留言板

尊敬的读者、作者、审稿人, 关于本刊的投稿、审稿、编辑和出版的任何问题, 您可以本页添加留言。我们将尽快给您答复。谢谢您的支持!

姓名
邮箱
手机号码
标题
留言内容
验证码

激光皱缩对不同发育时间和级别的单囊胚冷冻复苏周期临床结局的影响

李翔 罗宇迪 张炬光 何娟 罗博文 钟俊洁 唐松源 孟祥黔

陈紫红, 刘红, 刘明伟, 舒密, 南琼. MiRNA-145在消化系统恶性肿瘤中的研究进展[J]. 昆明医科大学学报, 2021, 42(3): 145-148. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20210334
引用本文: 李翔, 罗宇迪, 张炬光, 何娟, 罗博文, 钟俊洁, 唐松源, 孟祥黔. 激光皱缩对不同发育时间和级别的单囊胚冷冻复苏周期临床结局的影响[J]. 昆明医科大学学报, 2021, 42(1): 152-156. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20210114
Zi-hong CHEN, Hong LIU, Ming-wei LIU, Mi SHU, Qiong NAN. Research Progress of miRNA-145 in Malignant Tumors of Digestive System[J]. Journal of Kunming Medical University, 2021, 42(3): 145-148. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20210334
Citation: Xiang LI, Yu-di LUO, Ju-guang ZHANG, Juan HE, Bo-wen LUO, Jun-jie ZHONG, Song-yuan TANG, Xiang-qian MENG. Effect of Laser Artificial Shrinkage on Pregnancy Outcome of Single Blastocysts Transfer with Different Developmental Days and Stages in the Frozen-thawed Cycles[J]. Journal of Kunming Medical University, 2021, 42(1): 152-156. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20210114

激光皱缩对不同发育时间和级别的单囊胚冷冻复苏周期临床结局的影响

doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20210114
基金项目: 玉林市科技攻关基金资助项目(20180107);四川省应用基础研究基金资助项目(2018JY0357);四川省卫生和计划生育委员会科研基金资助项目(18PJ010);南充市应用技术研究与开发基金资助项目(16YFZJ0065)
详细信息
    作者简介:

    李翔(1988~),男,宁夏中宁人,硕士,助理研究员,主要从事生殖医学研究工作

    通讯作者:

    罗宇迪,E-mail:luoyudi95@163.com

  • 中图分类号: R715.2

Effect of Laser Artificial Shrinkage on Pregnancy Outcome of Single Blastocysts Transfer with Different Developmental Days and Stages in the Frozen-thawed Cycles

  • 摘要:   目的  探讨激光皱缩对不同发育时间和级别的单囊胚玻璃化冷冻复苏周期临床结局的影响。  方法  回顾性分析广西玉林市妇幼保健院生殖中心行冻融单囊胚移植336例患者的临床资料。根据是否进行激光皱缩将其分为激光皱缩组(227例),未皱缩组(106例)。按照囊胚发育时间进一步将其分为皱缩D5组、皱缩D6组、未皱缩D5组和未皱缩D6组;按照囊胚内细胞团和滋养层评分分为皱缩优胚组、皱缩非优胚组、未皱缩优胚组和未皱缩非优胚组,分别比较不同发育时间和级别单囊胚激光皱缩后冻融移植的临床结局。  结果  相同发育时间的单囊胚比较,激光皱缩D5组流产率高于未皱缩D5组,差异有统计学意义(P < 0.05);皱缩组与未皱缩组其他结局指标差异无统计学意义(P > 0.05)。相同级别的单囊胚比较,皱缩优胚组妊娠率高于其他各组差异有统计学意义(P < 0.05)。  结论  激光皱缩可提高优质单囊胚移植的临床妊娠率,但有增加D5单囊胚流产率的风险。
  • MiRNAs是一类长度在19~24个核苷酸之间的内源性非编码RNA分子,具有高度保守序列,不编码蛋白质,通常通过与靶基因mRNA 3′ 非编码区(3′ -untranslated region,3′ -UTR)碱基完全或不完全互补结合进而促进靶基因mRNA降解或抑制靶基因mRNA翻译,在转录后水平调控基因表达[1-2]。迄今为止,已有千余种miRNAs在人类中被识别,其可调控机体90%以上基因表达,与包括癌症在内的许多疾病的发生发展密切相关,基于miRNAs的研究越来越被人们所重视[3-4]

