留言板

尊敬的读者、作者、审稿人, 关于本刊的投稿、审稿、编辑和出版的任何问题, 您可以本页添加留言。我们将尽快给您答复。谢谢您的支持!

姓名
邮箱
手机号码
标题
留言内容
验证码

miR-125a-3p对动脉粥样硬化斑块及M1/M2巨噬细胞、MMP-9和VEGF的影响

刘演龙 光雪峰 尹小龙 戴海龙

刘演龙, 光雪峰, 尹小龙, 戴海龙. miR-125a-3p对动脉粥样硬化斑块及M1/M2巨噬细胞、MMP-9和VEGF的影响[J]. 昆明医科大学学报, 2022, 43(9): 1-6. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20220915
引用本文: 刘演龙, 光雪峰, 尹小龙, 戴海龙. miR-125a-3p对动脉粥样硬化斑块及M1/M2巨噬细胞、MMP-9和VEGF的影响[J]. 昆明医科大学学报, 2022, 43(9): 1-6. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20220915
Yanlong LIU, Xuefeng GUANG, Xiaolong YIN, Hailong DAI. Effects of miR-125a-3p on Atherosclerotic Plaque, M1/M2 Macrophages, MMP-9 and VEGF[J]. Journal of Kunming Medical University, 2022, 43(9): 1-6. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20220915
Citation: Yanlong LIU, Xuefeng GUANG, Xiaolong YIN, Hailong DAI. Effects of miR-125a-3p on Atherosclerotic Plaque, M1/M2 Macrophages, MMP-9 and VEGF[J]. Journal of Kunming Medical University, 2022, 43(9): 1-6. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20220915

miR-125a-3p对动脉粥样硬化斑块及M1/M2巨噬细胞、MMP-9和VEGF的影响

doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20220915
基金项目: 国家自然科学基金资助项目(81700438);云南省自然科学基金资助项目[2017FE467(-199)]
详细信息
    作者简介:

    刘演龙(1996~),男,湖南岳阳人,在读硕士研究生,主要从事心血管疾病基础与临床研究工作

    通讯作者:

    戴海龙,E-mail:46944404@qq.com

  • 中图分类号: R543

Effects of miR-125a-3p on Atherosclerotic Plaque, M1/M2 Macrophages, MMP-9 and VEGF

  • 摘要:   目的   探讨miR-125a-3p对大耳兔动脉粥样硬化斑块形成、M1/M2巨噬细胞、基质金属蛋白酶9(MMP-9)和血管内皮生长因子(VEGF)的影响。  方法  15只成年雄性健康日本大耳兔,随机分为3组,每组5只,对照组给予普通饲料喂养,动脉粥样硬化模型组给予牛血清白蛋白注射和高胆固醇饲料喂养,miR-125a-3p抑制剂干预组给予动脉粥样硬化兔注射miR-125a-3p干扰慢病毒载体。油红O染色后图像分析法测定斑块面积,免疫组化法测定MMP-9和VEGF,免疫荧光法检测斑块组织中M1标记物CD11c和M2标记物CD206。  结果  与动脉粥样硬化组相比,miR-125a-3p抑制剂组斑块面积百分比显著降低(P < 0.0001)。与对照组相比,动脉粥样硬化组MMP-9(P < 0.001)、VEGF(P < 0.01)和CD11c(P < 0.001)水平显著升高,CD206水平显著降低(P < 0.001);与动脉粥样硬化组相比,miR-125a-3p抑制剂干预组MMP-9(P < 0.01)、VEGF(P < 0.01)和CD11c(P < 0.001)水平有所降低,CD206水平有所升高(P < 0.001)。  结论  抑制miR-125a-3p可减轻动脉粥样硬化斑块的形成,平衡M1/M2巨噬细胞,降低斑块组织中MMP-9和VEGF的表达,miR-125a-3p可能是治疗不稳定动脉粥样硬化斑块的新靶点。
  • 图  1  血管内膜油红“O”染色各组动脉粥样硬化病变区域

