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新型冠状病毒感染者咽拭子与粪便排毒规律及临床表现

黄瑛 罗云 武彦 刘冰 江姗 何花

徐丽秀, 美力班·吐尔逊, 克热曼·牙库甫. miR-181a在卵巢癌细胞中对顺铂的耐药作用[J]. 昆明医科大学学报, 2022, 43(1): 20-25. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20220131
引用本文: 黄瑛, 罗云, 武彦, 刘冰, 江姗, 何花. 新型冠状病毒感染者咽拭子与粪便排毒规律及临床表现[J]. 昆明医科大学学报, 2022, 43(1): 96-101. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20220112
Lixiu XU, TUERXUN Meiliban, YAKUFU Kereman. Studies on Cisplatin Resistance of miR-181a in Ovarian Cancer Cells[J]. Journal of Kunming Medical University, 2022, 43(1): 20-25. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20220131
Citation: Ying HUANG, Yun LUO, Yan WU, Bing LIU, Shan JIANG, Hua HE. The Regularity and Clinical Manifestations of Throat Swab and Fecal Detoxification in New Coronavirus Infected Patients[J]. Journal of Kunming Medical University, 2022, 43(1): 96-101. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20220112

新型冠状病毒感染者咽拭子与粪便排毒规律及临床表现

doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20220112
基金项目: 昆明市科技局科研基金资助项目(2020-1-C-004)
详细信息
    作者简介:

    黄瑛(1965~),女,云南大理人,医学学士,主任医师,主要从事发热感染性疾病诊疗工作

    通讯作者:

    何花,E-mail:371366456@qq.com

  • 中图分类号: R563.1

The Regularity and Clinical Manifestations of Throat Swab and Fecal Detoxification in New Coronavirus Infected Patients

  • 摘要:   目的  通过分析咽拭子、粪便新冠病毒核酸均阳性者的临床表现,探索其临床特征及排毒规律,为临床诊疗提供依据。  方法  回顾性分析昆明市第三人民医院2020年2月至12月收治的59例新冠病毒感染者临床症状、实验室指标、咽拭子及粪便新冠病毒排毒规律。  结果  粪便阳性组:潜伏感染7例,首次咽拭子核酸阳性至有症状3~8 d(中位数4 d),持续阳性5例,反复阳性2例;咽拭子阳性后1~28 d粪便呈阳性(中位数6 d)。无症状5例,咽拭子持续阳性2例,反复阳性2例;咽拭子阳性后4~21 d粪便呈阳性(中位数6 d)。21例有症状者发病至咽拭子阳性1~21 d(中位数5 d),8例持续阳性4~20 d,10例反复阳性8~26 d;咽拭子阳性后4~29 d粪便呈阳性(中位数15 d)。粪便阴性组:潜伏感染6例,咽拭子阳性至有症状4~10 d(中位数5 d),持续阳性2例、反复阳性2例;4例无症状者咽拭子持续阳性1例、反复阳性1例;16例有症状者发病至咽拭子阳性1~16 d(中位数5.5 d),持续阳性3例、反复阳性10例。2组咽拭子核酸持续阳性时间有统计学差异(P < 0.05)、反复阳性时间无统计学差异(P > 0.05);2组肺部CT表现有统计学差异(P < 0.05);2组临床表现、肝功、肾功、心肌酶、血常规、CRP、T淋巴细胞等均无统计学差异(P > 0.05)。  结论  2组症状体征、脏器功能损伤、炎症指标均无差异。病毒排毒规律性不强,但咽拭子及粪便均排毒者比仅咽拭子排毒者排毒持续时间更长,肺炎更多见。
  • 卵巢癌是一种常见的恶性肿瘤,影响当代妇女生命安全[1]。据报道,2018年全球新增病例295 414例,受害者超过18万人,预计2020年全球OC的新发病例为308 069例,死亡约193.811例[2]。除手术外,以铂类药物为主的化学治疗是目前卵巢癌主要治疗手段,但肿瘤耐对上皮性卵巢癌的化疗带来了极大的挑战,其调控机制十分复杂[3-4]

