留言板

尊敬的读者、作者、审稿人, 关于本刊的投稿、审稿、编辑和出版的任何问题, 您可以本页添加留言。我们将尽快给您答复。谢谢您的支持!

姓名
邮箱
手机号码
标题
留言内容
验证码

近端胃切除双通道重建及全胃切除术用于胃上部癌根治术的疗效

袁野 常剑 刘冬波 姜保成

陈兴龙, 张敏, 杨琪瑶, 罗永谋, 曹婷婷, 唐丽萍, 李勇. 茯苓95%乙醇提取物三萜类化学成分的UPLC-IT-TOF/MS分析[J]. 昆明医科大学学报, 2021, 42(11): 1-8. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20211101
引用本文: 袁野, 常剑, 刘冬波, 姜保成. 近端胃切除双通道重建及全胃切除术用于胃上部癌根治术的疗效[J]. 昆明医科大学学报, 2021, 42(4): 102-106. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20210419
Xing-long CHEN, Min ZHANG, Qi-yao YANG, Yong-mou LUO, Ting-ting CAO, Li-ping TANG, Yong LI. Analysis of Triterpene Chemical Constituents in Poria cocos 95% Ethanol Extract via UPLC-IT-TOF/MS[J]. Journal of Kunming Medical University, 2021, 42(11): 1-8. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20211101
Citation: Ye YUAN, Jian CHANG, Dong-bo LIU, Bao-cheng JIANG. Efficacy of Double Tract Reconstruction of Proximal Gastrectomy and Radical Total Gastrectomy of Upper Gastric Cancer[J]. Journal of Kunming Medical University, 2021, 42(4): 102-106. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20210419

近端胃切除双通道重建及全胃切除术用于胃上部癌根治术的疗效

doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20210419
基金项目: 江苏省自然科学基金资助项目(BK20181186)
详细信息
    作者简介:

    袁野(1979~),男,湖北荆州人,医学学士,副主任医师,主要从事胃肠肿瘤微创手术临床工作

    通讯作者:

    姜保成,E-mail:vegm91@163.com

  • 中图分类号: R656.6

Efficacy of Double Tract Reconstruction of Proximal Gastrectomy and Radical Total Gastrectomy of Upper Gastric Cancer

  • 摘要:   目的  研究近端胃切除双通道重建及根治性全胃切除术用于胃上部癌的疗效。  方法  纳入2014年4月至2019年4月于上海交通大学医学院附属苏州九龙医院择期拟行胃上部癌根治术患者50例为研究对象,随机分为2组。观察组(25例)行根治性近端胃切除双通道重建术;对照组(25例)行根治性全胃切除术。观察2组术中出血量、手术时间、术后肛门排气时间、术后进食时间、术后下床活动时间及术后住院时间,比较2组术后并发症发生情况,并分析2组术前及术后6个月单次进食量、体质量及血清胃蛋白酶Ⅰ型与Ⅱ型比值、血清胃泌素、血红蛋白、血浆白蛋白水平。  结果  观察组术中出血量、手术时间、术后下床活动时间、术后住院时间均显著低于对照组(P < 0.05);术后肛门首次排气时间及术后进食时间组间比较,差异无统计学意义(P > 0.05)。2组不良反应发生率分别为20.00%、36.00%,2组比较,差异无统计学意义(P > 0.05)。2组术后6个月单次进食量、血清胃泌素、血清胃蛋白酶Ⅰ型/Ⅱ型均显著低于术前(P < 0.05);观察组术后6个月血清胃泌素显著高于对照组(P < 0.05),单次进食量、血清胃蛋白酶Ⅰ型/Ⅱ型较对照组比较,差异无统计学意义(P > 0.05)。2组术后6个月血红蛋白、血浆白蛋白、体质量均显著低于术前(P < 0.05);观察组术后6个月血红蛋白、血浆白蛋白、体质量均显著高于对照组(P < 0.05)。  结论  近端胃切除双通道重建术保留了胃及十二指肠相关生理功能,患者远期营养状况较好,且手术难度小、创伤小、安全性较好,临床应引起足够重视。
  • 茯苓为多孔菌科真菌茯苓Poria cocos (Schw.) Wolf的干燥菌核,寄生于松科植物的根茎上,埋于土壤下繁衍而成。茯苓又名松苓、茯菟、茯灵,其野生资源稀少,栽培品种主要产于安徽、湖北、湖南、云南、贵州等地。茯苓味甘、淡,性平,归心、肺、脾、肾经;具有利水渗湿,健脾,宁心功效;用于水肿尿少,痰饮眩悸,脾虚食少,便溏泄泻,心神不安,惊悸失眠。茯苓始载于《神农本草经》,应用广泛,不仅是多种方剂和中成药的原料,有“十药九茯苓”之说,也添加在各种食品中,是沿用千年的药食两用的中药材[1]。羊毛甾烷四环三萜类化合物是茯苓主要成分之一,其结构类型主要分为四种,分别为羊毛甾-8-烯型三萜、羊毛甾-7,9(11)-二烯型三萜、3,4-开环-羊毛甾-8-烯型三萜、3,4-开环-羊毛甾-7,9(11)-二烯型三萜[2]。现代药理学研究结果显示,茯苓三萜类化合物是茯苓传统药效和拓展功效的物质基础[3-9]。本文采用超高效液相色谱串联离子阱飞行时间质谱(UPLC-IT-TOF/MS) 技术定性分析云南大理产茯苓95%乙醇提取物的三萜类化学成分,并对其裂解规律进行总结,为该产地茯苓的药效物质基础解析和质量控制提供参考依据。

