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沉默RND3表达对氧糖缺失/复氧复糖损伤海马神经细胞炎症反应和细胞凋亡的影响

李俊杰 蒋海燕 白文娅 霍思颖 孙志生 邵建林

李俊杰, 蒋海燕, 白文娅, 霍思颖, 孙志生, 邵建林. 沉默RND3表达对氧糖缺失/复氧复糖损伤海马神经细胞炎症反应和细胞凋亡的影响[J]. 昆明医科大学学报, 2021, 42(10): 14-21. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20211012
引用本文: 李俊杰, 蒋海燕, 白文娅, 霍思颖, 孙志生, 邵建林. 沉默RND3表达对氧糖缺失/复氧复糖损伤海马神经细胞炎症反应和细胞凋亡的影响[J]. 昆明医科大学学报, 2021, 42(10): 14-21. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20211012
Ling Yu , Sun Yan Hui , Cui Ji Hua , Wu Jian Min , Song Yu , Li Shu Jin , Liu Xiao Mei . Levels of 25-(OH)D in 0~12 years Old Children in Kunming[J]. Journal of Kunming Medical University, 2016, 37(12): 34-36.
Citation: Jun-jie LI, Hai-yan JIANG, Wen-ya BAI, Si-ying HUO, Zhi-sheng SUN, Jian-lin SHAO. Effects of Silencing RND3 Expression on the Inflammatory Response and Apoptosis of Hippocampal Neurons Injured by Oxygen Glucose Deprivation/Reoxygenation[J]. Journal of Kunming Medical University, 2021, 42(10): 14-21. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20211012

沉默RND3表达对氧糖缺失/复氧复糖损伤海马神经细胞炎症反应和细胞凋亡的影响

doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20211012
基金项目: 国家自然科学基金资助项目(81960250);云南省教育厅科学研究基金资助项目(2021J0231)
详细信息
    作者简介:

    李俊杰(1990~),男,云南大理人,在读博士研究生,主要从事脑缺血再灌注损伤防治的研究工作

    通讯作者:

    邵建林,E-mail:shaojl@ydyy.cn

  • 中图分类号: R743.31

Effects of Silencing RND3 Expression on the Inflammatory Response and Apoptosis of Hippocampal Neurons Injured by Oxygen Glucose Deprivation/Reoxygenation

  • 摘要:   目的  探讨沉默Rho家族GTP酶3(RND3)表达对氧糖缺失/复氧复糖(OGD/R)损伤海马神经细胞炎症反应和细胞凋亡的影响。  方法  使用包有沉默RND3表达的短发夹RNA(shRND3)及其阴性对照(shRND3-NC)序列的慢病毒载体分别对海马神经细胞进行转染。转染成功后对细胞进行2 h的缺氧缺糖培养再行复氧复糖建立OGD/R模型。CCK-8法检测细胞活力,RT-qPCR检测RND3及炎症和凋亡相关分子的mRNA表达,Elisa检测细胞上清液中炎症因子的浓度,Western Blot检测RND3和凋亡蛋白以及胞核内NF-κB的蛋白表达,Annexin V-FITC / PI染色和流式细胞仪检测细胞的凋亡率。  结果  与正常细胞相比,OGD/R损伤后细胞活力降低(P < 0.001),炎症因子(TNF-α、IL-6和IL-1β)和NF-κB表达升高(P < 0.001),促凋亡蛋白(Caspase-3和Bax)表达升高(P < 0.001),抗凋亡蛋白(Bcl-2)表达降低(P < 0.001),细胞的凋亡率升高(P < 0.001)。与沉默RND3阴性组相比,沉默RND3后,细胞活力增加(P < 0.01),炎症因子(TNF-α、IL-6和IL-1β)和NF-κB表达降低(P < 0.001),促凋亡蛋白(Caspase-3和Bax)表达降低(P < 0.001),抗凋亡蛋白(Bcl-2)表达升高(P < 0.001),细胞的凋亡率下降(P < 0.001)。  结论  沉默RND3表达通过抑制炎症反应和细胞凋亡减轻海马神经细胞的OGD/R损伤,沉默RND3抑制炎症反应的机制可能与抑制NF-κB通路有关。
  • 部分胸痛患者冠状动脉造影检查显示冠状动脉无明显狭窄或接近正常,但造影剂充盈缓慢、排空速度明显延迟,这种现象被称为冠状动脉慢血流现象(coronary slow flow phenomenon,CSFP)[1]。CSFP患者有发生心肌缺血的风险,甚至可能进展为急性冠脉综合征导致碎死。CSFP的发病机制尚不明确,目前主要包括:冠状动脉微循环障碍、炎症反应、血管内皮功能紊乱、血小板功能及形态异常以及基因变异等[2-3]。另外,Cin等[3]利用血管内超声(intravenous ultrasound,IVUS)观察CSFP患者的冠状动脉,发现其已经存在不同程度的弥漫性内膜增厚、管壁钙化现象,故认为CSFP是冠状动脉粥样硬化的早期表现。临床上常常采用心肌梗死溶栓试验(thrombolysis in myocardial infarction,TIMI)血流帧数评估冠状动脉血流速度[4],具有较好的客观性和准确性。