    microRNA(miRNAs )存在于多种生物体中,在细胞生存和肿瘤发生等过程中发挥重要的调控作用[5-6]。随着对miRNAs研究,miRNAs参与卵巢癌的化疗中肿瘤耐性的作用及调控机制研究也日渐深入[7]。miR-181a在肝癌、结肠癌、恶性脑胶质瘤、霍奇金淋巴瘤等肿瘤发生中发挥重要的调控作用[8-10],但其与卵巢上皮性癌(卵巢癌)化疗耐药及其机制的研究未见报道。PPKCD被证实是一种促凋亡蛋白激酶,与细胞周期进展有关且参与多种细胞进程,特别是在化疗耐受方面受到广泛关注[11]。本研究通过功能获得性和缺失性研究,联合MicroRNA靶基因预测数据库分析,探讨miR-181a影响PRKCD基因表达及卵巢癌A2780/DDP细胞及A2780细胞的增殖,为卵巢癌靶向治疗奠定一定的理论基础。

    卵巢癌耐药细胞A2780/DDP及敏感细胞A2780均获赠于新疆医科大学第一附属医院肿瘤中心。1640培养基购自以色列BI公司。脂质体2000购买于美国LifeTechnologies公司。BCA蛋白定量试剂盒购自美国Thermo公司。PRKCD抗体、β-actin均购自美国Abcam公司。miR-181a mimics和inhibitors及阴性对照购买于美国Dharmacon公司。TaqManMicroRNA试剂盒,反转录试剂盒购自美国Life公司。

    1.2.1   实时定量PCR(qRT-PCR)

    细胞达到适宜密度时,使用无菌细胞刮收集细胞沉淀,加入Trizol后对细胞进行总RNA的提取,随后按照相对应产品说明书,对RNA进行反转录以及目的基因的扩增。反应条件如下:94 ℃预变性2 min,94 ℃变性1 min,60 ℃退火30 s,70 ℃延伸15 s,执行35个循环,以U6作为内参照,根据2-△△CT计算RNA相对表达量,并进行数据分析。每一组实验重复3次。引物序列如下,

    miR-181a:上游5′ -TGCGGGTGCTCCGCTTCGGCAGC-3′ ,

    下游5′ -GAGTGCAGGGTCCGAGGT-3′ ;

    U6:上游5′ -CTCGCTTCGGCAGCACA-3′ ,

    下游 5′ -AACGCTTCACGAATTTGCGT-3′ 。

    1.2.2   细胞转染

    取1×105个/孔的A2780及A2780/DDP细胞接种于6孔板内,按照预实验结果对上述两种细胞进行转染。分组情况如下,将A2780细胞分为3 组,分别为miR-181a inhibitor组(转染miR-181a inhibitor),inhibitorNC组(阴性对照),空白组(常规培养基培养)。 将A2780/DDP细胞同样分为3组,分别为miR-181a mimics组(转染miR-181a mimics),mimicsNC组(阴性对照),空白组(常规培养基培养)。转染6 h后更换培养基,继续培养48 h,在荧光倒置显微镜下观察绿色荧光亮度,随后采用Real-time PCR检测转染效率。

    1.2.3   MTT

    96孔板中加入适当密度的细胞,待细胞过夜贴壁后,向每孔中分别加入浓度不同的顺铂,浓度如下0、10、20、30、40、50 μmol/L,同一种浓度下设3个复孔。 20 μL MTT溶液添加至孔中,37 ℃环境中放置4 h,随后加入150 μL 的DMSO。酶标仪中设置波长570 nm,测定每个孔中的吸光度数值(OD),取3组平均值。细胞存活率(%)=(OD实验孔/OD对照孔)×100%,绘制细胞的生存曲线。

    1.2.4   蛋白质提取及Western blot

    向状态良好的细胞中加入100 μL强效RIPA裂解液在冰上裂解30 min,期间每隔10 min吹打一次,共3次,保证细胞裂解充分。用无菌的细胞刮将裂解液和细胞的混合物转移至EP管中离心,在BCA蛋白定量试剂盒的指导下进行蛋白定量,用于后续Western blot实验。

