：胰腺癌组织HE染色； B：胰腺癌组织Sall4染色； C：胰腺癌癌旁组织HE染色染色； D：胰腺癌癌旁组织Sall4染色； 注：A～D组均为肿瘤未复发组；E：胰腺癌组织HE染色； F：胰腺癌组织Sall4染色； G：胰腺癌癌旁组织HE染色染色；H：胰腺癌癌旁组织Sall4染色； E-H组均为肿瘤复发组。
Figure 1. Immunohistochemical expression of Sall4 in pancreatic cancer patients and corresponding HE staining of tissues （×200）
图 2 不同胰腺癌细胞中的Sall4表达情况（$\bar x \pm s $，n = 3）
A: 不同胰腺癌细胞中的Sall4表达（WB）；B: PANC-1胰腺癌细胞中的Sall4表达（细胞荧光）。
Figure 2. Expression of Sall4 in Different Pancreatic Cancer Cells（$\bar x \pm s $，n = 3）
图 3 胰腺癌细胞Sall4抑制（$\bar x \pm s $，n = 3）
A：shRNA抑制胰腺癌细胞PANC-1中的Sall4表达；B：shRNA抑制胰腺癌细胞PANC-1中的Sall4表达统计结果；***P < 0.001。
Figure 3. Sall4 inhibition of pancreatic cancer cells （$\bar x \pm s $，n = 3）
图 4 胰腺癌PANC-1抑制后侵袭结果和迁移结果
A: 胰腺癌PANC-1细胞在两组中的侵袭情况；B: 胰腺癌PANC-1细胞在2组中的侵袭情况结果统计; C: 胰腺癌PANC-1细胞在2组中的迁移情况; D: 胰腺癌PANC-1细胞在2组中的迁移情况统计；*P < 0.05。
Figure 4. Invasion and migration results of pancreatic cancer cells after PANC-1 inhibition
表 1 Sall4蛋白表达与临床病理特征的关系[n（%）]
Table 1. Relationship between Sall4 protein expression and clinicopathological features[n（%）]
类别 n SALL4阳性 χ2值 P值 性别 男 48 17 1.29 0.256 女 16 11 年龄（岁） ≤ 60 29 18 2.10 0.148 > 60 35 10 肿瘤直径（cm） ≤ 4 42 10 5.93 0.015** > 4 22 18 肿瘤位置 胰头 46 26 3.883 0.049** 胰体尾 18 2 肿瘤分化程度 高中分化 45 12 5.119 0.024** 低分化 19 16 肿瘤 AJCC 分期 Ⅰ 30 23 8.529 0.004*** Ⅱ～Ⅲ 34 5 淋巴结转移 有 31 21 4.564 0.038** 无 33 7 ** P < 0.05； *** P < 0.005。 
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