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1 800 MHz射频电磁场暴露对大鼠海马GFAP、NCAM和GABA受体表达的影响

张盛庆宇 舒逍 吴锡南 李志强 武慧欣 张媛 蒋玉融 杨思佳 木云珍

刘四香, 黄永坤, 世淑兰, 孙晶晶, 罗丽丝, 王黎, 凌昱. 过敏性紫癜患儿维生素D含量的分析[J]. 昆明医科大学学报, 2024, 45(1): 133-135. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20240122
引用本文: 张盛庆宇, 舒逍, 吴锡南, 李志强, 武慧欣, 张媛, 蒋玉融, 杨思佳, 木云珍. 1 800 MHz射频电磁场暴露对大鼠海马GFAP、NCAM和GABA受体表达的影响[J]. 昆明医科大学学报, 2021, 42(9): 13-19. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20210939
Sixiang LIU, Yongkun HUANG, Shulan SHI, Jingjing SUN, Lisi LUO, Li WANG, Yu LING. Analysis of Vitamin D in Children with Henoch-Schonlein Purpura[J]. Journal of Kunming Medical University, 2024, 45(1): 133-135. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20240122
Citation: Sheng-qingyu ZHANG, Xiao SHU, Xi-nan WU, Zhi-qiang LI, Hui-xin WU, Yuan ZHANG, Yu-rong JIANG, Shi-jia YANG, Yun-zhen MU. The Effect of 1800 MHz Radio Frequency Electromagnetic Field Exposure on the Expression of GFAP,NCAM and GABA Receptors in Hippocampus of Rats[J]. Journal of Kunming Medical University, 2021, 42(9): 13-19. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20210939

1 800 MHz射频电磁场暴露对大鼠海马GFAP、NCAM和GABA受体表达的影响

doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20210939
基金项目: 国家自然科学基金资助项目(81560525);云南省应用基础研究计划基金资助项目(2013FZ063)
详细信息
    作者简介:

    张盛庆宇,男,辽宁海城人,在读硕士研究生,主要从事劳动卫生与环境卫生学研究工作。舒逍与张盛庆宇对本文有同等贡献

    通讯作者:

    木云珍,E-mail: muyz98@163.com

  • 中图分类号: R594.8

The Effect of 1800 MHz Radio Frequency Electromagnetic Field Exposure on the Expression of GFAP,NCAM and GABA Receptors in Hippocampus of Rats

  • 摘要:   目的   探究 1800 MHz射频电磁场对大鼠的体重和海马体胶原纤维酸性蛋白(GFAP)、神经细胞黏附分子(NCBA)和γ-氨基丁酸(GABA)受体表达的影响。   方法   购买SD大鼠14只,分为暴露组和对照组,暴露组雌雄比例3∶4,对照组雌雄比例4∶3。暴露频率 1800 MHz,强度0.5 mW/cm2。全身暴露3周,每天12 h(20:00~08:00)。暴露结束后,对2组老鼠分别称重。应用免疫组织化学技术对大鼠海马组织切片GFAP、NCBA、GABA受体进行染色,并测定GFAP、NCBA和GABA受体在海马CA1、CA3和DG区的表达变化。   结果   暴露组与对照组体重指标无明显不同(P > 0.05);暴露组海马CA1区、DG区GFAP的表达下降( P < 0.05),其他各组比较无明显不同( P > 0.05)。   结论   在 1800 MHz,0.5 mW/cm2射频电磁场使SD大鼠暴露3周,大鼠海马CA1和DG区GFAP表达下降,可能对某些脑部疾病有所影响。
  • 随着人们饮食习惯及生活方式的改变,如过度清洁、杀菌剂及抗生素泛用等,人体免疫系统失衡呈现逐年递增趋势。人体免疫系统对外能抵抗病原体的入侵,减少感染性疾病发生;对内有监视作用,能清除发生突变的体细胞遏制肿瘤产生及减少罹患自身免疫性疾病的风险。患儿免疫过强可出现皮疹、出血点、鼻炎、喘息、过敏性休克等症状;免疫功能低下可出现反复感染、严重感染、特殊病原体感染或治疗效果不佳的感染[1],甚至肿瘤发生,严重影响儿童生活质量,甚至危及生命。过敏性紫癜(henoch-schonlein purpura,HSP)是儿童时期较常发生的,以IgA介导的小血管炎,典型症状为非血小板减少性紫癜,伴或不伴腹部、关节、肾脏,甚至其它器官(脑、肺等血管炎)损害。维生素D除调节人体钙磷参与骨代谢外,还具有重要的免疫调控作用[2-3],本研究通过检测HSP患儿及健康儿童维生素D的水平,探讨HSP患儿及健康儿童处于不同免疫状态下维生素D含量的变化,为HSP治疗提供新思路。

