Isolation, Configurational Assignment, and Cytotoxic Effects of Dihydroflavones from BaeckeafrutescensL
-
摘要:
目的 研究岗松(Baeckeafrutescens)中黄酮类成分,并评价其细胞毒活性。 方法 利用正反相硅胶柱色谱、MCI柱色谱、葡聚糖凝胶Sephadex LH-20及半制备型高效液相等分离技术进行分离,根据MS、NMR及ORD与ECD计算等方法鉴定结构及其绝对构型;MTT法测定了对4种人类肿瘤细胞株的细胞毒活性。 结果 从中分离得到5个二氢黄酮类化合物并确定其绝对构型,其结构分别鉴定为(2S)-5, 7-二羟基-6-甲基二氢黄酮( 1 ),(±)-5-羟基-7-甲氧基-6-甲基二氢黄酮 ( 2 ),(2S)-乔松酮 ( 3 ),(±)-5-羟基-7-甲氧基-8-甲基二氢黄酮 ( 4 )和(±)-6-甲基-圣草酚 ( 5 )。 结论 化合物 1 、 3 和 5 为首次从该植物中分离得到;通过手性拆分和ECD计算判定这5个二氢黄酮类化合物分别为光学纯单体 ( 1 和 3 )、外消旋体 ( 4 )和不对等对映体 ( 2 和 5 );化合物 3 对DU145细胞株具有显著的细胞毒活性,IC50值为4.56 μM。 Abstract:Objective To investigate the flavone constituents from Baeckeafrutescens and evaluate the cytotoxic effects of these isolates. Methods The chemical compositions were isolated by normal- and reverse-phase silica gel column chromatography, MCI gel column chromatography, Sephadex LH-20, and semi-preparative HPLC. Their structures and absolute configurations were established by comparison of their NMR and MS spectra with reported data in the literature, as well as optical rotatory dispersion (ORD) and electronic circular dichroism (ECD) calculations. Their cytotoxicity of flavones was evaluated against four human tumor cell lines by MTT method. Results Five dihydroflavone were obtained and identified as(2S)-5, 7-dihydroxy-6-methylflavanone ( 1 ), (±)-5-hydroxy-7-methoxy-6-methylflavanone ( 2 ), (2S)-pinostrobin ( 3 ), (±)-5-hydroxy-7-methoxy-8-methylflavanone ( 4 ), and (±)-6-methyl-eriodictyol ( 5 ). Conclusions Compound 1 , 3 , and 5 were isolated from this plant for the first time; The five dihydroflavones were determined to beoptical pure ( 1 and 3 ), racemic ( 4 ), and incoordinately enantiomeric ( 2 and 5 ) compounds, respectively. Compound 3 showed significant cytotoxicity against DU145 cells with an IC50 value of 4.56 μM. -
Key words:
- Baeckeafrutescens /
- Dihydroflavone /
- Absolute configuration determination /
- Cytotoxicity
-
