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星形胶质细胞-神经元转化体内诱导研究进展

铁金杉 刘垚 陈绍春

赵从琪, 羊顺波, 李光达, 李琦华, 李玉鹏, 徐俊驹. HPLC法测定美洲大蠊药材中五种核苷类成分含量[J]. 昆明医科大学学报, 2021, 42(2): 13-17. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20210225
引用本文: 铁金杉, 刘垚, 陈绍春. 星形胶质细胞-神经元转化体内诱导研究进展[J]. 昆明医科大学学报, 2021, 42(3): 140-144. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20210333
Cong-qi ZHAO, Shun-bo YANG, Guang-da LI, Qi-hua LI, Yu-peng LI, Jun-ju XU. Determination of Five Nucleosides in Periplaneta Americana L. Extract by HPLC[J]. Journal of Kunming Medical University, 2021, 42(2): 13-17. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20210225
Citation: Jin-shan TIE, Yao LIU, Shao-chun CHEN. Advances in Research of Astrocyte-neuron Transformation in Vivo[J]. Journal of Kunming Medical University, 2021, 42(3): 140-144. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20210333

星形胶质细胞-神经元转化体内诱导研究进展

doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20210333
基金项目: 国家自然科学基金资助项目(82060421);云南省科技厅-昆明医科大学应用基础研究联合专项基金资助项目(2018FE001-022);昆明医科大学科技创新团队基金资助项目(CXTD201905)
详细信息
    作者简介:

    铁金杉,(1997~),女,云南昆明人,在读硕士研究生,主要从事神经退行性疾病康复相关研究工作

    通讯作者:

    陈绍春,E-mail:shaochunchen@126.com

  • 中图分类号: R741.02

Advances in Research of Astrocyte-neuron Transformation in Vivo

  • 摘要: 星形胶质细胞-神经元转化(星元转化)是21世纪神经科学的重要发现。星形胶质细胞在胶质细胞中数量最多,与神经元起源于相同的前体细胞,其向神经元转化的潜能为以神经元受损或丢失为特征的各类神经系统疾病的治疗带来新的希望。体外星元转化已有众多成功的实验,而体内星元转化的探索刚刚起步。现已发现可用转录因子、药物、MicroRNA等在模型动物体内诱导星元转化,阿尔茨海默病、脊髓损伤、局灶性中风、帕金森病等病理情况可诱发星元转化。对星形胶质细胞在正常及有关疾病模型动物体内转化为神经元的研究现状进行系统阐述,对星形胶质细胞重编程、向神经元转化并补充整合到受损的神经环路中的可能机制进行梳理。
  • 妊娠期间由于其特殊的代谢状态,孕妇存在不同程度的胰岛素抵抗,多数妊娠期糖尿病(gestational diabetes mellitus,GDM)孕妇处于前期糖尿病状态或存在慢性胰岛素抵抗,随妊娠进展,获得性胰岛素抵抗加重,而孕前肥胖、孕期过度增重、孕期高胆固醇血症均是引起GDM胰岛素抵抗的高危因素[1]。孕期脂肪的堆积伴随着大量脂肪因子的分泌,更加剧脂代谢紊乱,尤其网膜脂肪组织的增加对孕期胰岛素抵抗的影响尤为显著[2],加剧胰岛素抵抗。

    Chemerin为视黄酸受体反应蛋白2,是一种新型的14 kDa趋化剂蛋白,是一种前趋化素。这种非活性前体通过凝血和炎性丝氨酸蛋白酶[3]转化为活性分子。Chemerin及其受体几乎只在白色脂肪组织[4]中表达和合成。具有广泛生物活性的Chemerin不仅参与脂肪细胞的成熟分化,参与慢性炎症反应、具有旁分泌和内分泌作用影响机体的糖脂代谢、胰岛素抵抗、参与高血压进展[5-6]。孕期血清中Chemerin参与了GDM的高血脂改变,孕前及产前BMI > 28 kg/m2的孕妇血清中Chemerin水平增高更为显著[7]。Chemerin可调节胰岛素的敏感性[8],为进一步探讨Chemerin与GDM胰岛素抵抗的关系,本文拟从网膜脂肪组织中Chemerin的表达变化与经典胰岛素信号传导通路的关系来探讨Chemerin引起胰岛素抵抗的作用。

