留言板

尊敬的读者、作者、审稿人, 关于本刊的投稿、审稿、编辑和出版的任何问题, 您可以本页添加留言。我们将尽快给您答复。谢谢您的支持!

姓名
邮箱
手机号码
标题
留言内容
验证码

芒果苷元对TGF-β1诱导的HK-2细胞EMT的影响

徐爱萍 林华 高丽辉 李玲 陈梦威 王歌 杨娟 牛艳芬

徐爱萍, 林华, 高丽辉, 李玲, 陈梦威, 王歌, 杨娟, 牛艳芬. 芒果苷元对TGF-β1诱导的HK-2细胞EMT的影响[J]. 昆明医科大学学报, 2021, 42(7): 1-6. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20210701
引用本文: 徐爱萍, 林华, 高丽辉, 李玲, 陈梦威, 王歌, 杨娟, 牛艳芬. 芒果苷元对TGF-β1诱导的HK-2细胞EMT的影响[J]. 昆明医科大学学报, 2021, 42(7): 1-6. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20210701
Ai-ping XU, Hua LIN, Li-hui GAO, Ling LI, Meng-wei CHENG, Ge WANG, Juan YANG, Yan-fen NIU. Effect of Norathyriol on the Epithelial-mesenchymal Transition of HK-2 Cells Induced by TGF-β1[J]. Journal of Kunming Medical University, 2021, 42(7): 1-6. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20210701
Citation: Ai-ping XU, Hua LIN, Li-hui GAO, Ling LI, Meng-wei CHENG, Ge WANG, Juan YANG, Yan-fen NIU. Effect of Norathyriol on the Epithelial-mesenchymal Transition of HK-2 Cells Induced by TGF-β1[J]. Journal of Kunming Medical University, 2021, 42(7): 1-6. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20210701

芒果苷元对TGF-β1诱导的HK-2细胞EMT的影响

doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20210701
基金项目: 国家自然科学基金资助项目(81760666);云南省科技厅-昆明医科大学应用基础研究联合专项基金资助项目(2018FE001(-166));云南省教育厅科学研究基金资助项目(2019Y0350)
详细信息
    作者简介:

    徐爱萍(1994~),女,云南大理人,医学硕士,初级药师,主要从事内分泌代谢药理研究工作

    通讯作者:

    牛艳芬,E-mail: kmnyf2007@163.com

  • 中图分类号: R966

Effect of Norathyriol on the Epithelial-mesenchymal Transition of HK-2 Cells Induced by TGF-β1

  • 摘要:   目的   研究芒果苷元对TGF-β1诱导的HK-2细胞EMT的影响。   方法   MTT法检测各浓度芒果苷元对HK-2细胞活力的影响;用TGF-β1诱导HK-2细胞成EMT模型,并给以芒果苷元干预,在TGF-β1诱导24 h时显微镜下拍照记录细胞形态变化,划痕实验法检测细胞迁移能力,Transwell法检测细胞侵袭能力,Western blot法检测纤连蛋白(fibronectin,FN)和Ⅰ型胶原(collagen type Ⅰ,Col Ⅰ)蛋白表达水平。   结果   (1)芒果苷元(10-9~10-5 mol/L)浓度下HK-2细胞活力均无明显变化(P > 0.05);(2)与正常组相比,模型组细胞形态变长变梭,迁移和侵袭能力显著增强( P < 0.05,0.01),FN和ColⅠ蛋白表达水平显著上调( P < 0.05,0.01);与模型组相比,芒果苷元组细胞能维持原来的鹅卵石形,迁移和侵袭能力显著下降( P < 0.05,0.01),FN和ColⅠ蛋白表达水平显著下调( P < 0.05)。   结论   芒果苷元能抑制TGF-β1诱导的HK-2细胞迁移和侵袭,阻止细胞形态的改变,下调细胞外基质成分FN和ColⅠ的蛋白表达,从而抑制EMT的发展。
  • 图  1  芒果苷元对HK-2细胞活力的影响( $\bar x \pm s$,n = 3)

    注:NOR:正常组;NL:芒果苷元;Ben:苯溴马隆。

    Figure  1.  Effect of norathyriol on HK-2 cell viability

    图  2  芒果苷元对TGF-β1 诱导24 h后的HK-2细胞形态变化的影响(40×)

    注:NOR:正常组;MOD:模型组;NL:芒果苷元;Ben:苯溴马隆。

    Figure  2.  Effect of norathyriol on the morphological changes of HK-2 cells induced by TGF - β 1 for 24 h (40×)

    图  3  芒果苷元对TGF-β1诱导后HK-2细胞迁移率的影响(40×)

    Figure  3.  Effect of norathyriol on the migration of HK-2 cells induced by TGF - β 1 (40×)

    图  4  芒果苷元对TGF-β1诱导后的HK-2细胞的迁移率的影响( $\bar x \pm s$,n = 3)