    LC-MS分析所用仪器为岛津公司(Shimaduz,Kyoto,Japan)生产的LCMS-IT-TOF仪。液相色谱仪控制器型号为CBM-20A,泵型号为LC-30AD,自动进样器型号为SIL-30AC,脱气装置型号为DGU-20A5,二极管阵列检测器为SPD-M20A,柱温箱型号为CTO-20AC。

    茯苓购自昆明市螺蛳湾中药材市场(产自云南大理),经昆明医科大学唐丽萍教授鉴定为多孔菌科真菌茯苓Poria cocos (Schw.) Wolf的干燥菌核;色谱纯乙腈购自德国默克公司,色谱纯甲酸购自上海阿拉丁试剂公司,超纯水由默克MingCheTM-D24UV设备制备。

    干燥药材茯苓10 g,粉碎,用95%乙醇250 mL浸泡1 h,加热至微沸,加热1 h,过滤浓缩得浸膏1.8 g。取5 mg 浸膏,加入2 mL甲醇超声溶解,离心(10000 r/min×10 min)取上清液进样。

    色谱柱为UHPLC XB-C18色谱柱 (2.1×100 mm,1.8 µm),柱温30℃,紫外检测波长范围为190~400 nm。流动相A:甲酸/水(0.05/100,v/v),B:乙腈;流速为0.20 mL/min;梯度洗脱条件:起始梯度为5% B,0~50 min,5%~90 % B;50~55 min,90% B;55~56 min,90%~5% B;56~60 min,5% B。进样量为:2 µL。

    质谱条件:离子源为ESI源,三氟乙酸钠校正,电喷雾正负离子同时检测。分析条件如下:喷雾电压为4.50 kV或− 3.50 kV;检测电压为1.65 kV;旋转式真空泵压力为71.0 Pa;干燥气压力为110.0 kPa;喷雾气为氮气,流速为1.5 L/min;曲形裂解器(CDL)温度为200 ℃;加热模块温度为200 ℃;离子捕获时间为10 ms;母离子选择范围为m/z ±3.0 Da;裂解能量(CID)为50%;裂解气为氩气,扫描范围为m/z 100~1000。

    Shimadzu Composition Formula Predictor软件用于预测分子式,并通过多级质谱数据分析,结合氮规则和Scifinder数据库检索推断化合物的基本结构信息。

    茯苓的95%乙醇提取物在实验色谱、质谱条件下响应良好,经过分析发现其主要化合物为羊毛甾烷型四环三萜,保留时间集中在15~50 min之间,最大离子流图(BPC)如图1所示。共分析出24个羊毛甾烷型四环三萜类成分,鉴定了22个,化学结构如图2所示。

    图  1  茯苓在LC-MS分析条件下的最大离子流图
    Figure  1.  Base peak chromatogram (BPC) of Poria cocos in both positive (1BPC) and negative ion mode (3BPC)
    图  2  茯苓羊毛甾烷型三萜的化学结构
    Figure  2.  The lanostane triterpenoids chemical structures of Poria cocos

    色谱峰的鉴定结果如表1所示,主要展示色谱峰保留时间、分子量、分子式、二级质谱碎片以及化合物名称等。根据化合物的结构不同,将识别到的色谱峰分为三类,包括羊毛甾-8-烯型三萜、羊毛甾-7,9(11)-二烯型三萜和其他羊毛甾三萜类型,通过不同类型化合物的结构特征来说明其鉴别过程。