    选择2013年4月至2014年6月期间在昆明医科大学第一附属医院产科规律产检并分娩的单胎妊娠孕妇,按下列条件分别纳入病例组和对照组。

    1.1.1   GDM的普査和管理

    具有GDM高危因素的孕妇首诊时(< 12周)即接受75 g口服葡萄糖耐量试验(oral glucose tolerance test,OGTT),若血糖结果正常再于妊娠24~28周复查该试验。对其余不具备高危因素的孕妇于妊娠24~28周直接进行75gOGTT试验。

    GDM的诊断参照IADPSG的GDM诊断标准[9]:24~28周时行75 g OGTT试验,服糖前空腹8 h,抽取第1次空腹血后立即口服75 g 葡萄糖,分别于服糖后1 h及2 h分别抽取静脉血测血糖,如有1项或1项以上大于或等于临界值则诊断为GDM(OGTT诊断临界值:0 h 5.1 mmol/L,1 h 10.0 mmol/L,2 h 8.5 mmol/L)。对诊断为GDM的患者按国际标准给予饮食、运动控制,分娩方式均为孕足月因产科指征剖宫产。

    1.1.2   对照组的选择

    同期选择与每个GDM病例均为首产、分娩孕周接近(±1周)并在同年分娩的NGT孕妇作为本研究的对照组,GDM组30例,NGT组24例。

    纳入本研究的病例组和对照组均符合[9]:(1)本次妊娠前无高血压、肾脏、心血管、肝脏或糖尿病等疾病者;(2)未曾服用过可能干扰糖、脂代谢药物者(如消炎痛、酚妥拉明、速尿、噻嗪类利尿剂、苯妥英钠、可的松等);(3)无内分泌疾病(如甲亢、甲减、柯兴氏综合征);(4)非吸烟者。本研究经医院医学伦理委员会批准,研究方案符合医学伦理道德规范,研究对象签署知情同意书后纳入研究。

    1.2.1   研究对象

    选择2013年4月至2014年6月期间在昆明医科大学第一附属医院产科规律产检并分娩的单胎妊娠孕妇,按下列条件分别纳入病例组24例和对照组22例。

    1.2.2   组织标本收集

    在剖宫产手术分娩时收集网膜脂肪组织约2 g,分为两部分,无菌PBS液反复洗涤至无血液,转置无菌、无RNA酶的EP管中(内预留1 mL Trizol液,Invitrogen公司)中混匀充分匀浆,一部分不加任何溶液,处理完毕后立即-80 ℃保存。

    1.2.3   Western blot

    检测大网膜脂肪组织中Chemerin、IRS-1的表达 免疫共沉淀法检测IRS-1酪氨酸磷酸化水平。蛋白质相对表达的计算:Image J 图像分析软件计算目的蛋白灰度值/内参蛋白灰度值即为目的蛋白相对表达量。

    1.2.4   qPCR

    检测大网膜脂肪组织中Chemerin、IRS-1的mRNA表达 加入 TRIzol 裂解液的标本充分裂解后在依次用氯仿、异丙醇、75% 酒精依次萃取沉淀洗涤总RNA,取 1 μg 总 RNA,进行逆转录 ( Thermo,Revert AidTM H Minus First Strand cDNA Synthesis Kit,K1632) 。合成 cDNA 后予以3倍稀释后取1 μL cDNA进行PCR。3次重复以消除孔间操作误差。计算各样品相对拷贝值。

    用Spss21.0软件对数据进行统计学处理。正态分布的计量资料以($\bar x \pm s $)表示,采用独立样本的t检验进行分析;非正态分布的计量资料以中位数表示,采用Mann-Whitney U检验;P < 0.05为差异有统计学意义。Spearman或Pearson相关性分析各指标间关系。

    GDM组孕妇在孕前BMI高于NGT组,诊为GDM后给予指导饮食、运动治疗,空腹及餐后2 h血糖控制良好。GDM孕妇产前BMI与NGT组无差异,2组孕妇TG、TC、HDL、LDL、FFA等脂代谢指标差异无统计学意义(P > 0.05),见表1