    注:NOR:正常组;MOD:模型组;NL:芒果苷元;Ben:苯溴马隆。与模型组相比,*P < 0.05;**P < 0.01;与正常组相比,##P < 0.01。

    Figure  4.  Effect of norathyriol on the migration of HK-2 cells induced by TGF – β1 ( $\bar x \pm s$,n = 3)

    图  5  芒果苷元对TGF-β1诱导的HK-2细胞侵袭能力的影响(100×)

    Figure  5.  Effect of norathyriol on invasion of HK-2 cells induced by TGF - β 1(100 ×)

    图  6  芒果苷元对TGF-β1诱导的HK-2细胞侵袭能力的影响( $\bar x \pm s$,n = 3)

    注:NOR:正常组;MOD:模型组;NL:芒果苷元;Ben:苯溴马隆。与模型组相比,*P < 0.05;与正常组相比,##P < 0.01,one-way ANOVA。

    Figure  6.  Effect of norathyriol on invasion of HK-2 cells induced by TGF - β 1 ( $\bar x \pm s$,n = 3)

    图  7  芒果苷元对TGF-β1诱导的HK-2细胞ColⅠ蛋白表达水平的影响( $\bar x \pm s$,n = 3)

    注:NOR:正常组;MOD:模型组;NL:芒果苷元;Ben:苯溴马隆。与正常组相比,#P < 0.05;与模型组比,*P < 0.05,**P < 0.01,one-way ANOVA。

    Figure  7.  Effect of norathyriol on expression of colⅠprotein in HK-2 cells induced by TGF-β1 ( $\bar x \pm s$,n = 3)

    图  8  芒果苷元对TGF-β1诱导的HK-2细胞FN表达水平的影响( $\bar x \pm s$,n = 3)

    注:NOR:正常组;MOD:模型组;NL:芒果苷元;Ben:苯溴马隆。与正常组相比,##P < 0.01;与模型组比,*P < 0.05,one-way ANOVA。

    Figure  8.  Effect of norathyriol on expression of FN protein in HK-2 cells induced by TGF-β1 ( $\bar x \pm s$,n = 3)