    MiRNA-145最先在小鼠心脏中检测到,根据转录方向可以产生miRNA-145-5p(前导链)和miRNA-145-3p(后随链)两个转录副本,miRNA-145-5p产生23个核苷酸片段,miRNA-145-3p转录产物经处理后产生22个核苷酸片段[5]。最近的报道表明,miRNA-145参与多种消化系统恶性肿瘤的进展,在多种消化系统恶性肿瘤中均有表达,见表1。本文就miRNA-145在多种消化系统恶性肿瘤中的表达及其作用机制进行综述。

    表  1  miRNA-145在消化系统恶性肿瘤中的表达
    Table  1.  Expression of miRNA-145 in malignant tumors of digestive system
    肿瘤类型样本类型样本量方法表达作用参考文献
    ESCC 组织 50 qRT-PCR ↓抑制转移/侵袭/EMT [6]
    ESCC 组织 29 qPCR ↓抑制侵袭 [7]
    HCC 组织 139 qRT-PCR ↓ 预后 [8]
    GBC 组织 82 qRT-PCR ↓ 预后 [9]
    PC 组织 20 RT-PCR ↓ 抑制增殖、迁移和侵袭 [10]
    CRC 组织 43 qPCR ↓ 抑制侵袭和转移 [11]
    CRC 组织 202 qRT-PCR ↑ 促进转移和侵袭 [12]
      ↓:miRNA-145 下调;↑:miRNA-145 上调;CRC:结直肠癌;HCC:肝细胞癌;ESCC:食管鳞状细胞癌;PC:胰腺癌;GBC:胆囊癌;EMT:上皮-间质转化;qPCR:定量聚合酶链反应;qRT-PCR:实时荧光定量聚合酶链反应;RT-PCR:实时荧光定量聚合酶链反应。
    下载: 导出CSV 
    | 显示表格

    食管癌(esophagus cancer,EC)是一种常见的癌症,症状出现较晚,诊断时多为晚期,发病率和致死率仅次于胃癌。食管鳞状细胞癌(esophageal squamous cell carcinoma ,ESCC)是EC的主要病理类型,已被列为中国第四大恶性肿瘤,致死率高。Harada等[13]研究结果显示miRNA-145启动子在ESCC组织中比在匹配的正常邻近食管上皮粘膜中显著高甲基化,表明ESCC患者中miRNA-145的表达受启动子区域的高甲基化调节,这是ESCC中miRNA-145的表观遗传调控的第一个证据。此后,越来越多学者对miRNA-145在ESCC中的作用做了更多的研究,有人指出磷脂酶C-1 (phospholipase C epsilon 1,PLCE1)是ESCC的易感基因,PLCE1在ESCC中起着肿瘤启动子的作用,而miRNA-145可以通过直接靶向PLCE1的3′ -UTR区从而抑制PLCE1的翻译,进而促进肿瘤细胞的凋亡以及增强肿瘤细胞对化疗药物的敏感性,且ESCC中PLCE1的高表达水平与较差的总生存率显著相关[14]。Qiang等[6]研究显示ESCC组织和细胞系中miRNA-145表达明显下调,而结缔组织生长因子(connective tissue growth factor,CTGF)蛋白表达呈相反趋势,miRNA-145通过靶向调控CTGF表达来抑制ESCC细胞的增殖、迁移、侵袭和上皮-间质转化(epithelial-mesenchymal transition,EMT)进程。Li等[15]则提出miRNA-145-5p在ESCC中可以通过调控Sp1/NF-kB信号通路,下调Sp1和NF-kB(p65),抑制ESCC细胞的迁移、侵袭和EMT进程,从而发挥抑癌作用。最近一项研究还报道了在ESCC细胞中,miRNA-145-3p直接调控还原酶2(dehydrogenase/reductase member 2,DHRS2)和肌球蛋白IB(myosin IB,MYO1B),异常表达的DHRS2和MYO1B增强了ESCC细胞的侵袭性[7]