    表  1  GDM组孕妇与对照组一般临床资料比较
    Table  1.  Comparison of general clinical data between GDM group and control group
    一般项目GDM组(n = 30)NGT组(n = 24)tP
    年龄(岁) 30.23 ± 4.40 28.77 ± 4.76 1.142 0.259
    孕周(d) 266 ± 3.42 266 ± 5.31 −0.125 0.872
    孕前BMI(kg/m2 22.03 ± 4.24 20.64 ± 2.24* −2.068 0.042
    产前BMI(kg/m2 27.62 ± 3.37 26.93 ± 2.76 −1.165 0.253
    OGTT0h(mmol/L) 4.90 ± 0.84 4.29 ± 0.50* −4.430 0.000
    OGTT2h(mmol/L) 8.37 ± 1.69 6.06 ± 1.05* −8.367 0.000
    TC(mmol/L) 5.98 ± 0.93 5.69 ± 0.70 0.588
    TG(mmol/L) 3.33(1.78,5.97) 3.70(1.71,11.89) 0.989
    HDL(mmol/L) 1.57 ± 0.24 1.70 ± 0.32 0.283
    LDL(mmol/L) 3.44 ± 0.82 3.01 ± 1.17 0.428
      与GDM组比较,*P < 0.05
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    实时定量PCR结果显示GDM孕妇网膜脂肪组织中Chemerin mRNA的表达与正常对照组无统计学差异。Chemerin蛋白质[2.99 (0.04,7.90) vs 2.21(0.02,13.30),P = 0.010]在GDM组的表达有统计学意义,见图1

    图  1  网膜脂肪组织中Chemerin蛋白的相对表达
    Figure  1.  The relative expression of Chemerin in omental adipose tissue

    IRS-1mRNA[5.47(4.00,5.61)vs 3.41(2.17,4.24),P = 0.027]及蛋白[ 2.79(2.06,3.49)vs 1.76(0.23,2.11),P = 0.024]在GDM孕妇大网膜脂肪组织中的表达明有统计学意义,见图2

    图  2  网膜脂肪组织中IRS-1mRNA及蛋白的表达
    Figure  2.  The relative expression of IRS-1 mRNA and protein in omental adipose tissue

    免疫沉淀发现,GDM患者大网膜脂肪组织中IRS-1酪氨酸磷酸化显著降低[0.60(0.01,1.74) vs 4.06(0.06,54.41),P = 0.012],2者比较有统计学意义,见图3

    图  3  网膜脂肪组织中IRS-1酪氨酸磷酸化表达
    Figure  3.  The tyrosine phosphorylation of IRS-1 in omental adipose tissue

    WB检测网膜脂肪组织中Chemerin的表达,发现GDM组的相对表达显著增高,IRS-1的表达降低,经免疫共沉淀后发现IRS-1的酪氨酸磷酸化水平低于NGT组,差异有统计学意义,见图4

    图  4  网膜脂肪组织中Chemerin、IRS-1及酪氨酸磷酸化表达
    1,2列是 GDM;3,4 列 NGT。
    Figure  4.  The relative expression of Chemerin,IRS-1 and tyrosine phosphorylation in omental adipose tissue

    Spearman或Pearson相关性分析Chemerin与IRS-1及IRS-1酪氨酸磷酸化水平发现,Spearman相关性分析发现Chemerin 蛋白表达与OGTT 2 h血糖(r = 0.453,P = 0.002)密切相关;Chemerin mRNA与产前BMI(r = 0.645,P = 0.000)密切相关;Chemerin蛋白表达与IRS-1蛋白(r = 0.762,P = 0.000)正相关;IRS-1酪氨酸磷酸化水平与OGTT 0 h PG(r = -0.351,P= 0.014)、OGTT 2 h PG(r = -0.313,P = 0.034)密切相关。