    瘦素(leptin,LEP)主要由脂肪细胞分泌,作用于中枢神经系统,从而控制食物摄入、引起能量消耗,对机体的能量代谢调节起着重要作用[5]。研究发现,瘦素可通过胰岛素抵抗、介导内皮功能障碍、参与炎症反应、促进血小板聚集等途径参与到冠心病的发生发展中[6-7]。瘦素由人类染色体7q31.3上的瘦素基因所表达,包含三个外显子,长度约20 kb。其中,LEP rs7799039 G/A位于瘦素基因启动子位置上,其基因位点的变异可能在转录水平上影响瘦素的表达。瘦素受体(leptin receptor,LEPR)由瘦素受体基因的所表达。瘦素受体基因位于人类染色体1p31上,包括20个外显子、19个内含子,长度 > 70 kb[8]。1997年,Mastuoka等[9]对LEPR基因20个外显子应用PCR技术进行测序分析,发现了存在7种核苷酸变异。其中,LEPR基因rs1137101、rs1137100与冠心病及其相关危险因素密切相关[10-11]

    目前关于LEP及LEPR基因多态性与CSFP的相关研究尚未报道。本课题通过比较CSFP组与正常冠状动脉血流(normal coronary flow,NCF)组的血清LEP及LEPR水平,检测LEP rs7799039、LEPR rs1137100、LEPR rs113710基因及基因型频率,一方面,探究LEP及LEPR基因多态性与CSFP之间的相关性,另一方面,探寻影响CSFP的相关危险因素,为其防治探寻新途径。

    收集于2018年09月至2019年11月因胸痛入住昆明医科大学第二附属医院心内科患者100例,记录临床资料、冠脉造影结果,并计算校正的TIMI帧数(TFC)。将研究对象分为CSFP组54例,NCF组46例。CSFP组入组标准:(1)冠脉造影示冠状动脉正常[12]或狭窄程度 < 40%[13];(2)在30帧/s图像采集速度下,记录冠状动脉TIMI帧数,以造影剂进入某支冠状动脉记作为第一帧,到达远端终点分支作为最后一帧。因左前降支(LAD)的解剖长度明显长于左回旋支(LCX)、右冠状动脉(RCA),所以将记录到的LAD的TIMI帧数除以1.7,得到校正的TIMI帧数。将LAD、LCX和RCA的TIMI帧数相加后除以3,记录平均冠脉TIMI帧数(Mean TFC)。当Mean TFC > 27时诊断为CSFP。NCF组入组标准:(1)冠脉造影示冠状动脉正常或狭窄程度 < 40%;(2)Mean TFC ≤ 27时诊断为NCF组[1]。排除标准:冠状动脉支架植入术后、冠状动脉狭窄程度 ≥ 40%、冠状动脉无复流现象、冠状动脉瘤样扩张、冠状动脉痉挛、快速或缓慢型心律失常导致冠状动脉血流改变、心肌病、心瓣膜病、慢性消耗性疾病等。

    记录入组患者性别、年龄、身高、体重、体重指数(BMI)、糖尿病病史、高血压病史、吸烟史等临床资料,测定空腹血糖(FBG)、空腹胰岛素水平(FINS)、总胆固醇(TC)、甘油三酯(TG)、低密度脂蛋白胆固醇(LDL-C)、高密度脂蛋白胆固醇(HDL-C)、血小板计数(PLT)、平均血小板体积(MPV)等指标。采用稳态模型抵抗指数(homeostasis model insulin resistance index,HOMA-IR)评估胰岛素抵抗情况,HOMA-IR = FINS*FBG/22.5[14]