岗松 (Baeckeafrutescens)为桃金娘科 (Myrtaceae) 岗松属 (BaeckeaL.) 植物,是南方民间的常用著名药材。以叶如松针较短而得名,又名鸡儿松、松毛枝、长松、沙松等。全球约有68种岗松属植物,而我国仅有岗松一个种,主要分布于海南、广东、广西、福建、浙江、江西等省份[1]。岗松属植物主要含有挥发油、间苯三酚、黄酮类、萜类等化学成分。其中,二氢黄酮类成分是一种的具有广泛的药理作用的化合物,如抗癌[2]、PTP1B抑制[3]、抗氧化[4]、抗菌[5]和抗炎[6-7]等活性。具有生物活性的天然产物一直以来都是治疗各种疾病的新药的最有价值的来源之一[8]。
作为本研究组对桃金娘科植物中活性次生代谢产物挖掘研究工作的一部分,本研究从岗松的枝叶中分离得到5个二氢黄酮类化合物,图1,其中化合物1、3和5为首次从该植物中分离得到。尽管这些成分已被报道[9-16],但它们的绝对构型报道较混乱。因此,笔者采用手性拆分、ORD和ECD计算的方法进一步确定了它们的绝对构型。此外,评价了这些成分对4种人肿瘤细胞株(HCT116、Hela、DU145和A549)的细胞毒活性。
1. 材料与方法
1.1 材料与仪器
旋光数据在AUTOPOL Ⅵ旋光仪上测定;圆二色谱在Applied Photophysics分光偏振计上测定;NMR谱在Bruker Avance Ⅲ-500核磁共振仪上测定,TMS作为内标;ESI-MS在Agilent 1290 UPLC/6540 Q-TOF质谱仪上测定;硅胶 (80~100目,200~300目,中国青岛海祥化工厂);凝胶为Sephadex LH-20 (40~70 μm;Healthcare BioSciences AB,Uppsala, Sweden),反相填充材料Rp-18(50 μm, 德国Merck公司);半制备型HPLC为Agilent 1260型高效液相色谱;色谱柱为ZORBAXSB-C18柱 (9.4 × 250 mm, 5.0 μm) , CHIRALPAK IC (4.64 × 250 mm, 10 × 250 mm, 5.0 μm)柱。
1.2 植物标本来源
岗松 (B. frutescens) 枝叶于2016年10月采自广西壮族自治区东兴市,由中国科学院昆明植物研究所李嵘研究员鉴定。标本保存于中国科学院昆明植物研究所植物化学与西部植物资源持续利用国家重点实验室刘海洋课题组。
1.3 实验方法
1.3.1 提取分离
岗松枝叶 (10.0 kg) 粉碎后甲醇回流提取3次,合并提取液,减压回收甲醇,得到浸膏1.3 kg。浸膏用1.0 kg 硅胶 (80~100 目)拌样,2.0 kg 硅胶 (200~300 目)装柱,用石油醚-乙酸乙酯 (1∶0→0∶1,v/v) 和氯仿-甲醇 (1∶0→1∶1,v/v) 梯度洗脱得到七个 (Fr.1-Fr.7) 不同馏分。Fr.2 (53 g) 用正相硅胶划段(石油醚-丙酮,1∶0→1∶1,v/v)后,合并为三个馏分,经反复使用Rp-18色谱柱(甲醇-水,1∶1→1∶0,v/v),硅胶柱层析 (石油醚-丙酮,10∶1→1∶1,v/v), Sephadex LH-20色谱柱(氯仿-甲醇,1∶1,v/v)及半制备HPLC(乙腈-水,60%→80%,v/v)分离纯化得到了化合物1 (81.1 mg)、2 (23.6 mg)和3(401.5 mg)。Fr. 5 (48 g) 用MCI gel脱色,脱色后经Rp-18色谱柱 (甲醇-水,1∶1→1∶0,v/v),硅胶柱层析(氯仿-甲醇,1∶1,v/v),进一步使用半制备HPLC(乙腈-水,30%→50%,v/v)分离纯化得到了化合物4 (7.2 mg)和5 (118.7 mg)。
1.3.2 手性分析及拆分
分离得到的化合物1-5分别进行HPLC手性分析 (色谱柱:CHIRALPAK I,4.64 × 250 mm, 5.0 μm; 色谱条件:正己烷-异丙醇,1∶0→3∶2, v/v, 30 min) , 显示化合物1和3只有一个峰,化合物2、4和5分别都有两个峰(图2)。进一步手性拆分 (色谱柱:CHIRALPAK I,10 × 250 mm, 5.0 μm; 色谱条件:正己烷-异丙醇,70∶30,v/v),分离得到(+)-2,(-)-2,(+)-4,(-)-4, (+)-5和(-)-5。
1.3.3 计算方法
ORD和ECD的计算主要通过Gaussian 16软件来实现的。首先,化合物1和2的构象通过CONFLEX 8B软件进行了分析,并分别给出了3个 (图3)和1个 (图4) 可用构象。这些初始结构通过密度泛函理论 (DFT) 在B3LYP/6-31+G(d) 水平上进行了优化。优化后构象的ECD计算通过依时性密度泛函理论 (TDDFT) 在B3LYP/6-311++G (2d, p) 水平上进行,而ORD计算则通过依时性密度泛函理论 (TDDFT) 在B3LYP/6-31++G (d, p) 水平上进行。计算后的ECD图谱通过SpecDis 1.6软件来实现其可视化。