    检测电泳设备无漏液后,每孔道添加30 µg蛋白,经过恒压湿转,将SDS-PAGE上的蛋白转移至PVDF膜上,封闭液封闭1 h,加入一抗4 ℃孵育过夜,抗体浓度分别为1∶500的PRKCD,1∶1000的β-actin。次日,使用HRP标记的二抗室温条件下孵育1 h,利用配制的ECL显影剂(A液∶B液 = 1∶1)于暗室下显影。

    1.2.5   统计学处理

    采用SPSS16.0统计学软件进行统计分析;计量资料以均数±标准差($\bar x \pm s $)表示,采用t检验或方差分析。以P < 0.05为差异具有统计学意义。

    Real-timePCR技术检测显示miR-181a在A2780/DDP细胞中mRNA表达量低于A2780细胞(P < 0.05)(图1)。随后选取A2780/DDP细胞进行miR-181a mimics转染,选取A2780细胞进行miR-181a inhibitor转染。

    图  1  miR-181a在两种卵巢癌细胞中qRT-PCR结果
    与A2780细胞比较,*P < 0.05。
    Figure  1.  The expression of miR-181a mRNA in A2780 and A2780/DDP cells

    利用qRT-PCR技术对转染miR-181ainhibitor和miR-181amimics的细胞进行检测,结果显示,与NC组相比,A2780细胞中miR-181a的表达明显被抑制(图2A);A2780/DDP细胞后miR-181a的表达明显增强(图2B)。以上结果表明miR-181ainhibitor和miR-181amimics转染有效干预了A2780细胞和A2780/DDP细胞中miR-181a的表达,可应用于接下来的实验。

    图  2  miR-181a在两种细胞中qRT-PCR结果
    A:A2780细胞中miR-181a的mRNA相对表达量;B:A2780/DDP细胞中miR-181a的mRNA相对表达量。与空白对照组细胞比较,*P < 0.05。
    Figure  2.  The transfection efficiency of miR-181a inhibitors and mimics

    MTT结果显示,抑制miR-181a后, A2780细胞的存活率随着DDP药物浓度(0、10、20、30、40、50 μmol/L)的增加明显提升(P < 0.05)(表1)。miR-181a 上调后,随着药物浓度的提高,A2780/DDP细胞存活率明显下降,差异具有统计学意义(P < 0.05)(表2)。

    表  1  A2780细胞在不同浓度顺铂作用下的MTT数值
    Table  1.  MTT results of A2780 cells treated with different concentrations of Cisplatin
    组别药物浓度(μmol/L)
    01020304050
    阴性对照组 96.48 ± 1.58 73.42 ± 1.82 52.36 ± 1.32 19.87 ± 2.63 11.28 ± 2.36 6.68 ± 1.72
    低表达组 97.23 ± 1.22 86.72 ± 1.76* 79.52 ± 1.68* 69.86 ± 1.92* 49.62 ± 1.56* 20.27 ± 1.82*
    t −3.007 −12.026 −130.674 −121.951 −83.009 −235.386
    P 0.10 0.01 < 0.001 < 0.001 < 0.001 < 0.001
      与阴性对照组比较,*P < 0.05。
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    表  2  A2780/DDP细胞在不同浓度顺铂作用下的MTT数值
    Table  2.  MTT results of A2780/DDP cells treated with different concentrations of Cisplatin
    组别药物浓度(μmol/L)
    01020304050
    阴性对照组 97.42 ± 1.42 92.85 ± 1.72 85.64 ± 1.87 82.48 ± 2.24 76.95 ± 1.98 61.12 ± 2.32
    低表达组 97.16 ± 1.82 88.63 ± 1.87 84.72 ± 1.87 76.12 ± 1.87 59.72 ± 2.52 40.58 ± 2.78
    t 1.126 48.728 0.6025 29.773 55.265 77.34
    P 0.377 < 0.001 0.579 < 0.001 < 0.001 < 0.001
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    利用TargetScan、miRDB与miRwalk数据库,对3个数据库进行交集得到517个基因,提示PRKCD可能为miR-181a的下游靶基因(图3),结合Western blot技术验证,结果表明A2780细胞转染miR-181a inhibitors后PRKCD蛋白表达明显增强;而miR-181a 表达上调后,A2780/DDP细胞中PRKCD蛋白表达显著减少(图4)。提示PRKCD蛋白可能作为miR-181a的下游靶基因受其调控。