    表  1  茯苓中色谱峰的LC/ESI–MSn鉴定结果(1)
    Table  1.  Characterization of the peaks in LC/ESI–MSn chromatogram of Poria cocos (1)
    色谱峰保留时间分子式分子量ESI+ (误差,mDa)ESI (误差,mDa)化合物名称
    1 17.51 C30H48O5 488 [M+Na]+ 511.3328 (−6.6)
    MSn: 511-493.3316 (C30H46O4, +2.8),
    453.3319 (C30H44O3, −4.4)
    [M−H]487.3402 (−2.7) Daedaleanic acid B[10]
    2 19.15 C30H46O6 502 [M+Na]+ 525.3301 (+11.4) [M−H]501.3164 (−5.8) Pinicolic acid F [9]
    3 19.90 C31H48O5 500 MSn: 483.3468 (C31H46O4, −0.1), 465.3319 (C31H44O3, −4.4) [M−H]499.3427 (−0.2) 29α-羟基去氢土莫酸
    29α-Hydroxydehy-dropachymic acid[14]
    4 19.90 C30H48O6 504 [M+Na]+ 527.3331 (−1.2)
    MSn: 527- 495.3077 (C29H44O5, +6.3), 437.2886 (C27H42O3, −14.0)
    [M−H]503.3373 (−0.5) -
    5 21.69 C31H48O6 516 [M+Na]+539.3047 (+6.8)
    MSn: 539- 521.2809 (C31H46O5, −6.5), 507.2633 (C30H44O5, −4.6)
    [M−H]515.3056 (+4.2) 5,​8α-​Dioxy-​3β,​16α-​dihydroxylanosta-​7,
    ​24-​ dien-​21-​oic acid [18]
    6 21.97 C31H46O6 514 [M+H]+515.3331 (−3.6)
    MSn: 515- 497.3360 (C31H44O5, +9.8), 443.2839
    (C31H38O2, −10.6), 433.3267 (C30H40O2, +16.6), 425.2996
    (C28H40O3, −5.4), 415.2933 (C30H38O, −6.2), 385.2397
    (C24H32O4, +2.4), 377.2199 (C25H28O3, +8.8), 335.2455
    (C24H30O, +8.6), 253.1655 (C18H20O, +6.8), 247.1670
    (C16H22O2, −2.3), 229.1583 (C16H20O, −0.4), 201.1704 (C15H20, +6.6)
    [M−H]513.3151 (−7.1)
    MSn: 513- 483.3167 (C31H46O4, −5.6)
    5α,​8α-​过氧化去氢土莫酸
    5α,​8α-​Peroxydehydrotumulos​ic acid[19]
    7 22.54 C31H46O5 498 [M+H]+ 499.3287 (−13.1)
    MSn: 481.3308 ( (C31H44O4, −0.4), 463.3147 (C31H42O3, −6.0)
    [M−H]497.3193 (−7.9)
    MSn: 497- 403.2418 (C24H26O5, −7.2), 389.2435 (C27H34O2, −5.1),
    371.2336(C27H32O, −4.4), 355.2131 (C26H28O, +6.4)
    6α-羟基猪苓酸C
    6α-​Hydroxypolyporenic acid C[11]
    8 23.69 C33H48O8 572 [M+H]+573.3312 (−11.1) [M−H]571.3213 (−6.3) 3-(2-羟基乙酰氧基)- 5α,​8α-​过氧化去氢土莫酸
    3-(2-hydroxyacetoxy)- 5α,​
    8α-​peroxydehydrotumulosic acid [20]
    9 25.78 C31H46O5 498 [M+H]+ 499.3433 (+1.5)
    MSn: 481.3408 ( (C31H44O4, +9.6)- 451.3147 (C30H42O3, −1.4),
    435.2955 (C29H38O3, +6.2), 325.2132 (C22H28O2, −3.0),
    299.2112 (C20H26O2, +10.6)
    [M−H]497.3236 (−3.6) -
    下载: 导出CSV 
    | 显示表格
    表  1  茯苓中色谱峰的LC/ESI–MSn鉴定结果(2)
    Table  1.  Characterization of the peaks in LC/ESI–MSn chromatogram of Poria cocos (2)
    色谱峰保留时间分子式分子量ESI+ (误差,mDa)ESI- (误差,mDa)化合物名称
    10 28.42 C32H50O6 530 [M+Na]+553.3443 (−5.7)
    MSn: 553- 535.3422 (C32H48O5, +2.8), 495.3437
    (C30H48O4, −0.8), 477.3274 (C30H46O3, −6.5), 435.3364
    (C28H44O2,+13.0), 353.2548 (C22H34O2, +9.7)
    [M−H]529.3461 (−7.4) 3-乙酰氧基-16α,26-二羟基-羊毛甾-8,24-二烯-21-酸
    3-​ Acetoxy-​16α,​26-​dihydroxy-lanosta-8,24-dien-21-oic acid[10]
    11 29.01 C33H50O6 542 MSn: 525.3513 (C33H48O5, −6.2)- 507.3459
    (C33H46O4, −1.0), 465.3365 (C31H44O3, +0.2),
    447.3544 (C32H46O, −7.7)
    [M−H]541.3460 (−7.5)
    6α-羟基去氢茯苓酸
    6α-​Hydroxy-dehydropachym​ic acid[13]
    12
    31.15 C31H48O4 484 [M+Na]+485.3592 (−3.3)
    MSn: 485- 467.3492 (C31H46O3, −2.9), 449.3408 (C31H44O2, −0.6),
    311.2388 (C22H30O, +1.9), 293.2259 (C22H28, −0.5)
    [M−H]483.3413 (−6.7)
    MSn: 483- 437.3393 (C30H46O2, −3.2), 421.2978 (C29H42O2, −13.4)
    3β,15α-二羟基-羊毛甾-7,9(11),24-三烯-21-酸
    3β,15α-dihydroxylanosta-7,9(11),24-trien-21-oic acid[15]
    13