1.3.4 细胞毒活性
在96孔微孔板上使用MTT法评估化合物1‒5对四种人肿瘤细胞株 (HCT116、CCRF-CEM、DU145和A549)的细胞毒活性。对化合物进行了5个剂量测试,剂量范围为10‒8~10‒4 M,各化合物的IC50值通过非线性回归分析计算。以广谱抗肿瘤药喜树碱(CPT)为阳性对照,每个试验重复3次。
2. 结果
化合物1:淡黄色粉末C16H14O6;negative ESI-MSm/z 269 [M‒H]‒;[α] ‒46.8 (c = 0.22,MeOH);ECD (MeOH) λmax (Δε)220 (+3.26),237 (‒0.08),256 (+0.79),281 (‒3.56),336 (+0.46) nm;1H NMR(Acetone-d6,500 MHz) δ: 5.51 (1H,dd,J = 12.9,2.7 Hz,H-2),1.97 (3H,s,H3-6),6.07 (1H,s,H-8),7.38 (1H,m,H-4′ ),7.43 (2H,m,H-3′ /H-5′ ),7.55 (2H,d,J = 7.4 Hz,H-2′ /H-6′ ),12.42 (1H,s,OH-5),3.31 (1H,dd,J = 17.1,12.9 Hz,H-3a),2.78 (1H,dd,J = 17.1,2.7 Hz,H-3b);13C NMR (Acetone-d6,125 MHz)δ: 79.9 (C-2),43.7 (C-3),196.8 (C-4),162.4 (C-5),104.8 (C-6),7.0 (6-CH3),165.1 (C-7),95.2 (CH-8),161.6 (C-9),103.0 (C-10),140.2 (C-1′ ),127.3 ×2 (CH-2′ /CH-6′ ),129.4 ×2 (CH-3′ /CH-5′ ),129.3 (CH-4′ )。以上数据与文献[10]报道的5,7-二羟基-6-甲基二氢黄酮的数据基本一致。
初步ORD计算结果表明, (2R)-1的比旋光值为正值(+180.38), 而化合物1的测试比旋光值为‒46.8 (c = 0.22,MeOH), 由此推断化合物1为2S构型,此结论通过后续的ECD计算(图5)结果进一步得到证实。
化合物2:淡黄色粉末C17H16O4;negative ESI-MSm/z283 [M -H]-; [α] +21.5 (c = 0.14, MeOH) for (+)-2, [α] -21.4 (c = 0.14, MeOH) for (-)-2; ECD (MeOH) λmax (Δε)220 (-3.20), 242 (-0.19), 254 (-0.41), 287 (+2.79), 338 (-0.43) nm for (+)-2, ECD (MeOH) λmax (Δε)220 (+3.20), 237 (+0.19), 256 (+0.41), 287 (+2.79), 338 (+0.43) nm for (-)-2; 1H NMR (CDCl3, 500 MHz) δ: 2.01 (3H, s, CH3-6), 2.86 (1H, dd, J = 17.1, 3.1 Hz, H-3b), 3.04 (1H, dd, J = 17.1, 12.7 Hz, H-3a), 3.86 (3H, s, OCH3-7), 5.42 (1H, dd, J = 12.7, 3.1 Hz, H-2), 6.10 (1H, s, H-8), 7.36~7.48 (5H, m, H-2'-H-6'), 12.12 (1H, s, OH-5); 13C NMR data (CDCl3, 125 MHz)δ: 78.5 (C-2), 43.5 (C-3), 196.3 (C-4), 162.4 (C-5), 105.0 (C-6), 166.0 (C-7), 92.3 (C-8), 158.9 (C-9), 102.9 (C-10), 139.0 (C-1'), 125.9 (C-2'), 128.8 (C-3'), 128.6 (C-4'), 128.8 (C-5'), 125.9 (C-6'), 7.6 (6-Me), 55.9 (7-OMe). 13C NMR data显示其与化合物1高度相似,主要区别在于多了一个甲氧基的信号。化合物2与文献[11]报道的化合物5-羟基-7-甲氧基-6-甲基二氢黄酮数据基本一致。经进一步手性拆分并结合ECD计算结果 (图6) 分别确定(+)-2 {[α] +21.5 (c = 0.14, MeOH)} 和(-)-2{[α]-21.4 (c = 0.14, MeOH)}的绝对构型分别为2R和2S。