  • [1] Liu B C,Tang T T,Lv L L,et al. Renal tubule injury:A driving force toward chronic kidney disease[J]. Kidney international,2018,93(3):568-579. doi: 10.1016/j.kint.2017.09.033
    [2] Djudiai S,Boor P. Cellular and molecular mechanisms of kidney fibrosis[J]. Molecular Aspects of Medicine,2019,65:16-36. doi: 10.1016/j.mam.2018.06.002
    [3] 石咏琪,王墨. 肾间质纤维化发生机制研究进展[J]. 现代医药卫生,2019,35(19):3002-3006. doi: 10.3969/j.issn.1009-5519.2019.19.020
    [4] Cruz-Solbes A S,Youker K. Epithelial to mesenchymal transition (EMT) and endothelial to mesenchymal transition (EndMT):role and implications in kidney fibrosis[J]. Results and Problems in Cell Differentiation,2017,60:345-372.
    [5] Iwano M,Plieth D,Danoff T M,et al. Evidence that fibroblasts derive from epithelium during tissue fibrosis[J]. The Journal of Clinical Investigation,2002,110(3):341-350. doi: 10.1172/JCI0215518
    [6] 遆安航,陈瑾,翟康欣,等. 连翘归尾煎对人乳腺癌MCF-7细胞增殖、迁移、凋亡和周期的影响[J]. 山西医科大学学报,2021,52(5):565-571.
    [7] Saral L,Michael Z,Raghu K. Partial epithelial-to-mesenchymal transition and other new mechanisms of kidney fibrosis[J]. Trends in Endocrinology and Metabolism,2016,27(10):681-695. doi: 10.1016/j.tem.2016.06.004
    [8] Meng X M,Nikolic-paterson D J,Lan H Y. TGF-β:the master regulator of fibrosis[J]. Nature Reviews. Nephrology,2016,12(6):325-338. doi: 10.1038/nrneph.2016.48
    [9] Xu C G,Zhu X L,Wang W,et al. Ursolic acid inhibits epithelial-mesenchymal transition in vitro and in vivo[J]. Pharmaceutical Biology,2019,57(1):169-175. doi: 10.1080/13880209.2019.1577464
    [10] Fan Y,Wang X,Li Y,et al. PAK4 enhances TGF-β1-induced epithelial- mesenchymal transition through activating β-catenin signaling pathway in renal tubular epithelial cells[J]. International Journal of Clinical and Experimental pathology,2018,11(6):3026-3035.
    [11] Song Y,Lv S S,Wang F,et al. Overexpression of BMP-7 reverses TGF-β1-induced epithelial-mesenchymal transition by attenuating the Wnt3/β-catenin and /Smad2/3 signaling pathways in HK-2 cells[J]. Molecular Medicine Reports,2019,21(2):833-841.
    [12] 周栋,傅海燕. 细胞外基质的产生、重塑与肾脏纤维化[J]. 江苏医药,2015,41(8):936-938.
    [13] 李淑菊,詹晓丹,田锋,等. 参地补肾胶囊含药血清对高糖诱导转分HK-2细胞ZO-1、α-SMA表达的影响[J]. 中国中医药科技,2018,25(6):797-800.
    [14] Louis K,Hertig A. How tubular epithelial cells dictate the rate of renal fibrogenesis?[J]. World Journal of Nephrology,2015,4(3):367-373. doi: 10.5527/wjn.v4.i3.367
  • [1] 尹小川, 尹瑞扬, 李冉华, 蔡方奇, 崔岳, 毕涛, 童兴和.  恶性胸膜间皮瘤细胞培养条件及CDKN2B对癌细胞的作用, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20240105
    [2] 刘邦卿, 李剑锋, 刘晓辉, 张劲男, 梁金屏.  miR-196b靶向ERG促进肺腺癌的增殖和迁移, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20231023
    [3] 徐冬杏, 唐波, 朱国, 雷学芬, 王秋虹, 魏东.  Twist1调控Bmi1对胆囊癌细胞侵袭迁移的影响及其机制研究, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20230320
    [4] 邹垚, 王梓瑜, 李皎, 李兴欣, 申亚琼, 徐敬, 金焰.  LOXL2及Snail蛋白表达水平与胆管癌患者术后生存率的关系, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20221215
    [5] 蒋玉娥, 钟兆铭, 高艳章, 王伟, 孙瑞梅, 孙传政.  转化生长因子β1在血小板促进甲状腺未分化癌侵袭迁移中的作用, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20221201
    [6] 赵斌, 段元鹏, 张国颖, 毕城伟, 杨李波, 施致裕, 杨勇, 张建朋, 高婷.  CircRNA EZH2通过调控miR-30c-5p促进前列腺癌细胞增殖和迁移, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20220731
    [7] 张黎, 王清岑, 周罗慧, 杨娟, 王红.  木犀草素通过调控内质网应激抑制平滑肌细胞的迁移, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20220518
    [8] 廖周俊, 杨少华, 刘立鑫, 胡晟, 陈轶晖, 康强, 张小文.  AK4对肝内胆管癌细胞HUCCT1增殖、迁移的影响, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20220611
    [9] 李志红, 胡勇, 熊正花, 龙熙翠, 卢绍波, 韩雪松.  TGF-β1、TIMP-1及Collagen Ⅲ在盆腔器官脱垂患者阴道壁中的表达及意义, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20210909
    [10] 杨萍芬, 林华, 高丽辉, 李玲, 陈梦威, 杨娟, 王歌, 牛艳芬.  芒果苷元对尿酸性肾病大鼠尿酸排泄指标的影响, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20210633
    [11] 杨兰, 贾霄, 姜奕彤, 崔琪, 刘光赐, 何颖红.  UBE2C基因沉默表达对人胃癌AGS细胞增殖和迁移的影响, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20210504
    [12] 李珊珊, 全宇航, 龚玲俐, 杨会, 浦劲宏, 王忠慧.  七氟烷对人骨肉瘤Saos2细胞增殖、侵袭、迁移及凋亡的影响, 昆明医科大学学报.
    [13] 李康健, 罗钰辉, 莫茵, 申吉泓, 刘孝东, 李颢.  小干扰RNA沉默HK-2细胞VDR及其对低枸橼酸尿症的意义, 昆明医科大学学报.
    [14] 赵斌, 李瑞乾, 张国颖, 雷永虹, 王启林, 刘志敏.  过表达miR-4328抑制前列腺癌细胞的增殖、迁移和上皮间质转化, 昆明医科大学学报.
    [15] 梁乃超.  基质金属蛋白酶MMP-9、TIMP-1及VEGF的表达情况与非小细胞肺癌组织侵袭的相关性, 昆明医科大学学报.
    [16] 刘立鑫.  二甲双胍对肝癌细胞HCCLM3生物学行为的影响, 昆明医科大学学报.
    [17] 刘锋.  槲皮素对人肝癌高转移细胞生长及侵袭能力的影响, 昆明医科大学学报.
    [18] 史兆坤.  单核细胞趋化蛋白-1趋化巨噬细胞迁移与侵袭的体外实验研究, 昆明医科大学学报.
    [19] 刘佳鑫.  SDF-1/CXCR4在恶性胶质瘤细胞体外增殖、迁移及侵袭中的作用, 昆明医科大学学报.
    [20] 低氧诱导对人肝癌SMMC7721细胞生物学行为的影响, 昆明医科大学学报.
  • 加载中
图(8)
计量
  • 文章访问数:  3606
  • HTML全文浏览量:  2106
  • PDF下载量:  118
  • 被引次数: 0
出版历程
  • 收稿日期:  2021-05-19
  • 刊出日期:  2021-07-25

目录

    /

    返回文章
    返回