    妊娠期间脂肪组织的增加,尤其是腹部内脏脂肪组织的增加严重影响糖脂代谢的平衡[10]。网膜脂肪组织分泌的Chemerin是血清Chemerin的主要来源之一[11],Chemerin可提高脂肪组织的胰岛素敏感性,改善胰岛素的抵抗[8]。Chemerin与脂肪量的相关性取决于葡萄糖代谢状态[12]及血清胰岛素水平[13]。脂肪的蓄积及脂肪细胞体积的增大可使脂肪细胞Chemerin的合成及分泌增多,Chemerin可促进脂肪细胞的分化成熟及脂代谢,如此反复可引起更高水平Chemerin的表达,肥胖及Chemerin的高表达促进系统性炎症的发生,加剧肥胖及脂代谢紊乱的发生,高TG则可促进脂肪组织分泌更高水平Chemerin[14]。不同剂量Chemerin不同时期 3T3-L1细胞对胰岛素刺激下的葡萄糖的摄取及IRS-1的酪氨酸磷酸化不同[8],高胰岛素水平可增强脂肪组织中的chemerin的分泌,在体外和动物研究中,趋化素影响胰岛素的传递和葡萄糖降解,导致脂肪细胞和骨骼肌中的胰岛素抵抗[15]。在本研究中发现IRS-1的酪氨酸磷酸化水平降低与空腹血糖及餐后血糖密切相关,餐后血糖的升高与网膜脂肪组织中Chemerin的表达密切相关,GDM孕妇网膜脂肪组织中Chemerin的表达显著高于正常糖耐量孕妇,由此提示GDM网膜脂肪组织中Chemerin的高表达是引起餐后糖耐量异常的原因之一。

    肥胖与胰岛素抵抗是血清中Chemerin升高的协同因素[7],且Chemerin水平与睡眠时间长,红肉和含糖饮料摄入量高及乳制品摄入量低呈线性关系[16]。孕期热量来源低于58%碳水化合物的性摄入对于降低GDM孕妇血糖管控有一定促进作用[17]。因此,妊娠期间合理饮食,积极体重控制不仅可以保持健康的体态,更重要的是降低GDM的胰岛素抵抗状态,改善母儿不良预后。