化合物3:淡黄色粉末C17H16O4; negative ESI-MS m/z269 [M ‒H]‒; [α] ‒20.8 (c = 0.12, MeOH); 1H NMR (CDCl3, 500 MHz)δ: 2.82 (1H, dd, J = 17.2, 3.1Hz, H-3b), 3.08 (1H, dd, J = 17.2, 13.1Hz, H-3a), 3.80 (3H, s, OCH3-7), 5.41 (1H, dd, J = 13.1, 3.1 Hz, H-2), 6.06 (1H, d, J = 2.3Hz, H-6), 6.08 (1H, d, J = 2.3Hz, H-8), 7.37~7.47 (5H, m, H-2'‒H-6'), 12.03 (1H, s, OH-5); 13C NMR data (CDCl3, 125 MHz)δ: 79.3 (C-2), 43.4 (C-3), 195.8 (C-4), 164.2 (C-5), 95.2 (C-6), 168.0 (C-7), 94.3 (C-8), 162.8 (C-9), 103.2 (C-10), 138.4 (C-1'), 126.2 (C-2'), 128.9 (C-3'), 128.9 (C-4'), 128.9 (C-5'), 126.2 (C-6'), 55.7(7-OMe)。以上数据与文献报道的(2S)-乔松酮[11,12]数据基本一致。通过与化合物1的比旋光值对比而判定其绝对构型为2S。
化合物4:淡黄色粉末C17H16O4; negative ESI-MS m/z283 [M ‒H]‒; [α]+38.5 (c = 0.16, MeOH) for (+)-4,[α]‒38.6 (c = 0.16, MeOH) for (‒)-4;ECD (MeOH) λmax (Δε) 218 (‒3.45), 243 (‒0.17), 254 (‒0.41), 289 (+3.00), 338 (‒0.44) nm for (+)-4, ECD (MeOH) λmax (Δε) 218 (+3.45), 243 (+0.17), 254 (+0.41), 289 (‒3.00), 338 (+0.44) nm for (‒)-4; 1H NMR (CDCl3, 500 MHz) δ: 2.01 (3H, s, CH3-6), 2.84 (1H, dd, J = 3.1, 3.1 Hz, H-3b), 3.04 (1H, dd, J = 3.1, 3.1 Hz, H-3a), 3.86 (3H, s, OCH3-7), 5.42 (1H, dd, J = 3.1, 3.1 Hz, H-2), 6.10 (1H, s, H-6), 7.42 (5H, m, H-2'‒H-6'), 12.12 (1H, s, OH-5); 13C NMR data (CDCl3, 125 MHz)δ: 78.5 (C-2), 43.4 (C-3), 196.3 (C-4), 162.4 (C-5), 92.2 (C-6), 166.0 (C-7), 104.9 (C-8), 158.8 (C-9), 102.8 (C-10), 138.9 (C-1'), 125.8 (C-2'), 128.8 (C-3'), 128.5 (C-4'), 128.8 (C-5'), 125.8 (C-6'), 55.9 (7-OMe), 7.5 (8-Me)。以上数据与文献报道的(±)-5-羟基-7-甲氧基-8-甲基二氢黄酮[13-14]数据基本一致。
化合物5:淡黄色粉末C17H16O4; negative ESI-MS m/z283 [M ‒H]‒; [α]‒41.5 (c = 0.18, MeOH) for (‒)-5;ECD (MeOH) λmax (Δε) 208(‒0.93), 219 (‒3.42), 243 (‒0.35), 254 (‒0.41), 292 (+3.21), 338 (‒0.54) nm for (+)-5, ECD (MeOH) λmax (Δε) 208 (+0.93), 219 (+3.42), 243 (+0.35), 254 (+0.41), 292 (‒3.21), 338 (+0.54) nm for (‒)-5; 1H NMR (Pyridine-d5, 500 MHz) δ: 2.39 (3H, s, CH3-6), 2.92 (1H, J = 17.0, 2.6 Hz, H-3a), 3.33 (1H, J = 17.0, 13.0 Hz, H-3b), 5.49 (1H, dd, J = 13.0, 2.6 Hz, H-2), 7.10 (1H, d, J = 8.1 Hz, H-5'), 7.27 (1H, d, J = 8.1 Hz, H-6'), 7.52 (1H, s, H-2'), 13.03 (1H, s, OH-5); 13C NMR data (Pyridine-d5, 125 MHz)δ:79.9 (C-2), 43.6 (C-3), 196.6 (C-4), 162.3 (C-5), 105.0 (C-6), 166.3 (C-7), 95.1 (C-8), 161.6 (C-9), 102.7 (C-10), 130.9 (C-1'), 115.4 (C-2'), 147.5 (C-3'), 147.9 (C-4'), 116.5 (C-5'), 118.8 (C-6'), 7.7 (6-Me)。以上数据与文献报道的(±)-6-甲基-圣草酚[15-16]数据基本一致。
通过与化合物2的测试ECD图谱对比,(+)-4/(+)-5和(‒)-4/(‒)-5的绝对构型分别确定为2R和2S,见图7。
以广谱抗肿瘤药喜树碱 (CPT) 为阳性对照,评价了以上化合物对4种人肿瘤细胞株 (HCT116、CCRF-CEM、DU145和A549)的细胞毒活性。结果显示化合物(±)-2对HCT116和DU145有一定的活性,IC50值分别为(41.84 ± 3.66) μΜ和(13.54 ± 1.15) μΜ;而化合物3对DU145的具有显著的细胞毒活性,IC50值为(4.56 ± 0.42) μΜ。
3. 讨论
从岗松中分离得到5个二氢黄酮类化合物,通过NMR和MS数据分析以及ORD和ECD计算确定了它们的结构及其绝对构型,其中化合物1、3和5为首次从该植物中分离得到。化合物3对DU145的具有显著的细胞毒活性,IC50值为4.56 μM。从自然界中得到的手性天然产物通常被认为是以光学纯形式生物合成的[17],但是已有大量的外消旋体或富含对映体的混合物已从自然来源报道[18]。有趣的是,岗松中的二氢黄酮类成分分别以光学纯 (1和3)、外消旋体 (4)和不对等对映体 (2和5)三种形式存在,此发现为二氢黄酮对映体的生物合成途径提供了一定证据。尽管比旋光值在一定程度上是判定光学纯单体绝对构型的重要指标之一[18],但在实际科学研究过程中,不对等对映体的实测值实际上是由对映体过量部分产生的,从而产生误判。因此,对于天然手性产物的立体异构体组成的评价理应引起更多的关注。
-
-
[1] 广西壮族自治区卫生厅. 广西中药材标准[M]. 南宁: 广西科技出版, 1996: 1. [2] Boozari M, Ebrahimi S N, Soltani S, et al. Absolute configuration and anti-cancer effect of prenylated flavonoids and flavonostilbenes from Sophorapachycarpa: Possible involvement of Wnt signaling pathway[J]. Bioorg Chem,2019,85:498‒504. [3] Yan H W, Zhu H, Yuan X, et al. Eight new biflavonoids with lavandulyl units from the roots of Sophoraflavescens and their inhibitory effect on PTP1B[J]. Bioorg Chem,2019,86:679‒685. [4] Zhu H, Yang Y N, Feng Z M, et al. Sophoflavanones A and B, two novel prenylated flavanones from the roots of Sophoraflavescens[J]. BioorgChem,2018,79:122‒125. [5] Navrátilová A, Schneiderová K, Veselá D, et al. Minor C-geranylated flavanones from Paulownia tomentosafruits with MRSA antibacterial activity[J]. Phytochemistry,2013,89:104‒113. [6] Ryu H W, Park M H, Kwon O K, et al. Anti-inflammatory flavonoids from root bark of Broussonetiapapyrifera in LPS-stimulated RAW264.7 cells[J]. BioorgChem,2019,92:103233. [7] Ma S G, Wang R B, Li W