    Liu等[16]学者指出,早期胃癌(gastric cancer,GC)检出率低,晚期GC预后差,GC死亡率仅次于肝癌、胰腺癌和肺癌,严重威胁着人类健康,而miRNA-145-5p过表达可以逆转GC细胞的增殖,促进GC细胞凋亡。此外,还有学者提出,miRNA-145可以通过直接靶向CD44(一种完整的细胞膜糖蛋白,最初被认为是循环淋巴细胞的淋巴细胞归巢受体,具有归巢、粘附和迁移功能)的3′ -UTR进而抑制GC细胞的自我更新并提高其化学敏感性,进而发挥抑癌和降低化疗耐药性的作用,且CD44的表达与GC的侵袭性和较差的总体预后呈正相关,值得注意的是,miRNA-145在GC侵袭转移级联反应中具有抑制作用,但在GC生长过程中并没有抑制作用[17]

    胆囊癌(gallbladder cancer,GBC)是胆道内最常见的恶性肿瘤,预后较差,由于其耐药性高,全身化疗在治疗GBC患者方面取得的进展十分有限。MiRNA-145在GBC组织中高表达,直接靶向多药耐药相关蛋白1(multidrug resistance-related protein 1,MRP1)mRNA3′ -UTR加速其降解,通过负调控MRP1显著影响GBC的化学敏感性,从而增加了GBC细胞中顺铂的毒性,因此,靶向miRNA-145-MRP1信号通路可能是逆转GBC耐药的一个潜在策略。此外,较低的miRNA-145和较高的MRP1表达水平提示接受化疗的GBC患者预后较差,因此,有学者推测,增加miRNA-145在GBC中表达的治疗策略可能成为GBC的一种新疗法[9]

    胰腺癌(pancreatic cancer,PC)是一种高度恶性的消化系统肿瘤,具有侵袭快、转移早、抗肿瘤能力强等特点,由于早期缺乏特征性的临床表现,导致肿瘤被发现时已是晚期,预后较差。粘蛋白13(mucin 13,MUC13)是一种跨膜粘蛋白,与PC的进展密切相关,miRNA-145靶向MUC13的3′ -UTR区域,下调了MUC13蛋白在PC细胞中的表达,从而抑制了PC的生长和侵袭。之后又有研究证实miRNA-145通过直接与NEDD9(ERG,也称为HEF1或Cas-L)的3′ -UTR结合,在转录后水平负调控NEDD9,降低了NEDD9 mRNA和蛋白的表达,进而抑制PC细胞的增殖、侵袭和迁移能力[10]。最新研究显示,K-Ras突变在PC患者中广泛存在,早在胰腺上皮内癌变和早期转移阶段就可检测到K-Ras突变。在正常健康组织中,K-Ras及其靶向miRNA的表达受到严格调控,然而,在癌变条件下,激活的K-Ras通过前反馈机制下调肿瘤抑制因子miRNA,促进肿瘤侵袭[18]

    结直肠癌(colorectal cancer,CRC)是消化道常见恶性肿瘤之一,具有快速转移,预后较差的特点,肿瘤增殖和转移是CRC致死的主要原因[19]