    与对照组比较,****P < 0.0001,****P < 0.0001;与AS模型组比较,***P < 0.001。

    Figure  1.  Vascular intima oil red "O" staining for atherosclerotic lesions in each group

    图  2  血管内膜油红“O”染色

    a:对照组;b:AS模型组;c:AS模型+miR-125a-3p抑制剂干预组;miR-125a-3p抑制剂干预后动脉粥样硬化组病变区域显著减小。

    Figure  2.  Vascular intima is stained with oil red "O" stain

    图  3  免疫组化检测各组MMP-9 表达水平

    与对照组比较,***P < 0.001,*P < 0.05;与AS模型组比较,**P < 0.01。

    Figure  3.  The expression level of MMP-9 was detected by immunohistochemistry

    图  4  MMP-9免疫组化染色(×200)

    a:对照组;b:AS模型组;c:miR-125a-3p抑制剂干预组;miR-125a-3p抑制剂干预后,MMP-9表达水平显著下降。

    Figure  4.  MMP-9 immunohistochemical staining (×200)

    图  5  免疫组化检测各组VEGF表达水平

    与对照组比较,**P < 0.01,*P < 0.05;与AS模型组比较,**P < 0.01。

    Figure  5.  Immunohistochemistry was used to detect VEGF expression levels in each group

    图  6  VEGF免疫组化染色(×200)

    a:对照组;b:AS模型组;c:AS模型+miR-125a-3p抑制剂干预组;miR-125a-3p抑制剂干预后,VEGF表达水平下降。

    Figure  6.  VEGF immunohistochemical staining (×200)

    图  7  免疫荧光检测各组M1标志物CD11c表达水平

    与对照组比较,****P < 0.0001,*P < 0.05;与AS模型组比较,****P < 0.0001。

    Figure  7.  The expression level of M1 marker CD11c was detected by immunofluorescence

    图  8  M1标志物CD11c免疫荧光染色(×200)

    a:对照组;b:AS模型组;c:AS模型+miR-125a-3p抑制剂干预组;miR-125a-3p抑制剂干预后,CD11c表达水平显著下降。

    Figure  8.  M1 marker CD11c immunofluorescence staining (×200)

    图  9  免疫荧光检测各组M2 标志物CD206表达水平

    与对照组比较,****P < 0.0001,**P < 0.01;与AS模型组比较,****P < 0.0001。

    Figure  9.  The expression level of M2 marker CD206 was detected by immunofluorescence

    图  10  M2 标志物CD206免疫荧光染色(×200)

    a:对照组;b:AS模型组;c:AS模型+miR-125a-3p抑制剂干预组;miR-125a-3p抑制剂干预后,CD206表达水平明显升高。

    Figure  10.  M2 marker CD206 immunofluorescence staining (×200)