R, et al. New C-2 diastereomers of flavanone glycosides conjugated with 3-hydroxy-3-methylglutaric acid from the pericarp of Citrus grandis (L.) Osbeck[J]. BioorgChem,2018,80:519‒524. [8] Newman D J, Cragggm. Natural products as sources of new drugs over the nearly four decades from 01/1981 to 09/2019[J]. J Nat Prod,2020,83(3):770‒803. [9] Wollenweber E, Dietz V H, Schilling G, et al. Flavonoids from chemotypes of the goldback fern, Pityrogrammatriangularis[J]. Phytochemistry,1985,24(5):965‒971. [10] Mayer R. Flavonoids from Leptospermum scoparium[J]. Phytochemistry,1990,29(4):1340‒1342. [11] Smolarz H D, Mendyk E, Bogucka-kocka A, et al. Pinostrobin--an anti-leukemic flavonoid from Polygonumlapathifolium L. ssp. nodosum (Pers.) Dans[J]. CJ Biosci,2006,61(1-2):64‒68. [12] Bertelli D, Papotti G, Bortolotti L, et al. 1H-NMR simultaneous identification of health-relevant compounds in propolis extracts[J]. Phytochem Anal,2012,23(3):260‒266. [13] Junior G M V, Sousa C M D, Cavalheiro A J, et al. Phenolic derivatives from fruits of dipteryxlacuniferaducke and evaluation of their antiradical activities[J]. HelvChimActa,2008,91(11):2159−2167. [14] Huang Y H, Zeng W M, Li G Y, et al. Characterization of a new sesquiterpene and antifungal activities of chemical constituents from Dryopterisfragrans (L.) Schott[J]. Molecules,2014,19(1):507‒513. [15] Barton G M. 7-O-β-D-Glucosyl-3', 4', 5-trihydroxy-6-methyl flavanone-a new C-methyl flavanone glycoside from Douglas-fir [Pseudotsugamenziesii (Mirb.) Franco] roots[J]. Can J Chem,1969,47(5):869‒871. [16] Wu Z B, Zhao Y Y, Yang X W, et al. Flavonoids from Bauhinia glauca subsp. pernervosa[J]. Chem Pharm Bull,2009,57(6):628‒631. [17] Finefield J M, Sherman D H, Kreitman M, et al. Enantiomeric natural products: occurrence and biogenesis[J]. AngewChemInt Ed,2012,51(20):4802‒4836. [18] Batista A N L, Santos F M, Batista J M, et al. Enantiomeric mixtures in natural product chemistry: separation and absolute configuration assignment[J]. Molecules,2018,23(2):492‒509. -