    图  3  miR-181a靶基因预测韦恩图
    Figure  3.  Venn diagram of screening differentially expressed genes
    图  4  PRKCD蛋白在两种卵巢癌细胞中Western blot结果
    A:A2780细胞中PRKCD的Western blotting结果;B:A2780/DDP细胞中PRKCD的Western blotting结果。
    Figure  4.  Expression of PRKCD protein in A2780 and A2780/DDP cells

    卵巢癌是死率最高的妇科恶性肿瘤之一,5 a生存率仅为25%~30%,高死亡率的原因包括早期症状隐匿,约70%的患者确诊时已为中晚期,且缺乏行之有效的治疗手段[12]。现阶段,以手术结合术后化疗药物治疗卵巢癌已经成为主流手段。但随着治疗周期的持续,肿瘤细胞对其敏感性也会逐渐下降,部分患者短时间之内发生复发,5 a生存率仍很低,疗效仍不理想。

    近年来,随着RNA干扰技术的崛起,其作为一种重要工具和手段已经参与到基因诊断和靶点治疗。目前,研究发现卵巢癌化疗耐药与miRNAs表达谱特征密切相关,并且已证实多种miRNAs具有调控卵巢癌化疗敏感性的作用[13-15]。miRNAs的研究不但揭示了这种生物学过程中的潜在机制,也为深入研究肿瘤耐药性机制提供了可能。miRNAs是细胞增殖、死亡、对抗外界应激和脂肪代谢的关键调节因子[16],有研究表明,miR-181a在结肠癌[7]、淋巴瘤[8]、肝癌[9]、恶性脑胶质瘤[10]中能够起到负性调节细胞恶性生物学行为的能力。虽然研究已证实miR-181a在头颈部肿瘤[17]、小细胞肺癌[18]等肿瘤耐药机制中扮演着重要角色,然而其在调节卵巢癌细胞耐药机制方面的研究报道较少。

    本实验发现,miR-181a表达在卵巢癌A2780细胞中的表达高于卵巢癌A2780/DDP细胞(图1),故采用RNA干扰技术沉默A2780细胞中的miR-181a,相反,对A2780/DDP细胞中miR-181a过表达,通过qRT-PCR技术验证转染效率(图2)。将不同浓度顺铂添加至转染前后及空白组细胞中,结果提示下调miR-218的表达,细胞存活率显著提高,当耐药细胞株中miR-181a表达增高时,细胞存活率降低,表明miR-218在A2780细胞对顺铂的敏感性方面起到抑制作用。根据上述实验结果可以推测miR-181a能使卵巢癌细胞对顺铂的敏感性降低,从而影响卵巢癌细胞的化疗耐药。

    PRKCD (蛋白激酶C δ),是最早发现的不依赖钙激活的蛋白激酶C的同工酶[19],是生长因子信号传导通路上的重要组成部分,能调节各种细胞功能,包括细胞增殖,分化,死亡[20-21]。PRKCD的激活和细胞周期有关[22],且PRKCD的下调能够显著影响肿瘤的恶性进展[23]。PRKCD在细胞凋亡中的作用已被广泛研究,而促进细胞凋亡的机制尚不明确,研究报道凋亡信号通路相关的几种蛋白可作为PRKCD的底物,其中包括促凋亡蛋白Smac和Tap63[24],抗凋亡蛋白Mcl‐1。在化疗药物治疗肿瘤机制研究中,PKCD被认为是细胞凋亡的重要媒介[25]。采用TargetScan、miRDB与miRwalk等数据库分析,PRKCD基因可能是miR-181a的靶基因(图3),Ke等报道miR-181a通过抑制PRKCD的表达增加宫颈癌对放疗的耐药性[26],笔者的结果表明miR-181a与PRKCD蛋白表达之间可能存在负调控(图4),与预测结果及上述文献一致。