  • [1] Moore K J,Sheedy F J,Fisher E A. Macrophages in atherosclerosis:A dynamic balance[J]. Nat Rev Immunol,2013,13(10):709-721. doi: 10.1038/nri3520
    [2] Mills C D,Ley K. M1 and M2 macrophages:The chicken and the egg of immunity[J]. J Innate Immun,2014,6(6):716-726. doi: 10.1159/000364945
    [3] Murray P J,Allen J E,Biswas S K,et al. Macrophage activation and polarization:Nomenclature and experimental guidelines[J]. Immunity,2014,41(1):14-20. doi: 10.1016/j.immuni.2014.06.008
    [4] Schmitz G,Grandl M. Role of redox regulation and lipid rafts in macrophages during Ox-LDL-mediated foam cell formation[J]. Antioxid Redox Signal,2007,9(9):1499-1518. doi: 10.1089/ars.2007.1663
    [5] 杨新春,张大鹏. 慢性冠状动脉综合征的概念和要点及意义[J]. 中国心血管病研究,2019,17(10):871-873. doi: 10.3969/j.issn.1672-5301.2019.10.002
    [6] Stoger J L,Gijbels M J,Van Der Velden S,et al. Distribution of macrophage polarization markers in human atherosclerosis[J]. Atherosclerosis,2012,225(2):461-468. doi: 10.1016/j.atherosclerosis.2012.09.013
    [7] Kuznetsova T,Prange K H M,Glass C K,et al. Transcriptional and epigenetic regulation of macrophages in atherosclerosis[J]. Nature Reviews Cardiology,2020,17(4):216-228. doi: 10.1038/s41569-019-0265-3
    [8] Van der Veken B,De Meyer G R,Martinet W. Intraplaque neovascularization as a novel therapeutic target in advanced atherosclerosis[J]. Expert Opin Ther Targets,2016,20(10):1247-1257. doi: 10.1080/14728222.2016.1186650
    [9] 徐声波,吴平路,余晖,等. AIS患者CTRP1、MMP-9水平与颈动脉硬化斑块稳定性及神经功能缺损程度的关系[J]. 脑与神经疾病杂志,2021,29(8):492-496.
    [10] Ganta V C,Choi M,Farber C R,et al. Antiangiogenic VEGF165b regulates macrophage polarization via S100A8/S100A9 in peripheral artery disease[J]. Circulation,2019,139(2):226-242. doi: 10.1161/CIRCULATIONAHA.118.034165
    [11] Clemente C,Rius C,Alonso-Herranz L,et al. MT4-MMP deficiency increases patrolling monocyte recruitment to early lesions and accelerates atherosclerosis[J]. Nat Commun,2018,9(1):910. doi: 10.1038/s41467-018-03351-4
    [12] 戴海龙,肖娟,潘云. 冠心病患者外周血单核细胞中miR-125a-3p的表达研究[J]. 中国心血管病研究,2020,18(3):203-205. doi: 10.3969/j.issn.1672-5301.2020.03.003
    [13] Mushenkova N V,Nikiforov N G,Melnichenko A A,et al. Functional phenotypes of intraplaque macrophages and their distinct roles in atherosclerosis development and atheroinflammation[J]. Biomedicines,2022,10(2):452. doi: 10.3390/biomedicines10020452
    [14] Barquera S,Pedroza-Tobias A,Medina C,et al. Global overview of the epidemiology of atherosclerotic cardiovascular disease[J]. Arch Med Res,2015,46(5):328-338. doi: 10.1016/j.arcmed.2015.06.006
    [15] Guilliams M,Mildner A,Yona S. Developmental and functional heterogeneity of monocytes[J]. Immunity,2018,49(4):595-613. doi: 10.1016/j.immuni.2018.10.005