    将2022年7月至2023年7月在昆明市儿童医院就诊,符合HSP诊断标准[4]的130例患儿纳为观察组,观察组患儿需排外:合并严重感染、其它免疫性疾病、皮肤疾病或其它脏器严重功能障碍、佝偻病、骨质疏松者。HSP患儿年龄3岁5月至11岁4月,平均(6.1±1.5)岁,男72例,女58例。随机选取同时期在昆明市儿童医院儿保科体检的健康儿童100例作为正常对照组,年龄1岁1月~13岁6月,平均(5.6±2.9)岁,男51例,女49例。HSP组与正常对照组儿童年龄、性别构成差异比较,差异无统计学意义(P > 0.05),2组间具有可比性。该研究经医院伦理委员会的批准(2022-03-225-K01),并取得家长知情同意。

    可触性非血小板减少性皮肤紫癜(必要条件)伴以下任1条:(1)腹痛;(2)关节痛或关节炎;(3)肾脏病变(血尿或蛋白尿);(4)任意部位病检示IgA沉积。但临床中部分患儿仅有单纯皮疹而无其它临床症状。2012年在长沙召开的儿童过敏性紫癜诊治会议上,专家提议:对于急性发作典型皮疹的患儿,排除其它相关疾病可行临床诊断,但对于非急性发作或皮疹不典型的患儿,仍需严格按照诊断标准,必要时完善皮肤病检诊断[4]

    所有研究对象采集早晨空腹血3 mL,注入生化促凝管内,经3000 r/min的速度离心5 min,分离血清后注入EP管,放2~8 ℃冰箱当天送昆明金域医学检验所检测。利用Agilent高效液相色谱串联质谱仪测定血清25(OH)D含量。14岁以内血清25(OH)D正常参考值范围为50~250 nmol/L, < 50 nmol/L为维生素D不足[5]

    所测数据通过SPSS 21.0统计软件进行统计学分析。正态分布的计量资料以均数 ± 标准差($ \bar x \pm s $)表示,HSP组与正常对照组儿童维生素D含量的比较采用两独立样本t检验,HSP组与正常对照组儿童维生素D不足率为计数资料,以n(%)表示,采用χ2检验,P < 0.05为差异有统计学意义。

    HSP组患儿血清中25(OH)D含量较正常对照组降低,差异有统计学意义(P < 0.01),见表1

    表  1  HSP组与正常对照组25(OH)D含量的比较[($\bar x \pm s $),nmol/L]
    Table  1.  Comparison of 25(OH) D between HSP and control group [($\bar x \pm s $),nmol/L]
    组别 25(OH)D
    HSP组 45.44±16.31
    对照组 86.6±28.62
    t 18.234
    P < 0.001 *
      *P < 0.05。
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    HSP组患儿血清中25(OH)D不足率高于正常对照组,差异有统计学意义(P < 0.01),见表2