    入院后第2天抽取空腹静脉血4 mL于促凝管中,4℃条件下离心(3000 r/min,15 min),提取血清。按照说明书,采用ELISA检测LEP、LEPR的浓度。分别于96孔ELISA板中加入标准品与待测样品,样本中的LEP或LEPR与载体上固有的LEP或LEPR抗体结合,洗涤后加入LEP或LEPR二抗,再次洗涤后加入辣根过氧化物酶标记检测抗体,加入TMB底物显色反应,用酶标仪测定吸光度,绘制标准品线性回归曲线,计算得出LEP、LEPR的浓度。

    抽取2 mL全血,使用全血基因组DNA提取试剂盒提取DNA。采用PCR法将DNA进行扩增,引物序列(由昆明擎科生物技术有限公司设计合成)如下:瘦素基因rs7799039(上游引物5′-AGCCAAGGCAAAATTGAGGA-3′,下游引物3′-AAGAGATTAAAGCAAAGACAGGCA-5′);瘦素受体基因rs1137100(上游引物5′-TGCCTGCTGGACTCTCAAAG-3′,下游引物3′-AGCTAATGCTTACCTATTTGTTGAA-5′);瘦素受体基因rs1137101(上游引物5′-GGTT CCCCAAAAAGGCAGTT-3′,下游引物3′-CCCCCAGTACTACATCTACCATC -5′)。扩增后采用琼脂糖凝胶电泳鉴定PCR产物。将PCR产物纯化后,采用单碱基延伸引物序列进行SNP单链正向延伸,引物序列如下:rs7799039(TTTTTTTTTTTTTTTTTGTTTTGCGACAGGGTTGC);rs1137101(TTTTTTTT TTTTTTTTTTTTTCATCTGGTGGAGTAATTTTCC);rs1137100(TTTTTTTT TTTTTTTTTTTTTTTTTTTGTGCAGACAACA TTGAAG GAA)。将扩增产物放入ABI 3730XL测序仪进行测序。随机选取一个样本的SNP-PCR扩增产物,进行Sanger法测序检验,证实与SNaPShot结果一致。所有位点用Genemapper 4.0软件对ABI 3730XL测序结果进行分析。

    采用SPSS 22.0进行统计学分析。计量资料服从正态分布采用均数±标准差($\bar x \pm s $)表示,组间差异采用t检验;非正态分布资料采用MP25, P75)描述,组间比较使用Mann-Whitney U秩和检验。计数资料使用百分率表示,组间比较使用χ2检验。对于基因检测,首先运用Hardy-Weinberg平衡检验分别验证两组研究对象的群体代表性,通过计算得出基因及基因型频率,并应用χ2检验比较组间差异。采用Logistic回归分析影响CSFP的危险因素。P < 0.05表示差异具有统计学意义。

    比较CSFP组与NCF组的基本临床资料,两组在年龄、体重指数、HDL、LDL、TG、TC、高血压病史、糖尿病病史、吸烟史等方面差异均无统计学意义(P > 0.05)。但是与NCF组受试者相比,CSFP患者中男性比例较多,且有着较高的血清瘦素(LEP)水平、胰岛素抵抗指数(HOMA-IR),P < 0.05,见表1