    早前就有学者提出,miRNA-145可能通过直接与Fascin-1(FSCN1) mRNA 3′ -UTR相互作用,下调其mRNA和蛋白的表达水平,在抑制CRC的侵袭性和转移能力方面发挥关键作用[11]。随后,又有研究报道,miRNA-145可抑制5-氟尿嘧啶(5-FU)处理后CRC细胞的RAD18表达,从而增强CRC细胞DNA损伤,提示miRNA-145具有逆转耐药作用。miRNA-145还可以通过与ETS相关基因(ETS-related gene,ERG)mRNA的3′ -UTR相互作用负性调控ERG,从而抑制CRC细胞的增殖和侵袭。Sheng等[20]研究表明miRNA-145负调控LASP1(p21-activated kinases 4,PAK4)从而抑制CRC细胞迁移,其过表达或PAK4的敲低显著降低了LIMK1(PAK4的下游效应因子)的表达以及LIMK1磷酸化丝切蛋白(cofilin)的能力,并将miRNA-145-PAK4-LIMK1-cofilin作为一种新的参与CRC转移的调控通路,此外,该研究还进一步阐明了miRNA-145的直接靶点PAK4的高表达与CRC患者预后不良显著相关。之后又有研究报道miRNA-145在CRC中下调,在更具侵袭性的SW620细胞系中表达水平降低更多,提出miRNA-145具有肿瘤抑制作用,特别是抗转移作用,并指出LASP1(LIM and SH3 protein 1)是miRNA-145的直接靶点,负性参与miRNA-145介导的转移抑制作用。之后Anusha等[21]也表示,miRNA-145可以影响CRC细胞系的转移潜能,在SW480和SW620这两个同源细胞系细胞中,miRNA-145在EMT和Wnt通路中通过靶向其3′ -UTR来调控转录后的SIP1(SMAD-interacting protein 1,SIP1)表达,使SIP1表达在mRNA和蛋白质水平均受到抑制,表现为miRNA-145在SW480细胞中下调CTNNB1、TCF4、CCND1、VIM和SNAI,上调CDH1的表达,从而发挥抑制肿瘤增殖、迁移和侵袭的作用,而在SW620细胞中则通过激活Wnt信号通路和促使CTNNB1在核内异常聚集,加速了EMT从而增强了其转移潜能,导致恶性肿瘤的进展。与大多数研究相反,少数研究提出miRNA-145在CRC中是致癌的。例如,Yuan等[12]报道miRNA-145通过稳定与CRC细胞转移相关的蛋白Hsp-27提高了CRC细胞的迁移和侵袭能力,但对增殖无影响。

    越来越多证据表明,MiRNA-145通常与靶基因mRNA 3′ -UTR结合,在大多数消化系统恶性肿瘤中下调,是一种肿瘤抑制因子,过表达miRNA-145可抑制不同肿瘤细胞的生长,显著降低肿瘤细胞的扩散能力,提高肿瘤细胞对化疗药物的敏感性,进而发挥其抗肿瘤作用。目前的一些研究已经确定了miRNA-145在消化系统特定恶性肿瘤中可能介导的机制,但还没有研究对miRNA-145进行全面的探讨。当然,有少数学者提出miRNA-145不仅没有发挥抑癌作用,反而促进了癌细胞的迁移和侵袭能力,这可能是因为miRNA-145与其靶基因是一对多或多对一的关系,一个特定的miRNA可以调控多种靶基因,不同靶基因又具有不同的调节作用。此外,已有部分研究开始关注miRNA-145在消化系统恶性肿瘤中的预后价值,普遍认为miRNA-145低表达与恶性肿瘤不良预后相关,但目前大多数研究仅限于研究miRNA-145在不同特定恶性肿瘤中可能介导的机制和作用,仅少数研究关注miRNA-145在消化系统恶性肿瘤中的诊断和预后价值。当前部分研究还发现miRNA-145可以通过靶向消化系统中某些恶性肿瘤的特定基因发挥逆转肿瘤耐药的作用,因此,针对miRNA-145靶向的不同基因给药可能是一种潜在的消化系统恶性肿瘤治疗方法,未来值得关注。目前大多研究均是针对miRNA-145在组织中的表达,少有学者探讨miRNA-145与肠道微生物的相互作用关系,比如其在粪便及患者其他分泌液中的表达是否具有相关性仍待进一步研究。

  • 表  1  激光皱缩对不同发育时间单囊胚冷冻复苏周期临床结局的影响

    Table  1.   Effect of laser artificial shrinkage on pregnancy outcome of single blastocysts transfer with different developmental days in the frozen-thawed cycles