    30.27 C31H50O4 486 [M+H]+ 487.3722 (−6.0)
    MSn: 487- 469.3719 (C31H48O3, +4.3),
    451.3553 (C31H46O2, −1.8), 343.2701
    (C23H34O2, +6.9), 313.2464 (C22H32O, −6.2),
    295.2405 (C22H30, −1.5)
    [M−H]485.3570 (−6.6)
    MSn: 483- 423.3371 (C29H44O2,+10.2)
    土莫酸
    Tumulosic acid[10-11]
    14 31.74 C31H46O5 498 [M+H]+ 499.3368 (−5.0)
    MSn: 499- 481.3292 (C31H44O4, −2.0), 463.3291 (C31H42O3, +8.4),
    421.3024 (C29H40O2, −7.7), 325.2198 (C22H28O2, +3.8), 307.2102 (C22H26O, +4.6)
    [M−H]497.3199 (−7.3)
    MSn: 497- 425.2942 (C31H38O, +9.2)
    29-羟基猪苓酸 C
    29-​Hydroxypolyporenic acid C[16]
    15 33.26 C33H52O6 544 [M+H]+ 545.3733 (−10.4)
    MSn: 545- 527.3696 (C33H50O5, −3.5), 451.3097 (C31H46O2, +2.6), 433.3267 (C31H44O, −19.8), 295.2433 (C22H30,+2.3)
    [M−H]543.3623 (−6.8)
    MSn: 543- 467.3227 (C31H48O3, +9.6)
    25-羟基茯苓酸
    25-​Hydroxypachimic acid[11]
    16 33.57 C31H46O4 482 [M+H]+ 483.3420 (−4.9)
    MSn: 483- 465.3327 (C31H44O3, −3.6), 447.3246 (C31H42O2, −1.2), 309.2214 (C22H28O, +0.1)
    [M−H]481.3266 (−5.7)
    MSn: 481- 311.1817 (C21H28O2, −14.0)
    猪苓酸 C
    Polyporenic acid C[11]
    17 34.28 C31H48O4 484 [M+H]+ 485.33637 (+1.2)
    MSn: 483- 467.3486 (C31H46O3, −3.4), 449.3532 (C31H44O2, +11.8), 311.2343 (C22H30O, −2.6), 293.2330 (C22H28,+6.6)
    [M−H]483.3378 (−10.2)
    MSn:
    ​3-表去氢土莫酸
    3-​epi-​Dehydrotumulosic acid acid[11]
    下载: 导出CSV 
    | 显示表格
    表  1  茯苓中色谱峰的LC/ESI–MSn鉴定结果(3)
    Table  1.  Characterization of the peaks in LC/ESI–MSn chromatogram of Poria cocos (3)
    色谱峰保留时间分子式分子量ESI+ (误差,mDa)ESI (误差,mDa)化合物名称
    18 34.89 C31H48O4 484 [M+H]+ 485.3589 (−3.6)
    MSn: 483- 467.3526 (C31H46O3, +0.6), 449.3377 (C31H44O2, −3.7), 311.2408 (C22H30O, +3.9), 293.2265 (C22H28, 0.1)
    [M−H]483.3406 (−7.4)
    MSn: 481- 337.2465 (C24H34O, −7.2)
    去氢土莫酸
    Dehydrotumulosic acid[17]
    19 38.63 C33H50O5 526 [M+H]+ 527.3671(−6.0)
    MSn: 527- 509.3564 (C33H48O4, −6.1), 449.3398 (C31H44O2, −1.6), 293.2240 (C22H28, −2.4)
    [M−H]525.3493 (−9.2)
    MSn:
    3-表去氢茯苓酸
    3-​epi-​Dehydropachymic acid[14]
    20 39.64 C32H50O5 514 [M+H]+ 515.3708(−2.3)
    MSn: 515- 497.3555 (C32H46O4, −7.0), 437.3398 (C30H44O2, −1.6), 295.2422 (C22H30,+0.2)
    [M−H]513.3532 (−5.3)
    3-O-乙酰基-16α-羟基松苓酸
    3-​O-​Acetyl-​16α-​hydroxytrametenolic acid[12]
    21 40.64 C33H50O5 526 [M+H]+ 527.3697 (−3.4)
    MSn: 527- 509.3594 (C33H48O4, −3.1), 449.3446 (C31H44O2, +3.2), 353.2501 (C24H32O2, +2.6),
    293.2254 (C22H28, −1.0)
    [M−H]525.3511 (−7.4)
    MSn: 525- 479.3471 (C32H48O3, −6.0), 465.3351 (C31H46O3, −2.3), 355.2295 (C23H32O3, +1.6),
    去氢茯苓酸dehydropachymic acid[11]
    22 41.87 C33H52O5 528 [M+H]+ 529.3820 (−6.8)
    MSn: 529- 511.3735 (C33H50O4, −4.7), 451.3599 (C31H46O2, −3.0), 295.2419 (C22H30, −0.1)
    [M−H]527.3666 (−7.6)
    MSn: 527- 465.3330 (C31H46O3, −4.4)
    茯苓酸
    Pachymic acid[10-11]
    23 45.90 C30H46O3 454 [M+H]+ 455.3532 (+1.2)
    MSn: 455- 437.3457 (C30H44O2, +4.3), 311.2370 (C22H30O, +0.1), 295.2381 (C22H30, −3.9)
    [M−H]453.3342 (−3.2) 3-羟基-羊毛甾-7,9(11),24-三烯-21酸
    Dehydrotrametenolic acid[12]
    24 47.30 C30H48O3 456 [M+H]+ 457.3663 (−1.3)
    MSn: 457- 439.3502 (C30H46O2, −6.9), 313.2445 (C22H32O, −8.1), 295.2463 (C22H30, +4.3)
    [M−H]455.3471 (−6.0) 3-氢化松苓酸
    trametenolic acid[13]
    下载: 导出CSV 
    | 显示表格