    表  1  两组受试者临床指标比较 [$\bar x \pm s$/n(%)/MP25,P75)]
    Table  1.  Comparison of clinical indexes between the two groups [$\bar x \pm s $/n(%)/MP25,P75)]
    组别CSFP组(n = 54)NCF组(n = 46)t/χ2P
    男性 36(66.7) 21(45.7) 4.476 0.034*
    年龄(岁) 59.93 ± 10.70 60.13 ± 9.64 −0.100 0.921
    吸烟史 27(50.0) 16(34.8) 2.347 0.126
    高血压病史 34(63.0) 33(71.7) 0.865 0.352
    糖尿病史 10(18.5) 7(15.2) 0.192 0.661
    BMI(kg/m2 24.83 ± 3.40 24.24 ± 3.23 0.870 0.386
    TC(mmol/L) 4.46 ± 0.82 4.33 ± 1.17 0.633 0.529
    TG(mmol/L) 1.75(0.69~6.02) 1.59(0.51~5.43) −1.477 0.140
    HDL-C(mmol/L) 1.19 ± 0.27 1.23 ± 0.24 −0.780 0.437
    LDL-C(mmol/L) 2.75 ± 0.64 2.65 ± 0.93 0.639 0.525
    PLT(×109/L) 212.37 ± 53.05 221.41 ± 50.48 −0.869 0.387
    MPV(fL) 10.92 ± 1.13 11.03 ± 1.22 −0.457 0.649
    FBG(mmol/L) 5.28(3.42~11.10) 5.10(4.12~10.69) −0.858 0.391
    FINS(uIU/mL) 19.60(4.33~210.09) 15.90(2.67~57.26) −1.646 0.100
    HOMA-IR 4.53(0.66~56.02) 2.98(0.88~15.63) −1.667 0.046*
    LEP(ng/mL) 2.59(0.54~12.21) 1.00(0.56~11.51) −3.614 < 0.001
    LEPR(ng/mL) 3.05(1.29~27.29) 2.78(0.95~26.42) −1.069 0.285
      注:*P < 0.05。
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    根据冠脉造影,采用TIMI帧数评价患者冠状动脉血流速度,包括左前降支(LAD),左回旋支(LCX),右冠状动脉(RCA)。比较CSFP组与NCF组的TIMI帧数,结果发现CSFP组的LAD(校正后)-TFC、LCX-TFC、RCA-TFC及平均TFC均高于NCF组(P < 0.05),说明CSFP组冠状动脉血流速度慢,见表2

    表  2  两组受试者TIMI帧数比较 [MP25,P75)]
    Table  2.  Comparison of TFC between the two groups [MP25,P75)]
    项目CSFP组(n = 54)NCF组(n = 46)ZP
    LAD(校正后)-TFC 38.31(37.47,40.78) 31.01(29.67,33.18) −2.323 0.020*
    LCX-TFC 26.67(24.83,28.39) 19.31(17.20,20.98) −2.309 0.021*
    RCA-TFC 26.11(23.89,27.66) 19.10(15.23,21.24) −2.337 0.019*
    Mean TFC 30.52(29.65,31.27) 22.95(21.53,24.67) −2.627 0.009#
      注:*P < 0.05, #P < 0.01。
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    LEPR rs1137100位点及LEPR rs1137101位点,G为野生型,A为突变型;LEP rs7799039位点,A为野生型,G为突变型。LEP rs7799039、LEPR rs1137100、LEPR rs1137101在CSFP组和NCF组之间的基因型分布频率均符合Hardy-Weinberg平衡,证明研究对象具有群体代表性(P > 0.05)。进一步对三个SNP位点基因及基因型分布频率进行分析、比较,结果显示,在CSFP组和NCF组患者中,LEP rs7799039、LEPR rs1137100、LEPR rs1137101基因及基因型分布频率无明显统计学差异(P > 0.05),见表3

    表  3  两组之间基因及基因型分布频率比较
    Table  3.  Comparison of gene and genotype distribution frequency between the two groups
    基因型CSFP组 NCF组χ2PHardy-Weinberg检验(1)
    频数频率(%) 频数频率(%)
    rs1137100
    GG 37 68.5 32 69.6 0.721 0.739 0.89/0.82
    GA 16 29.6 12 26.1
    AA 1 1.9 2 4.3
    G等位基因 90 83.3 76 82.6 0.018 0.892
    A等位基因 18 16.7 16 17.4
    rs1137101
    GG 34 63.0 32 69.6 0.749 0.773 0.98/0.82
    GA 18 33.3 12 26.1
    AA 2 3.7 2 4.3
    G等位基因 86 79.6 76 82.6 0.286 0.592
    A等位基因 22 20.4 16 17.4
    rs7799039
    GG 2 3.7 2 4.3 2.173 0.343 0.68/0.99
    GA 12 22.2 16 34.8
    AA 40 74.1 28 60.9
    G等位基因 16 14.8 20 21.7 1.614 0.204
    A等位基因 92 85.2 72 78.3
      注:(1)分别显示CSFP组/NCF组基因型Hardy-Weinberg平衡检测的P值。
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    将年龄、性别、吸烟史、高血压史、糖尿病史、LEP、LEPR、FBG、FINS、HOMA-IR、BMI、PLT、MPV、血脂等指标进行Logistic逐步回归分析,见表4,最终得到的模型为:LEP、HOMA-IR对应的OR值 > 1,提示LEP、HOMA-IR为影响冠状动脉慢血流的相关危险因素。