    表  2  HSP组与正常对照组25(OH)D不足率的比较
    Table  2.  Comparison of vitamin D deficiency in children with HSP and control group
    组别25(OH)D不足例数(n25(OH)D不足比例(%)
    HSP组8766.9
    对照组55.0
    χ290.304
    P< 0.001 *
      *P < 0.05。
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    维生素D是一种神经内分泌-免疫调节剂,维生素D可与免疫细胞相互作用。免疫细胞(T淋巴细胞、B淋巴细胞、抗原呈递细胞、巨噬细胞)可表达1-α羟化酶,将维生素D变为有生物活性的1,25-(OH)2D;免疫细胞(T淋巴细胞、B淋巴细胞、树突状细胞、单核/巨噬细胞、中性粒细胞)表达维生素D受体(vitamin D receptor,VDR)[6],维生素D与VDR结合从而发挥调节免疫及参与钙磷代谢等作用。维生素D可增强机体固有免疫反应、抑制适应性免疫反应。维生素D通过促进固有免疫从而增强机体抵抗病原体入侵的能力,降低感染性疾病的发生。维生素D通过阻碍适应性免疫反应诱导免疫耐受,从而减少罹患自身免疫性疾病及缓解炎症后对机体的损伤。维生素D仅少量来源于食物,大多经日光照射合成或来源于维生素D营养补充剂,维生素D在人体肝脏、肾脏中分别经25-羟化酶、1-α羟化酶的2次羟化,变为有生物活性的1,25(OH)2D3[7-8]。因25(OH)D在血液中浓度高、半衰期长、相对稳定,被认为是维生素D营养评价的最好指标[9]。本文通过研究HSP及健康儿童25(OH)D的水平,探讨HSP患儿及健康儿童处于不同免疫状态下维生素D含量的变化,为儿童HSP治疗提供新策略。

    本研究显示HSP患儿25(OH)D含量较正常儿童降低,HSP患儿维生素D不足率高于正常儿童,提示HSP发病可能与维生素D不足有关。HSP是儿童时期较常发生的免疫介导性小血管炎。在HSP发病中B淋巴细胞起重要作用,B细胞活性增强时可使浆细胞分泌到血液中的IgA、D、E、M、G增多,进而强化机体内体液免疫应答。其中IgA增多可引起儿童多系统IgA免疫复合物介导的小血管炎从而加重HSP症状。维生素D可通过抑制机体内B细胞的增值和诱导其凋亡,抑制浆细胞产生免疫球蛋白,从而减少HSP发病及缓解HSP症状[10]。HSP发生与免疫、遗传、感染等有关,微生物感染会诱发HSP。维生素D可增强机体固有免疫,减少感染性疾病的发生,维生素D促使单核细胞分化为有吞噬作用的巨噬细胞,并可提高巨噬细胞的吞噬及杀伤功能[11-12];维生素D在促进中性粒细胞杀菌等免疫防御体系中起关键作用,维生素D可提高中性细胞抗菌肽活性,抗菌肽可致微生物膜失稳,影响细胞的通透性,导致病原体裂解[13]。维生素D不足与感染性疾病发生呈正相关,维生素D不足可能增加HSP发病率。综上所述,维生素D作为新型免疫调节剂,在HSP防治中具有积极作用。此外,维生素D亦可通过调节钙磷途径,改善HSP患儿使用激素时的钙缺乏症状,促进HSP患儿病情恢复。故在HSP患儿常规治疗的同时,需要强调维生素D的补充。

  • 图  1  GFAP在大鼠海马各区的表达(SP法染色,×400)

    A:GFAP在暴露组大鼠海马CA1区表达;B:GFAP在暴露组大鼠海马CA3区表达;C:GFAP在暴露组大鼠海马DG区表达;D:GFAP在对照组大鼠海马CA1区表达;E:GFAP在对照组大鼠海马CA3区表达;F:GFAP在对照组大鼠海马DG区表达。

    Figure  1.  Expression of GFAP in rat hippocampus(SP,×400)

    图  2  NCAM在大鼠海马各区的表达(免疫组化SP法染色,×400)

    A:NCAM在暴露组大鼠海马CA1区表达;B:NCAM在暴露组大鼠海马CA3区表达;C:NCAM在暴露组大鼠海马DG区表达;D:NCAM在对照组大鼠海马CA1区表达;E:NCAM在对照组大鼠海马CA3区表达;F:NCAM在对照组大鼠海马DG区表达。

    Figure  2.  The expression of NCAM in rat hippocampus(SP,×400)

    图  3  GABA在大鼠海马各区表达(免疫组化SP法染色,×400)

    A:GABA在暴露组大鼠海马CA1区表达;B:GABA在暴露组大鼠海马CA3区表达;C:GABA在暴露组大鼠海马DG区表达;D:GABA在对照组大鼠海马CA1区表达;E:GABA在对照组大鼠海马CA3区表达;F:GABA在对照组大鼠海马DG区表达。