    A型羊毛甾-8-烯型三萜(1,10,13,15,20,22,24)主要结构特征核心结构四元环中的C-8和C-9位之间为双键,C-3位均有羟基或乙酰氧基取代;除了化合物24,C-16位均有α位羟基取代;化合物1中C-17侧链的C-24是羰基取代,其他化合物C-24位均为双键。对于A型化合物而言,较容易失去C-17位支链,且同时失去一个H2O,形成含[M+H-C9H16O2-H2O]+的碎片离子。以色谱峰13为例,在正负离子模式下容易检测到其[M+H]+和 [M-H]-离子,分别为m/z 487.3722和485.3570,预测其分子式为C31H50O4,以m/z 487.3722为母离子进行轰击,检测到5个碎片,分别为m/z 469.3719 (C31H48O3,+4.3),451.3553 (C31H46O2,−1.8),343.2701 (C23H34O2,+6.9),313.2464 (C22H32O,−6.2),295.2405 (C22H30,−1.5),推测其分别对应于[M+H-H2O]+,[M+H-2H2O]+,[M+H-CO2-2H2O-4CH4]+,[M+H-C9H16O2-H2O]+,[M+H-C9H16O2-2H2O]+;通过查阅文献比对,茯苓中化合物土莫酸(Tumulosic acid)满足该裂解条件,因此将色谱峰13鉴定为土莫酸(Tumulosic acid)。色谱峰22的[M+H]+和[M-H]-离子分别为m/z 529.3820和527.3666,预测其分子式为C33H52O5,检测到丢失H2O离子碎片m/z 511.3735 (C33H50O4,−4.7),进一步裂解还形成了451.3599 (C31H46O2,−3.0),295.2419 (C22H30,−0.1)等碎片离子,分别对应[M+H-CH3COOH-H2O]+,[M+H-CH3COOH-H2O-C9H16O2]+,与茯苓酸(Pachymic acid)的裂解方式相符,因此将色谱峰22鉴定为茯苓酸(Pachymic acid)。图3展示了主要色谱峰的质谱图。

    B型羊毛甾-7,9(11)-二烯型三萜(2,3,7,11~12,14,16~19,21,23)主要结构特征为核心结构四元环中的C-7、C-8位和C-9、C-11位之间形成异环双键,C-3位均有羟基、乙酰氧基或氧代取代,与A型相似,较容易失去C-17位支链,且同时失去一分子H2O,形成含[M+H-C9H16O2-H2O]+的碎片离子。色谱峰14检测到其[M+H]+峰为m/z 499.3368,因此预测其分子式为C31H46O5m/z 481.3292 (C31H44O4,−2.0),463.3291 (C31H42O3,+8.4)是连续失去二个H2O产生的碎片,m/z 421.3024 (C29H40O2,−7.7)对应的是[M+H-H2O-CO2-CH4]+碎片离子,m/z 325.2198 (C22H28O2,+3.8)为失去C-17侧链和一个H2O生成的[M+H-C9H16O2-H2O]+的碎片离子,m/z 307.2102 (C22H26O,+4.6)为失去C-17侧链和二个H2O生成的[M+H-C9H16O2-2H2O]+的碎片离子,这些裂解行为与29-羟基猪苓酸 C (29-Hydroxypolyporenic acid C)相符,因此色谱峰14被鉴定为29-羟基猪苓酸 C (29-Hydroxypolyporenic acid C)。图3展示了主要色谱峰的质谱图。

    C型其他羊毛甾三萜类型(5,6,8)的主要结构特征为C-5位和C-8位通过过氧键链接,因此该类型化合物的主要质谱裂解特征行为是C-5位和C-8位过氧基的丢失,色谱峰5和6分别检测到失去过氧基的碎片离子m/z 507.2633 (C30H44O5,−4.6)和385.2397 (C24H32O4,+2.4)、229.1583 (C16H20O,−0.4);以及侧链羧基先裂解,再进一步裂解C-17侧链,形成丰富的离子碎片,并结合数据库搜索,可将其结构初步鉴定。