    表  4  影响冠状动脉慢血流的二元Logistic回归分析
    Table  4.  Binary logistic regression analysis of coronary slow flow
    变量回归系数标准误Wald-χ2POR95%CI
    HOMA-IR 0.092 0.048 3.595 0.038 1.096 1.005-1.205
    LEP 0.241 0.110 4.800 0.028 1.273 1.026-1.579
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    国内外研究者近来试图从分子生物学角度探寻CSFP的危险因素。X Cai等[15]发现GW26-e3963白细胞介素-10启动子多态性与CSFP的发生有关。瘦素及瘦素受体基因在心血管疾病的发生发展中起到一定作用,可作为心血管疾病发生的一个重要遗传学标志。本研究拟探索CSFP的危险因素并探讨瘦素及瘦素受体基因多态性与CSFP的相关性。

    首先,笔者探索影响CSFP发生的危险因素。通过测定CSFP组与NCF组的血清瘦素、瘦素受体、胰岛素抵抗指数以及比较两组间相关临床资料,结果显示,CSFP组瘦素浓度、胰岛素抵抗指数显著高于NCF组,logistic回归分析证实瘦素、胰岛素抵抗是CSFP的危险因素。既往研究发现,血清瘦素水平的升高能够导致血管内皮收缩因子内皮素-1(endothelin-1,ET-1)与血管内皮舒张因子一氧化氮(nitric oxide,NO)失衡,从而降低冠状动脉舒张功能,增加微血管阻力[2]。同时,血清瘦素水平的升高可以诱导CRP、TNF-α、IL-6等炎症因子的表达,增加氧化应激,刺激血管平滑肌细胞增殖、迁移,促进动脉粥样硬化的发展[16]。另外,瘦素与胰岛素抵抗之间也存在一定联系,在对肥胖个体的研究中发现,大脑对瘦素敏感性的削弱会造成甘油三酯过多堆积,引起胰岛素敏感性降低,进而又可以促进胰岛素抵抗的发生[7]。在瘦素抵抗、胰岛素抵抗的情况下,心肌细胞发生糖类、脂肪等物质代谢紊乱,产生活性氧自由基、炎症介质,从而加剧了血管内皮的损伤[6]。既往研究表明[2],由于雌激素对心血管内皮细胞具有一定保护作用和抗动脉粥样硬化作用,故男性患者在CSFP发生中居多。另外,吸烟会导致血管舒缩功能障碍,诱发微血管痉挛,导致冠状动脉血流速度减慢,也被认为是CSFP的另一危险因素。国内研究发现[17],高血压是影响CSFP患者发展为主要心血管不良事件的独立危险因素。本研究显示CSFP组以男性比例较多,但logistic回归未证实性别为CSFP的危险因素,此外,吸烟、高血压与CSFP无相关性,与既往研究不一致,可能是因为样本量过小导致。

    其次,笔者探讨瘦素及瘦素受体基因多态性与CSFP之间的相关性。本研究采用了SNaPShot技术对3个SNP位点进行检测,与一代测序技术和限制性内切酶法相比,具有精准度高、检测速度快、通量高的特点。通过研究显示,LEP rs7799039、LEPR rs1137100、LEPR rs1137101位点GG、GA、AA基因型以及G、A等位基因在CSFP组与NCF组之间分布频率相似,logistic回归分析显示,CSFP在3个SNP位点各基因型之间发病风险相似,说明瘦素及瘦素受体基因多态性与CSFP无相关性。其原因可能为:CSFP作为一种冠脉微循环障碍疾病,其病理机制复杂,虽然目前已经发现eNOS、白细胞介素、血管紧张素转化酶等多个基因异常表达与CSFP存在相关性[18],但对基因多态性的研究结论有所不同,原因可能为基因多态性在不同种族、地域中表现形式不同。同时,研究样本量的差异也会导致结论具有争议。因此,仍需对CSFP基因多态性的大样本研究,必要时进一步作全基因组联合研究,以寻找CSFP的生物遗传学标志。