    Figure  3.  The expression of GABA in rat hippocampus(SP,×400)

    表  1  大鼠一般情况分析( $ \bar x \pm s $)

    Table  1.   General situation analysis of rat ( $ \bar x \pm s $)

    分组  动物数(n 性别(雌/雄) 体重(g) t/P
    暴露组 7 3/4 223.50 ± 35.94 t= −0.49
    对照组 7 4/3 215.57 ± 34.51 P= 0.633
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    表  2  大鼠海马不同区域的GFAP表达MOD值( $ \bar x \pm s $)

    Table  2.   MOD value of GFAP expression in different regions of rat hippocampus ( $ \bar x \pm s $)

    分组  动物数(n CA1区 CA3 DG区
    暴露组 7 0.07 ± 0.06* 0.11 ± 0.05 0.07 ± 0.06*
    对照组 7 1.50 ± 0.52 0.05 ± 0.06 1.50 ± 0.51
    t = −3.349 t = −1.894 t = −3.809
    P = 0.006 P = 0.083 P = 0.002
      与对照组相比,*P < 0.05。
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    表  3  大鼠海马不同区域的NCAM表达MOD值( $ \bar x \pm s $)

    Table  3.   MOD value of NCAM expression in different regions of rat hippocampus( $ \bar x \pm s $)

    分组  动物数(n CA1区 CA3 DG区
    暴露组 7 0.05 ± 0.03 0.03 ± 0.02 0.05 ± 0.02
    对照组 7 0.04 ± 0.03 1.50 ± 0.52 0.06 ± 0.03
    t = 0.591 t = −0.200 t = −1.100
    P = 0.565 P = 0.854 P = 0.293
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    表  4  大鼠海马不同区域的GABA表达MOD值( $ \bar x \pm s $)

    Table  4.   MOD value of GABA expression in different regions of rat hippocampus ( $ \bar x \pm s $)

    分组  动物数(n CA1区 CA3 DG区
    暴露组 7 0.07 ± 0.04 0.07 ± 0.03 0.03 ± 0.02
    对照组 7 0.05 ± 0.04 0.04 ± 0.02 0.05 ± 0.05
    t = 0.550
    t = 1.662 t = −0.870
    P = 0.593 P = 0.131 P = 0.402
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    [9] 杨金凤, 蒙国懿, 隋念含, 边立功, 洪仕君, 李利华, 赵永娜.  甲基苯丙胺对大鼠海马DA、5-HT及TNF-α表达的影响, 昆明医科大学学报.
    [10] 魏辉明, 麻伟青, 董发团, 李文锋, 普俊杰, 贺焱峰.  神经病理性疼痛老年大鼠海马突触长时程抑制的变化, 昆明医科大学学报.
    [11] 郭小兵, 吴德野, 李恒希, 吴海鹰, 张云茜, 于建云, 李坪.  一种轻型脑损伤后大鼠海马EP2的表达变化, 昆明医科大学学报.
    [12] 邓永前.  深低温停循环对大鼠海马神经元电压依赖阴离子通道表达的影响, 昆明医科大学学报.
    [13] 何保丽.  天麻素对老年痴呆树鼩海马BDNF表达的影响, 昆明医科大学学报.
    [14] 邵建林.  HO-1对氧糖剥夺海马神经元线粒体运动调节蛋白的影响, 昆明医科大学学报.
    [15] 吗啡诱导CPP建立和消退大鼠海马CA1区超微结构变化的研究, 昆明医科大学学报.
    [16] 胎鼠海马神经元培养及其鉴定, 昆明医科大学学报.
    [17] 周银燕.  外源性一氧化碳对脑缺血-再灌注损伤大鼠海马气体信号分子的影响, 昆明医科大学学报.
    [18] 成年小鼠海马神经细胞培养及其鉴定, 昆明医科大学学报.
    [19] 1800MHz电磁波出生前暴露对大鼠海马NCAM表达的影响, 昆明医科大学学报.
    [20] 丁鹏.  新生大鼠海马神经干细胞表达趋化因子受体CCR2的体外研究, 昆明医科大学学报.
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出版历程
  • 收稿日期:  2021-07-05
  • 刊出日期:  2021-09-25

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