    组别未皱缩组 皱缩组PFχ2
    D5D6 D5D6
    周期数(n 55 54 170 57
    平均年龄(岁) 32.78 ± 3.938 32.57 ± 3.86 32.52 ± 3.62 32.77 ± 4.09 0.620 0.246
    体重指数(Kg/m2 22.11 ± 2.54 21.47 ± 2.41 21.94 ± 2.88 22.26 ± 3.78 0.168 1.909
    不孕年限(a) 1.76 ± 0.793 1.78 ± 0.793 1.23 ± 0.80 1.89 ± 0.51 0.531 0.394
    既往周期数(n) 2.18 ± 0.547 2.19 ± 0.675 1.79 ± 1.087 1.74 ± 0.98 0.793 0.069
    内膜厚度(mm) 9.29 ± 1.82 9.73 ± 2.04 9.34 ± 1.32 9.44 ± 1.55 0.397 0.719
    临床妊娠率(%) 49.01(27/55) 31.48(17/54) 54.11(92/170) 35.09(20/57) 0.126 3.678
    流产率(%) 14.81(4/27)a 29.41(5/17)b 20.65(19/92) 10.00(2/20) 0.0001 30.10
    异位妊娠率(%) 0(0/27) 5.88(1/17) 1.09(1/92) 0(0/20) 0.207 3.168
    多胎率(%) 7.4(2/27) 0(0/17) 7.61(7/92) 0(0/20) 0.152 3.478
      与皱缩组D5比较,aP < 0.05;与皱缩组D6比较,bP < 0.05。
    下载: 导出CSV

    表  2  激光皱缩对不同发育时间单囊胚冷冻复苏周期临床结局的影响

    Table  2.   Effect of laser artificial shrinkage on pregnancy outcome of single blastocysts transfer with different stages in in the frozen-thawed cycles