    图  3  茯苓中主要色谱峰的质谱图
    Figure  3.  The mass spectrum of main chromatogram peaks in Poria cocos

    我国茯苓人工栽培历史悠久,且有广泛的茯苓资源,但是茯苓的不同品种和不同地域是导致其有效成分差异的主要原因。UPLC-IT-TOF/MS结合了液相的快速分离能力和飞行时间质谱的准确结构鉴定功能的优点,具有高效分离能力、高分辨和高灵敏度的特性,故本文利用UPLC-IT-TOF/MS技术分析鉴定云南大理的茯苓95%乙醇提取物的化学成分,发现其主要化合物为羊毛甾烷四环三萜,结构类型包括A型羊毛甾-8-烯型三萜(1,10,13,15,20,22,24)[9-13]、B型羊毛甾-7,9(11)-二烯型三萜(2,3,7,11~12,14,16~19,21,23)[11-17]和C型其他羊毛甾三萜类型。该类化合物在ESI源正离子模式响应较好,较易检测到[M+H]+和[M+Na]+离子,其二级质谱碎片较为丰富。通过以[M+H]+或[M+Na]+离子作为母离子进行轰击,其主要裂解途径为失去核心结构四元环的羟基或者乙酰基,形成碎片同时C-17位侧链也容易失去,C-17位侧链含有羧基的化合物较容易脱羧再裂解C-17位侧链,形成含有22个碳原子的离子碎片,并通过将化合物的结构进行简单分离,总结其质谱裂解规律。

    三萜类化合物是茯苓的主要化学成分之一,其已被报道具有免疫调节、抗炎及抗肿瘤等多种生物功效。研究结果显示,产自云南大理的茯苓95%乙醇提取物的主要成分是羊毛甾烷四环三萜类化合物,化合物结构特征是其他羊毛甾三萜类型(5,6,8)的C-5位和C-8位均通过过氧键链接,为进一步研究该种茯苓的化学成分和生物活性提供了科学依据。

  • 表  1  两组一般资料比较[($\bar x \pm s$),n(%)]

    Table  1.   Comparison of general information between the two groups [($\bar x \pm s$),n(%)]

    指标观察组(n = 25)对照组(n = 25)χ2/tP
    年龄(岁) 62.31 ± 6.12 61.86 ± 6.24 0.257 0.798
    男性 17(68.00) 16(64.00) 0.089 0.765
    体质量指数(kg/m2 22.64 ± 1.45 21.92 ± 1.50 1.726 0.091
    组织学分型
     腺癌 20(80.00) 21(84.00) 0.136 0.713
     非腺癌 5(20.00) 4(16.00)
    分化程度
     低分化 17(68.00) 18(72.00) 0.095 0.758
     高中分化 8(32.00) 7(28.00)
    pTNM分期
     Ⅰ期 4(16.00) 5(20.00) 0.329 0.948
     Ⅱ期 9(36.00) 7(28.00)
     Ⅲ期 12(48.00) 13(52.00)
    下载: 导出CSV

    表  2  2组手术相关指标比较($\bar x \pm s$

    Table  2.   Comparison of operation related indexes between the two groups ($\bar x \pm s$

    组别手术
    时间(min)
    术中
    出血量(mL)
    术后肛门首次
    排气时间(h)
    术后进食
    时间(h)
    术后下床活动
    时间(h)
    术后住院
    时间(d)
    观察组(n = 25) 176.34 ± 14.61 112.34 ± 23.61 27.34 ± 11.27 37.84 ± 8.85 52.67 ± 11.58 8.96 ± 1.73
    对照组(n = 25) 208.61 ± 16.37 148.94 ± 27.86 26.76 ± 12.08 38.15 ± 8.96 59.84 ± 11.21 11.64 ± 2.63
    t 7.354 5.011 0.176 0.123 2.224 4.257
    P < 0.001 < 0.001 0.861 0.903 0.031 < 0.001
    下载: 导出CSV

    表  3  2组术后并发症发生率比较[n(%)]

    Table  3.   Comparison of the incidence of postoperative complications between the two groups [n(%)]

    组别n吻合口瘘吻合口狭窄肺部感染肠梗阻胃食管反流烧心倾倒综合征总计
    观察组 25 1(4.00) 0(0.00) 0(0.00) 1(4.00) 2(8.00) 0(0.00) 1(4.00) 5(20.00)
    对照组 25 1(4.00) 3(12.00) 1(4.00) 2(8.00) 0(0.00) 1(4.00) 1(4.00) 9(36.00)
    下载: 导出CSV

    表  4  2组术前及术后6个月胃肠消化功能比较($\bar x \pm s$

    Table  4.   Comparison of gastrointestinal digestive function between the two groups before and 6 months after operation ($\bar x \pm s $