    以上结果提示miR-181a在抑制卵巢癌细胞对顺铂的耐药性方面存在一定作用,且可能通过调控PRKCD表达来实现。但对于miR-181a在卵巢癌顺铂化疗耐药性及免疫治疗中的具体作用机制,以及其在卵巢癌预后方面的作用尚需进一步的研究。

  • 表  1  粪便新冠核酸阳性病例与阴性病例临床表现比较[n(%)] (1)

    Table  1.   Comparison of clinical manifestations between fecal COVID-19 positive cases and negative cases [n(%)] (1)

    粪便发热畏寒咽痛咽干全身酸痛
    阳性组 16(48.48) 2(6.06) 9(27.27) 8(24.24) 6(18.18)
    阴性组 13(50.00) 3(11.54) 8(30.77) 3(11.54) 6(23.08)
    χ2 0.01 0.56 0.09 1.54 0.22
    P 0.91 0.65 0.77 0.21 0.64
      n = 59。
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    表  1  粪便新冠核酸阳性病例与阴性病例临床表现比较[n(%)] (2)

    Table  1.   Comparison of clinical manifestations between fecal COVID-19 positive cases and negative cases [n(%)] (2)

    粪便 咯痰 咳嗽 气促 SaO2(≤93%) CT示肺炎病例数
    阳性组 12(36.36) 18(54.55) 5(15.15) 9(27.27) 28(84.85)
    阴性组 8(30.77) 11(42.30) 6(23.08) 3(11.54) 16(61.54)
    χ2 0.20 0.87 0.60 2.22 4.17
    P 0.65 0.35 0.44 0.14 0.04*
      n = 59,*P < 0.05。
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    表  2  粪便新冠核酸阳性病例与阴性病例实验室检查结果比较n = 59 [M(QR)]

    Table  2.   Comparison of laboratory test results between fecal COVID-19 positive cases and negative cases n = 59 [M(QR)]

    项目(正常范围)粪便核酸结果[M(QR)]ZP
    白细胞 + 4.94(1.79) −0.61 0.54
    (4~10)×109/L 5.62(30.70)
    淋巴细胞计数 + 1.46(0.88) −0.53 0.60
    (0.8~4)×109/L 1.65(1.18)
    中性粒细胞计数计数 + 3.09(2.33) −0.46 0.65
    (2~7)×109/L 3.09(2.75)
    嗜酸性粒细胞计数 + 0.06(0.11) −0.38 0.71
    (0.02~0.5) 0.05(0.10)
    血小板(×109/L) + 250(121.50) −1.79 0.07
    (100~300)×109/L 207(83)
    CRP + 1.30(4.87) −0.04 0.97
    (0~6)mg/L 1.35(12.04)
    CD4+计数 + 414.50(545.75) −1.58 0.11
    (706~1125)个/μL 495(531.75)
    CD3+计数 + 1004(640) −0.12 0.91
    (1027~2086)个/μL 1100(920.75)
    CD8+计数 + 371(306) −0.57 0.57
    (323~836)个/μL 382(340)
    尿素氮 + 3.50(1.40) −1.72 0.09
    (1.43~7.14) mmol/L 3.10(1.27)
    肌酐 + 63.10(28.40) −0.40 0.69
    (35~97) μmol/L 63.50(25.40)
    尿酸 + 290.5(128) −0.91 0.37
    (155~428) μmol/L 267.350(143.53)
    r-谷氨酰氨基转移酶 + 25.20(20.90) −0.55 0.58
    (7~50) U/L 28.95(27.20)
    丙氨酸氨基转移酶 + 22(13.50) −0.21 0.83
    (5~40) U/L 22.85(14.10)
    门冬氨酸氨基转移酶 + 23(10.50) −0.54 0.59
    (8~40) U/L 23.5(10.50)
    乳酸脱氢酶 + 176(26.50) −1.25 0.21
    (109~245) U/L 191(86.50)
    肌酸激酶 + 79(47.10) −1.48 0.88
    (26~174) U/L 78.30(44)
    肌红蛋白 + 17.44(10.02) −0.38 0.71
    (0~68) ng/mL 18.22(11.26)
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出版历程
  • 收稿日期:  2021-12-18
  • 网络出版日期:  2021-12-20
  • 刊出日期:  2022-01-15

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