    组别未皱缩组 皱缩组PFχ2
    优胚组非优胚组 优胚组非优胚组
    周期数(n n = 45 n = 64 n = 103 n = 124
    平均年龄(岁) 32.91 ± 4.07 32.52 ± 3.77 32.25 ± 3.58 32.85 ± 3.86 0.217 1.532
    体重指数(Kg/m2 21.73 ± 2.51 21.84 ± 2.49 21.95 ± 3.94 22.08 ± 2.99 0.931 0.007
    不孕年限(a) 1.67 ± 0.74 1.84 ± 0.82 1.46 ± 0.94 1.84 ± 0.53 0.167 1.915
    既往周期数(n) 1.98 ± 0.26 2.33 ± 0.74 1.67 ± 0.96 1.87 ± 1.12 0.565 0.332
    内膜厚度(mm) 9.56 ± 1.88 9.47 ± 1.99 9.07 ± 1.33 9.60 ± 1.50 0.126 2.35
    临床妊娠率(%) 40(18/45)a 40.65(26/64) 61.17(63/103) 40.16(49/124) 0.005 12.990
    流产率(%) 11.11(2/18) 10.94(7/64) 15.87(10/63) 22.45(11/49) 0.841 0.090
    异位妊娠率(%) (0/18) 3.85(1/26) 0(0/63) 2.04(1/49) 0.207 3.168
    多胎率(%) 11.11(2/18) 0(0/26) 9.52(6/63) 2.04(1/49) 0.152 3.748
      与皱缩优胚组比较,aP < 0.05。
    下载: 导出CSV
  • [1] Vanderzwalmen P,Bertin G,Debauche C,et al. Births after vitrification at morula and blastocyst stages:effect of artificial reduction of the blastocoelic cavity before vitrification[J]. Hum Reprod,2002,17(3):744-751. doi: 10.1093/humrep/17.3.744
    [2] Gardner D K,Schoolcraft W B. Culture and transfer of human blastocysts[J]. Curr Opin Obstet Gynecol,1999,11(3):307-311. doi: 10.1097/00001703-199906000-00013
    [3] Joo J K,Jeong J E,Kim C W,et al. Comparison of mechanical artificial shrinkage methods in mouse blastocyst vitrification[J]. Clin Exp Obstet Gynecol,2016,43(1):93-97. doi: 10.1016/j.ogc.2015.10.005
    [4] Darwish E,Magdi Y. Artificial shrinkage of blastocoel using a laser pulse prior to vitrification improves clinical outcome[J]. J Assist Reprod Genet,2016,33(4):467-471. doi: 10.1007/s10815-016-0662-z
    [5] Son W Y,Yoon S H,Yoon H J,et al. Pregnancy outcome following transfer of human blastocysts vitrified on electron microscopy grids after induced collapse of the blastocoele[J]. Hum Reprod,2003,18(1):137-139. doi: 10.1093/humrep/deg029
    [6] 李翔,曾莠蔓,罗宇迪,等. 体外受精-胚胎移植中移植不同培育时间、单双胚胎的不孕症患者受孕及妊娠结局观察[J].山东医药,2019,59(27):67-70. doi: 10.3969/j.issn.1002-266X.2019.27.019
    [7] Tubbing A,Shaw-Jackson C,Ameye L,et al. Increased live births after day 5 versus day 6 transfers of vitrified-warmed blastocysts[J]. J Assist Reprod Genet,2018,35(3):417-424. doi: 10.1007/s10815-017-1097-x
    [8] 任文娟,师娟子,李明昭,等. 激光人工皱缩对囊胚玻璃化冷冻后妊娠结局的影响[J].西安交通大学学报(医学版),2018,39(2):281-285.
    [9] Li L,Zhang X,Zhao L,et al. Comparison of DNA apoptosis in mouse and human blastocysts after vitrification and slow freezing[J]. Mol Reprod Dev,2012,79(3):229-236. doi: 10.1002/mrd.22018
    [10] 冯贵雪,张波,舒金辉,等. 人工皱缩囊胚腔对囊胚玻璃化冷冻后妊娠结局的影响[J].中华妇产科杂志,2010,5(11):838-842. doi: 10.3760/cma.j.issn.0529-567x.2010.11.010
    [11] Huang C C,Lee T H,Chen S U,et al. Successful pregnancy following blastocyst cryopreservation using super-cooling ultra-rapid vitrification[J]. Hum Reprod,2005,20(1):122-128. doi: 10.1093/humrep/deh540