    组别单次进食量(mL) 血清胃泌素(pmol/L) 血清胃蛋白酶Ⅰ型/Ⅱ型
    术前术后6个月 术前术后6个月 术前术后6个月
    观察组(n = 25) 1126.21 ± 139.53 684.40 ± 84.12# 12.76 ± 4.55 44.38 ± 10.11#* 11.20 ± 2.48 4.55 ± 1.10#
    对照组(n = 25) 1134.09 ± 132.21 674.96 ± 80.74# 12.24 ± 4.47 35.17 ± 8.24# 11.52 ± 2.46 4.64 ± 1.23#
    t 0.205 0.405 0.408 3.531 0.458 0.273
    P 0.839 0.687 0.685 0.001 0.649 0.786
      与同组术前比较,#P < 0.05;与对照组比较,*P < 0.05。
    下载: 导出CSV

    表  5  2组术前及术后6个月营养状况比较($\bar x \pm s$

    Table  5.   Comparison of nutritional status before and 6 months after operation between the two groups ($\bar x \pm s$

    组别血红蛋白(g/L) 血浆白蛋白(g/L) 体质量(kg)
    术前术后6个月 术前术后6个月 术前术后6个月
    观察组(n = 25) 138.46 ± 16.34 112.34 ± 12.41#* 46.07 ± 4.31 41.32 ± 3.74# 65.31 ± 6.58 60.87 ± 6.30#
    对照组(n = 25) 139.76 ± 16.82 101.43 ± 10.16# 45.35 ± 4.36 37.13 ± 3.21# 64.87 ± 6.53 57.21 ± 5.47#
    t 0.277 3.401 0.832 4.251 0.237 2.193
    P 0.783 0.001 0.410 < 0.001 0.813 0.033
      与同组术前比较,#P < 0.05;与对照组比较,*P < 0.05。
    下载: 导出CSV
  • [1] 张晋杰,王杰,胡文庆. 进展期胃上部癌淋巴结清扫的现状与研究进展[J]. 中华胃肠外科杂志,2018,21(2):236-240. doi: 10.3760/cma.j.issn.1671-0274.2018.02.024
    [2] 聂孟良,李铭,杨萌,等. 中老年胃癌根治术后发生胆囊炎的危险因素分析[J]. 中国肿瘤外科杂志,2017,9(6):373-375. doi: 10.3969/j.issn.1674-4136.2017.06.010
    [3] Ma X,Zhou W,Wang C,et al. Clinicopathologic characteristics in patients with upper third gastric cancer following radical surgical treatment:A retrospective cohort study[J]. Medicine(Baltimore),2018,97(45):13-17.
    [4] 樊林. 食管胃结合部腺癌手术技术:双通道重建在早期食管胃结合部腺癌手术中的应用[J]. 中华胃肠外科杂志,2019,22(2):129-129.
    [5] 国家“863”重大项目“胃癌分子分型与个体化诊疗”课题组. 胃癌病理分型和诊断标准的建议[J]. 中华病理学杂志,2010,39(4):266-269. doi: 10.3760/cma.j.issn.0529-5807.2010.04.013
    [6] Tao K,Dong J H. Phase I clinical research of jejunal interposition in adenocarcinoma of the esophagogastric junction II/III proximal gastrectomy[J]. Gastroenterol Res Pract,2016,32(6):346-350.
    [7] 沈阳,程元光,文刚. 脾脏托出式脾门淋巴结清扫在中上部胃癌根治术中的应用[J]. 中华胃肠外科杂志,2017,20(1):108-109. doi: 10.3760/cma.j.issn.1671-0274.2017.01.025
    [8] 任俭,崔建明,黄俊杰,等. 近端胃切除残胃空肠双通道吻合术的疗效与安全性研究[J]. 皖南医学院学报,2019,38(3):264-267. doi: 10.3969/j.issn.1002-0217.2019.03.017
    [9] 陶凯,黄庆兴,张万红,等. Siewert Ⅱ型和Ⅲ型食管胃结合部腺癌近端胃切除术间置空肠单通道和双通道消化道重建的前瞻性随机对照研究[J]. 中华消化外科杂志,2018,17(8):830-835. doi: 10.3760/cma.j.issn.1673-9752.2018.08.011
    [10] 陈芸,张双平,郭石平,等. 食管胃结合部腺癌269例根治术后生存分析[J]. 肿瘤研究与临床,2017,29(12):819-823. doi: 10.3760/cma.j.issn.1006-9801.2017.12.006
    [11] Long A J,Burton P R,De V M,et al. Radical gastric cancer surgery results in widespread upregulation of pro-tumourigenic intraperitoneal cytokines[J]. ANZ J Surg,2018,88(5):370-376. doi: 10.1111/ans.14267