    综述所述,本研究发现瘦素、胰岛素抵抗是CSFP的危险因素。此外,LEP rs7799039、LEPR rs1137100、LEPR rs1137101多态性与CSFP无相关性,有待于更大样本量或meta分析进一步来阐明瘦素及瘦素受体基因与CSFP的相关性,为CSFP的预防、诊疗提供新思路。

  • 图  1  海马神经细胞的形态与鉴定

    A:海马神经细胞典型形态(×200);B:海马神经细胞NeuN染色(比例尺:50 μm)。

    Figure  1.  Morphology and identification of hippocampal neurons

    图  2  OGD/R后不同时刻海马神经细胞中RND3 mRNA的表达量

    与正常组相比,*P < 0.05;与复氧复糖6 h组相比,#P < 0.05;与复氧复糖9 h组相比,&P < 0.05。

    Figure  2.  mRNA expression of RND3 in hippocampal neurons at different times after OGD/R

    图  3  沉默RND3对OGD/R损伤海马神经细胞RND3 mRNA表达和细胞活力的影响

    A:各组细胞RND的mRNA表达量;B:各组细胞的细胞活力;与正常组相比,***P < 0.001;与沉默RND3阴性组相比,##P < 0.01,###P < 0.001。

    Figure  3.  Effects of RND3 silencing on RND3 mRNA expression and cell viability of OGD/ R-injured hippocampal neurons

    图  4  沉默RND3对OGD/R损伤海马神经细胞炎症因子表达的影响

    A:各组细胞炎症因子TNF-α、IL-1β和IL-6的mRNA表达量;B:各组细胞上清液中炎症因子TNF-α、IL-1β和IL-6的蛋白浓度;与正常组相比,***P < 0.001;与沉默RND3阴性组相比,###P < 0.001。

    Figure  4.  The effect of silencing RND3 on the expression of inflammatory cytokines in OGD/R injured hippocampal neurons

    图  5  沉默RND3对OGD/R损伤海马神经元RND3蛋白表达和细胞凋亡的影响

    A:各组细胞促凋亡蛋白Caspase-3、Bax和抗凋亡蛋白Bcl-2的mRNA相对表达量;B:各组细胞RND3蛋白,促凋亡蛋白C-caspase-3、Bax和抗凋亡蛋白Bcl-2的蛋白表达条带;C:各组细胞RND3蛋白,促凋亡蛋白C-caspase-3、Bax和抗凋亡蛋白Bcl-2的蛋白相对表达量;D:Annexin V-FITC / PI+流式细胞仪检测细胞凋亡;E:各组细胞的细胞凋亡率;与正常组相比,**P < 0.01,***P < 0.001;与沉默RND3阴性组相比,##P < 0.01,###P < 0.001。

    Figure  5.  Effects of silencing RND3 on RND3 protein expression and apoptosis in OGD/ R-injured hippocampal neurons

    图  6  沉默RND3对OGD/R损伤海马神经元NF-κB(p65)表达的影响

    A:各组细胞NF-κB(p65)mRNA表达量;B:各组细胞胞核内NF-κB(p65)的蛋白表达量;与正常组比较,***P < 0.001;与沉默RND3阴性组比较,###P < 0.001。

    Figure  6.  Effect of silencing RND3 on expression of NF-κB(p65)in OGD/ R-injured hippocampal neurons

    表  1  引物序列

    Table  1.   The primer sequences

    基因名称上游引物序列(5′-3′)下游引物序列(5′-3′)
    RND3 GCAAGATAGTAGTGGTGGGCG TCTGGGTAAGAGAGGGGACGG
    TNF-α CTCCTCACCCACACCGTCAG GAGCAGGTCCCCCTTCTCCA
    IL-1β TACAGTGGCAATGAGGATGAC CAAAGATGAAGGGAAAGAAGG
    IL-6 TTCGGTCCAGTTGCCTTCTC GTGCCTCTTTGCTGCTTTCA
    Caspase-3 CGGGCAAGCCAGATGTTTAT CAGCTCCGACTCTCCGAGAA
    Bax CCTTTTTGCTACAGGGTTTC TGTTGTTGTCCAGTTCATCG
    Bcl-2 GAGGGGCTACGAGTGGGATAC TCAGGCTGGAAGGAGAAGATG
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出版历程
  • 收稿日期:  2021-07-26
  • 网络出版日期:  2021-10-29
  • 刊出日期:  2021-10-30

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