    [12] Thompson S M,Onwubalili N,Brown K,et al. Blastocyst expansion score and trophectoderm morphology strongly predict successful clinical pregnancy and live birth following elective single embryo blastocyst transfer(eSET):a national study[J]. J Assist Reprod Genet,2013,30(12):1577-1581. doi: 10.1007/s10815-013-0100-4
    [13] 甄璟然,王雪,孙正怡,等. 复苏单囊胚移植周期中囊胚形态学评分对临床妊娠的影响[J].生殖医学杂志,2014,23(1):7-10. doi: 10.3969/j.issn.1004-3845.2014.01.002
    [14] Honnma H,Baba T,Sasaki M,et al. Trophectoderm morphology significantly affects the rates of ongoing pregnancy and miscarriage in frozen-thawed single-blastocyst transfer cycle in vitro fertilization[J]. Fertil Steril,2012,98(2):361-367. doi: 10.1016/j.fertnstert.2012.05.014
    [15] Kovacic B,Taborin M,Vlaisavljevic V. Artificial blastocoel collapse of human blastocysts before vitrification and its effect on re-expansion after warming-A prospective observational study using time-lapse microscopy[J]. Reprod Biomed Online,2018,36(2):121-129. doi: 10.1016/j.rbmo.2017.10.111
  • [1] 白云, 李蕾, 吴月蓉, 钟兰萍.  子宫内膜容受性检测对于反复种植失败的有效性研究及影响种植窗的临床因素分析, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20220501
    [2] 朱恒满, 苏真芳, 王华伟, 唐菊, 张从飞, 刘清梅, 刘映宏, 高建梅, 饶猛.  基于体外受精-胚胎移植患者健康信息需求的节点健康教育模式构建及应用, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20220146
    [3] 乔奕胜, 陈孝祥, 徐蛟天, 王威, 张超, 宋晓斌, 杨智勇, 邓兴力.  Nurr1基因修饰胚胎中脑神经干细胞移植治疗帕金森病, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20210919
    [4] 乔奕胜, 陈孝祥, 徐蛟天, 王威, 张超, 宋晓斌, 杨智勇, 邓兴力.  Nurr1基因修饰胚胎中脑神经干细胞移植治疗帕金森病, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20210801
    [5] 赵曼林, 胡月新, 杨倩蓉, 许伟标, 韦焘, 黄芩.  OHSS高风险患者首次冻融单胚胎或单囊胚移植后临床结局分析, 昆明医科大学学报.
    [6] 赵曼林, 李清, 许伟标, 黄芩, 韦焘.  疤痕子宫患者行体外受精-胚胎移植后选择性单胚移植的临床结局, 昆明医科大学学报.
    [7] 张琼芬, 毕艳, 徐健, 郭骄, 唐松源, 张琼.  云南省某生殖医学科161例IVF-ET患者就诊满意度与治疗信心影响因素, 昆明医科大学学报.
    [8] 钱程, 司敬琅, 唐波, 肖曙峰, 付必莽, 张捷.  树鼩肝移植模型的建立, 昆明医科大学学报.
    [9] 张瑞鹏, 王辉, 戴毅, 张鸿, 李伟, 王小军, 高增战.  联合介入及自体外周血干细胞移植治疗下肢动脉缺血性疾病, 昆明医科大学学报.
    [10] 孙英伦, 杨镛, 马振桓, 杨国凯, 万嘉, 李国剑.  自体外周血干细胞移植联合置管溶栓术治疗TAO患者血流重建并降低截肢平面, 昆明医科大学学报.
    [11] 王佳, 刘婷, 陈庆佳, 关立南.  人工合成角膜移植对患者心理状况的影响, 昆明医科大学学报.
    [12] 宋家美, 陈慧, 徐佩琦, 孟昱时.  女性基础睾酮水平对体外受精-胚胎移植妊娠结局的影响, 昆明医科大学学报.
    [13] 李强.  自体外周血干细胞移植治疗心肌梗死, 昆明医科大学学报.
    [14] 杨立斗.  羟基磷灰石晶须/纳米氧化锌复合抗菌人工骨体外极限降解实验, 昆明医科大学学报.
    [15] 唐诗聪.  组织块移植法建立人肺癌裸鼠移植瘤模型, 昆明医科大学学报.
    [16] 吴剑.  142例体外循环下冠状动脉旁路移植术临床分析, 昆明医科大学学报.
    [17] 王芳.  原位心脏移植手术的体外循环管理, 昆明医科大学学报.
    [18] 王芳.  滇南小耳猪心肺联合移植的体外循环管理, 昆明医科大学学报.
    [19] 杨晓玲.  生长激素在体外授精-胚胎移植卵巢低反应患者中的应用, 昆明医科大学学报.
    [20] 不同冷冻载体对小鼠卵巢组织玻璃化冻存的影响, 昆明医科大学学报.
  • 期刊类型引用(2)

    1. 段炼,李丽娜,韩乐,周菁,焦咪,陈文娟,孙文博. 血清miRNA-145、miRNA-506水平预测非小细胞肺癌患者术后复发的价值. 中国医师杂志. 2024(12): 1880-1883 . 百度学术
    2. 刘黎,杨帆,张匠,冷娇,刘雪梅,王晓华,梁龙,董华琼. 下调miR-155通过抑制HIF-1α/VEGF通路增强人结直肠癌细胞的放射敏感性. 广西医科大学学报. 2021(07): 1356-1362 . 百度学术

    其他类型引用(0)

  • 加载中
计量
  • 文章访问数:  2597
  • HTML全文浏览量:  1941
  • PDF下载量:  15
  • 被引次数: 2
出版历程
  • 收稿日期:  2020-09-14
  • 网络出版日期:  2021-01-26
  • 刊出日期:  2021-01-26

目录

/

返回文章
返回