    [12] 庞霄君,丁秋龙,潘文胜. 早期食管癌内镜黏膜下剥离术后胃体上部穿孔一例诊治分析[J]. 实用肿瘤杂志,2019,34(3):267-269.
    [13] Bencivenga M,Verlato G,Han D S,et al. Validation of two prognostic models for recurrence and survival after radical gastrectomy for gastric cancer[J]. Br J Surg,2017,104(9):1235-1243. doi: 10.1002/bjs.10551
    [14] 赵志强,李双喜,李子禹,等. 新辅助治疗对局部进展期胃上部癌D2根治术淋巴结获取的影响[J]. 中华消化外科杂志,2018,17(4):372-376. doi: 10.3760/cma.j.issn.1673-9752.2018.04.010
    [15] 武锋,徐钧,贾凯. 完全腹腔镜与开腹全胃D2根治术治疗局部进展期胃上部癌近期疗效比较[J]. 肿瘤研究与临床,2019,31(4):237-240. doi: 10.3760/cma.j.issn.1006-9801.2019.04.005
    [16] 庄立国. 全胃切除术与近端胃切除术治疗胃上部癌的临床效果对比分析[J]. 中国医药指南,2018,16(31):152-153.
    [17] Schouwenburg M G,Busweiler L A D,Beck N,et al. Hospital variation and the impact of postoperative complications on the use of perioperative chemo(radio)therapy in resectable gastric cancer. Results from the dutch upper gI cancer audit[J]. Eur J Surg Oncol,2018,44(4):532-538. doi: 10.1016/j.ejso.2018.01.008
    [18] 黄昌明,郑志芳,林密. 腹腔镜胃癌根治术保脾脾门淋巴结清扫术[J]. 中华普外科手术学杂志(电子版),2017,11(6):464-464. doi: 10.3877/cma.j.issn.1674-3946.2017.06.004.
    [19] 王宪中,赵迎威,李冬冬,等. 腹腔镜辅助胃癌根治术淋巴结清扫效果的临床对比[J]. 黑龙江医学,2017,41(3):234-235. doi: 10.3969/j.issn.1004-5775.2017.03.019
  • [1] 蔡筱颖, 沈一, 龚梦娇, 李娜.  对比聚桂醇泡沫硬化剂与聚桂醇注射液在内痔患者中的疗效及术后并发症, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20221225
    [2] 郭云瑞, 杨皓, 张业才, 张国云, 王德财, 角述兰, 张宁丽, 周臣.  腹部区域阻滞联合静脉镇痛对老年患者术后并发症的影响, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20221222
    [3] 夏宇晓, 冯秀丽, 郭玮, 钟善娇, 丁榆, 董嫚嫚, 杨学伟, 周英.  住院老年患者衰弱评估及对术后并发症预测效能的比较, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20220723
    [4] 陈竹梅, 华月英, 温艳艳, 李辉.  行超声引导下PICC置管患者并发症的发生情况及影响因素, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20210209
    [5] 李志玲, 王新文.  不同血管通路血液透析患者透析充分性评估及并发症发生率的比较, 昆明医科大学学报.
    [6] 湛自兰.  护理干预对脑出血非手术患者心理状态、并发症以及满意度的影响, 昆明医科大学学报.
    [7] 黄松霞.  循证护理对冠心病介入治疗术后患者并发症发生率及舒适度的影响, 昆明医科大学学报.
    [8] 王娟.  全面护理干预对肾病综合征患者临床疗效以及并发症的影响, 昆明医科大学学报.
    [9] 熊守庆.  两种路径行冠脉介入诊疗的效果及并发症比较, 昆明医科大学学报.
    [10] 李沛.  改良型Clavien手术并发症分级系统分析微通道经皮肾镜取石术后并发症, 昆明医科大学学报.
    [11] 李越华.  腹腔镜肝切除的学习曲线, 昆明医科大学学报.
    [12] 黄芸.  微量泵持续滴注气道湿化与注射器间歇灌注湿化在气管切开患者中的临床效果对比, 昆明医科大学学报.
    [13] 姜炎冰.  尿流动力学检查的并发症的原因分析及护理干预, 昆明医科大学学报.
    [14] 刘乐万.  钻孔引流术治疗慢性硬膜下血肿术后并发症临床分析, 昆明医科大学学报.
    [15] 王虹粤.  MARS人工肝在肝衰竭并发症中的观察与护理, 昆明医科大学学报.
    [16] 金志贤.  支气管镜检查并发出血2 079例临床回顾性分析, 昆明医科大学学报.
    [17] 张跃平.  腹股沟无张力疝修补术并发症的防治, 昆明医科大学学报.
    [18] 张跃平.  腹腔镜胆囊切除术并发症的预防, 昆明医科大学学报.
    [19] 李志军.  颌后切口横断腮腺入路治疗髁突中低位骨折, 昆明医科大学学报.
    [20] 肖旭辉.  上颌第3磨牙疾患及其并发症的关系, 昆明医科大学学报.
  • 加载中
计量
  • 文章访问数:  2525
  • HTML全文浏览量:  2131
  • PDF下载量:  14
  • 被引次数: 0
出版历程
  • 收稿日期:  2020-12-18
  • 刊出日期:  2021-04-01

目录

/

返回文章
返回