  • [1] Li H D,Chen G. In vivo reprogramming for CNS repair:Regenerating neurons from endogenous glial cells[J]. Neuron,2016,91(4):728-738. doi: 10.1016/j.neuron.2016.08.004
    [2] Barker R A,Gotz M,Parmar M. New approaches for brain repair-from rescue to reprogramming[J]. Nature,2018,557(7705):329-334. doi: 10.1038/s41586-018-0087-1
    [3] Lei W,Li W,Ge L,et al. Non-engineered and engineered adult nurogenesis in mammalian brains[J]. Front Neurosci,2019,13(13):131.
    [4] Olof T,Ulrich P,Daniel A,et al. Generation of induced neurons via direct conversion in vivo[J]. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America,2013,110(17):7038-7043. doi: 10.1073/pnas.1303829110
    [5] Liu Y G,Miao Q L,Yuan J C,et al. Ascl1 converts dorsal midbrain astrocytes into functional neurons in vivo[J]. The Journal of Neuroscience:the Official Journal of the Society for Neuroscience,2015,35(25):9336-9355. doi: 10.1523/JNEUROSCI.3975-14.2015
    [6] Li S L,Shi Y H,Yao X,et al. Conversion of astrocytes and fibroblasts into functional noradrenergic neurons[J]. Cell Reports,2019,28(3):682-697. doi: 10.1016/j.celrep.2019.06.042
    [7] Brulet R,Matsuda T,Zhang L,et al. Neuron1 instructs neuronal conversion in non-reactive astrocytes[J]. Stem Cell Reports,2017,8(6):1506-1515. doi: 10.1016/j.stemcr.2017.04.013
    [8] Niu W,Zang T,Smith D K,et al. SOX2 reprograms resident astrocytes into neural progenitors in the adult brain[J]. Stem Cell Reports,2015,4(5):780-794. doi: 10.1016/j.stemcr.2015.03.006
    [9] Yin J C,Zhang L,Ma N X,et al. Chemical Conversion of human fetal astrocytes into neurons through modulation of multiple signaling pathways[J]. Stem Cell Reports,2019,12(3):488-501. doi: 10.1016/j.stemcr.2019.01.003
    [10] Liu M H,Li W,Zheng J J,et al. Differential neuronal reprogramming induced by NeuroD1 from astrocytes in grey matter versus white matter[J]. Neural Regen Res,2020,15(2):342-351. doi: 10.4103/1673-5374.265185
    [11] Guo Z Y,Zhang L,Wu Z,et al. In vivo direct reprogramming of reactive glial cells into functional neurons after brain injury and in an Alzheimer’ s disease model[J]. Cell Stem Cell,2014,14(2):188-202. doi: 10.1016/j.stem.2013.12.001
    [12] Su Z,Niu W,Liu M L,et al. In vivo conversion of astrocytes to neurons in the injured adult spinal cord[J]. Nat Commun,2014,5:3338. doi: 10.1038/ncomms4338
    [13] Zarei-Kheirabadi M,Hesaraki M,Kiani S,et al. In vivo conversion of rat astrocytes into neuronal cells through neural stem cells in injured spinal cord with a single zinc-finger transcription factor[J]. Stem Cell Res Ther,2019,10(1):644-653.
    [14] Yang T,Dai Y,Chen G,et al. Dissecting the dual role of the glial scar andscar-forming astrocytes in spinal cord injury[J]. Front Cell Neurosci,2020,14:78.
    [15] Yang T,Xing L,Yu W,et al. Astrocytic reprogramming combined with rehabilitation strategy improves recovery from spinal cord injury[J]. FASEB J,2020,34(11):15504-15515. doi: 10.1096/fj.202001657RR
    [16] Shen S W,Duan C L,Chen X H,et al. Neurogenic effect of VEGF is related to increase of astrocytes transdifferentiation into new mature neurons in rat brains after stroke[J]. Neuropharmacology,2016,108:451-461. doi: 10.1016/j.neuropharm.2015.11.012
    [17] Yamashita T,Shang J,Nakano Y,et al. In vivo direct reprogramming of glial linage to mature neurons after cerebral ischemia[J]. Sci Rep,2019,9(1):10956. doi: 10.1038/s41598-019-47482-0
    [18] Chen Y C,Ma N X,Pei Z F,et al. A NeuroD1 AAV-Based gene therapy for functional brain repair after ischemic injury through in vivo astrocyte-to-neuron conversion[J]. Mol Ther,2020,28(1):217-234. doi: 10.1016/j.ymthe.2019.09.003