    [16] Bouhlel M A,Derudas B,Rigamonti E,et al. PPARgamma activation primes human monocytes into alternative M2 macrophages with anti-inflammatory properties[J]. Cell Metab,2007,6(2):137-143. doi: 10.1016/j.cmet.2007.06.010
    [17] Rupaimoole R,Slack F J. MicroRNA therapeutics:towards a new era for the management of cancer and other diseases[J]. Nat Rev Drug Discov,2017,16(3):203-222. doi: 10.1038/nrd.2016.246
    [18] Bartel D P. MicroRNAs:Genomics,biogenesis,mechanism,and function[J]. Cell,2004,116(2):281-297. doi: 10.1016/S0092-8674(04)00045-5
    [19] Lujambio A,Lowe S W. The microcosmos of cancer[J]. Nature,2012,482(7385):347-355. doi: 10.1038/nature10888
    [20] Lv L L,Feng Y,Wu M,et al. Exosomal miRNA-19b-3p of tubular epithelial cells promotes M1 macrophage activation in kidney injury[J]. Cell Death Differ,2020,27(1):210-226. doi: 10.1038/s41418-019-0349-y
    [21] Mao Y,Liu X,Song Y,et al. VEGF-A/VEGFR-2 and FGF-2/FGFR-1 but not PDGF-BB/PDGFR-β play important roles in promoting immature and inflammatory intraplaque angiogenesis[J]. PloS One,2018,13(8):e0201395. doi: 10.1371/journal.pone.0201395
    [22] Bot P T,Pasterkamp G,Goumans M J,et al. Hyaluronic acid metabolism is increased in unstable plaques[J]. Eur J Clin Invest,2010,40(9):818-827. doi: 10.1111/j.1365-2362.2010.02326.x
  • [1] 陶代菊, 陈鹏, 李雨晴, 陈临宜, 杨仁华, 何波, 沈志强.  Corilagin对OX-LDL诱导的HUVECs细胞损伤的保护作用及对MyD88信号通路表达的影响, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20231019
    [2] 陆霓虹, 刘洪璐, 夏加伟, 陈杨君, 沈凌筠, 杨永锐, 李杰.  免疫功能和SAA、MMP-9、MMP-14在抗结核药物性肝损伤中的临床评估, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20220410
    [3] 张莉, 王雨婷, 石佳宁, 余丹, 杨仁华, 沈志强, 龙江, 陈鹏.  基于网络药理学分析灯盏乙素治疗动脉粥样硬化的分子机制和体内验证, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20220804
    [4] 杨科, 单祖建, 周琼华, 王峻峰.  可溶性细胞因子受体及基质金属蛋白酶与胰腺癌的关系, 昆明医科大学学报.
    [5] 李璠, 童宗武, 杨崇猛, 李娟娟, 袁云, 吴春云.  血管内皮生长因子在急性甲醇中毒大鼠大脑皮质的表达变化, 昆明医科大学学报.
    [6] 苟维杰.  血清VEGF、CA19-9以及OPN水平检测对大肠癌的临床诊断和手术疗效价值, 昆明医科大学学报.
    [7] 何迷.  多西紫杉醇在肝癌细胞裸鼠肝脏移植瘤中对P53、VEGF作用的研究, 昆明医科大学学报.
    [8] 兰丹凤.  Klotho基因G-395A多态性与2型糖尿病患者并发动脉粥样硬化的相关性, 昆明医科大学学报.
    [9] 官兵.  三七总皂苷减少高脂血症兔动脉壁损害作用的实验研究, 昆明医科大学学报.
    [10] 曹蕊.  瘦素对动脉粥样硬化血管内皮细胞中IL-6表达的影响, 昆明医科大学学报.
    [11] 李璠.  单核细胞趋化蛋白-1和血管内皮生长因子mRNA在急性甲醇中毒大鼠脑组织的表达, 昆明医科大学学报.
    [12] 林雁.  内皮素-1与基质金属蛋白酶-2在喉癌中的表达与浸润的相关性研究, 昆明医科大学学报.
    [13] 陈丽玲.  NPC1L1在树鼩AS造模中小肠和肝的表达及意义, 昆明医科大学学报.
    [14] 杜明.  MMP-9表达在不同方法获得破骨细胞的比较研究, 昆明医科大学学报.
    [15] 呼延婕.  白藜芦醇在治疗动脉粥样硬化中关键信号通路mTOR和STAT3转导机制的研究进展, 昆明医科大学学报.
    [16] 王玲.  2型糖尿病患者下肢动脉粥样硬化与骨密度改变的研究, 昆明医科大学学报.
    [17] 高血脂类风湿关节炎动脉粥样硬化患者超声分析, 昆明医科大学学报.
    [18] 普罗布考治疗动脉粥样硬化40例临床疗效观察, 昆明医科大学学报.
    [19] 邓紫玉.  老年高血压颈动脉硬化与血尿酸的相关性研究, 昆明医科大学学报.
    [20] 丘红梅.  代谢综合征与颈动脉内膜中层厚度关系的研究, 昆明医科大学学报.
  • 加载中
图(10)
计量
  • 文章访问数:  2998
  • HTML全文浏览量:  1931
  • PDF下载量:  134
  • 被引次数: 0
出版历程
  • 收稿日期:  2022-06-26
  • 网络出版日期:  2022-09-08
  • 刊出日期:  2022-09-29

目录

    /

    返回文章
    返回