    [19] Rivetti di Val Cervo P,Romanov R A,Spigolon G,et al. Induction of functional dopamine neurons from human astrocytes in vitro and mouse astrocytes in a Parkinson's disease model[J]. Nat Biotechnol,2017,35(5):444-452. doi: 10.1038/nbt.3835
    [20] Israel Z,Asch N. Reversing a Model of Parkinson's disease with in situ converted nigral neurons[J]. Mov Disord,2020,35(11):1955. doi: 10.1002/mds.28306
    [21] Wu Z,Parry M,Hou X Y,et al. Gene therapy conversion of striatal astrocytes into GABAergic neurons in mouse models of Huntington’ s disease[J]. Nat Commun,2020,11(1):1105. doi: 10.1038/s41467-020-14855-3
    [22] Mo J L,Liu Q,Kou Z W,et al. MicroRNA-365 modulates astrocyte conversion into neuron in adult rat brain after stroke by targeting Pax6[J]. Glia,2018,66(7):1346-1362. doi: 10.1002/glia.23308
    [23] Ghasemi-Kasman M,Hajikaram M,Baharvand H,et al. MicroRNA-Mediated in vitro and in vivo direct conversion ofastrocytes to neuroblasts[J]. PLoS One,2015,10(6):e0127878. doi: 10.1371/journal.pone.0127878
    [24] Magnusson J P,Göritz C,Tatarishvili J,et al. A latent neurogenic program in astrocytes regulated by Notch signaling in the mouse[J]. Science,2014,346 (6206):237-241. doi: 10.1126/science.346.6206.237
    [25] Zamboni M,Llorens-Bobadilla E,Magnusson J P,et al. A widespread neurogenic potential of neocortical astrocytes is induced by injury[J]. Cell Stem Cell,2020,27(4):605-617. doi: 10.1016/j.stem.2020.07.006
    [26] Cieślar-Pobuda Artur,Knoflach Viktoria,Ringh Mikael V,et al. Transdifferentiation and reprogramming:Overview of the processes,their similarities and differences[J]. Biochimica et Biophysica Acta,2017,1864(7):1359-1369. doi: 10.1016/j.bbamcr.2017.04.017
    [27] 徐磊,王晓冬. 星形胶质细胞诱导分化为神经细胞的研究进展[J]. 神经解剖学杂志,2018,34(3):409-412.
  • [1] 廉坤, 李咏梅, 施诚龙, 陈怡兰, 张磊, 杨薇, 许秀峰.  综合生物信息学方法识别精神分裂症状中关键线粒体自噬基因, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20250104
    [2] 梁国晶, 冀琨, 张恺纯, 张玉芳, 安晶, 张钰鸽, 文娟, 任海燕.  益生菌对脑缺血再灌注损伤大鼠Aβ表达的影响及神经元的保护作用, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20240506
    [3] 李瑾瑜, 冯良升, 高扬, 李钰, 吴帮旭, 邹英鹰.  DRD1在神经系统疾病和功能中的研究进展, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20240501
    [4] 李婷, 郭维华.  糖酵解重编程在口腔鳞状细胞癌中的研究进展, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20230611
    [5] 邹超杰, 唐义凯, 杜书文, 程宇琪.  调控海马神经元中CDC42蛋白活性对小鼠记忆和焦虑行为影响的研究, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20221105
    [6] 谭小兵, 张敏, 郭宇, 杜琳玲, 戴青原.  miR-130b-3p促进人牙源性iPSCs重编程的作用, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20221204
    [7] 李梦楠, 徐焕焕, 刘亚南, 杨双, 李崇阳, 徐世莲.  伏核神经元ERK1/2在GalR1激活对神经痛大鼠镇痛作用中的机制, 昆明医科大学学报.
    [8] 马晨丽, 杨根梦, 闫倩文, 张枫弋, 石振金, 周一卿, 王一航, 赵永娜, 张冬先, 李利华, 洪仕君.  天麻素干预甲基苯丙胺依赖大鼠星形胶质细胞、神经元变化及炎性因子IL-6、TNF-α的表达, 昆明医科大学学报.
    [9] 聂祖庆, 张琼, 王鹏飞, 杨丽娟, 杨雯虹, 王若花, 马林昆, 杨明.  外伤性视神经损伤后大鼠视网膜中细胞因子的变化和来源, 昆明医科大学学报.
    [10] 安媛.  血液净化对脓毒性脑病神经元特异性烯醇化酶的影响, 昆明医科大学学报.
    [11] 邓永前.  深低温停循环对大鼠海马神经元电压依赖阴离子通道表达的影响, 昆明医科大学学报.
    [12] 于洋.  神经生长因子NGF的神经元保护作用机制及临床应用研究现状, 昆明医科大学学报.
    [13] 李俊彦.  七叶皂苷对体外培养大鼠神经元生长的作用及其与BDNF的关系, 昆明医科大学学报.
    [14] 李棋.  抗神经生长因子抗体对大鼠慢性坐骨神经压迫损伤模型的脊髓胶质细胞激活的抑制作用, 昆明医科大学学报.
    [15] 刘翱翔.  经颅磁刺激在神经系统疾病中的应用, 昆明医科大学学报.
    [16] 李劲涛.  P38-一种信号分子在神经系统疾病中的作用, 昆明医科大学学报.
    [17] 邵建林.  HO-1对氧糖剥夺海马神经元线粒体运动调节蛋白的影响, 昆明医科大学学报.
    [18] 段艳萍.  GAP-43治疗大鼠完全性脊髓损伤后Nogo-A在神经元的表达, 昆明医科大学学报.
    [19] 毛希宏.  人脐带间充质干细胞的培养鉴定及其向神经元细胞分化的研究, 昆明医科大学学报.
    [20] 成年恒河猴和大鼠脊髓神经元及星型胶质细胞的特异识别, 昆明医科大学学报.
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出版历程
  • 收稿日期:  2020-12-16
  • 刊出日期:  2021-04-09

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