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三七总皂苷对人根尖牙乳头干细胞增殖的影响

钱石兵 孟明耀 于鸿滨 段开文 李昌全 夏志刚

钱石兵, 孟明耀, 于鸿滨, 段开文, 李昌全, 夏志刚. 三七总皂苷对人根尖牙乳头干细胞增殖的影响[J]. 昆明医科大学学报, 2022, 43(10): 22-27. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20221018
引用本文: 钱石兵, 孟明耀, 于鸿滨, 段开文, 李昌全, 夏志刚. 三七总皂苷对人根尖牙乳头干细胞增殖的影响[J]. 昆明医科大学学报, 2022, 43(10): 22-27. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20221018
Shibing QIAN, Mingyao MENG, Hongbin YU, Kaiwen DUAN, Changquan LI, Zhigang XIA. Effect of Panax Noto-ginseng Saponins on the Proliferation of Human Stem Cells from Apical Papilla[J]. Journal of Kunming Medical University, 2022, 43(10): 22-27. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20221018
Citation: Shibing QIAN, Mingyao MENG, Hongbin YU, Kaiwen DUAN, Changquan LI, Zhigang XIA. Effect of Panax Noto-ginseng Saponins on the Proliferation of Human Stem Cells from Apical Papilla[J]. Journal of Kunming Medical University, 2022, 43(10): 22-27. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20221018

三七总皂苷对人根尖牙乳头干细胞增殖的影响

doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20221018
基金项目: 云南省生物医药重大科技专项(202102AA100007);云南省高层次卫生计生技术人才培养计划基金资助项目(H-2018089);昆明市卫生健康委员会卫生科研课题项目(2021-08-02-001)
详细信息
    作者简介:

    钱石兵(1996~),男,云南昆明人,在读硕士研究生,研究方向为牙周和口腔黏膜疾病的预防

    通讯作者:

    夏志刚,E-mail:xiayang928@sina.com

  • 中图分类号: R285.5

Effect of Panax Noto-ginseng Saponins on the Proliferation of Human Stem Cells from Apical Papilla

  • 摘要:   目的  探究三七总皂苷(panax noto-ginseng saponins,PNS)对人根尖牙乳头干细胞(human stem cells from apical papilla, hSCAPs)增殖的影响。  方法  收集牙乳头组织、贴壁法分离培养原代细胞,流式细胞术鉴定hSCAPs表面标志物,诱导成骨及成脂鉴定hSCAPs多向分化潜能;配制25 mg/L、50 mg/L、100 mg/L、200 mg/L的PNS培养基,CCK-8法检测不同浓度PNS下hSCAPs的增殖速率,流式细胞术检测最佳促进增殖组与对照组的细胞周期差异。  结果  原代分离培养成功的hSCAPs符合间充质干细胞来源,相关表面标记物高表达,可向成脂和成骨分化;与对照和其他实验组比较,25 mg/LPNS促进hSCAPs增殖效果最佳,差异具有统计学意义(P < 0.05)。  结论  25 mg/LPNS促进hSCAPs增殖能力的效果最佳,提示hSCAPs对PNS具有很强的敏感性。
  • 图  1  hSCAPs的培养及多向分化能力鉴定

    A:hSCAPs原代细胞;B:细胞传代培养;C:hSCAPs成骨诱导后茜素红染色;D:hSCAPs成骨对照组茜素红染色;E:hSCAPs成脂诱导后油红O染色;F:hSCAPs成脂对照组油红O染色。

    Figure  1.  Culture of hSCAPs and identification of multi -directional differentiation ability

    图  2  hSCAPs流式细胞鉴定结果

      注:CD73 、CD90 和CD105均为间充质干细胞表面标志物,流式结果显示均阳性高表达,CD34、CD45为造血细胞标记物,CD19、CD11b、HLA-DR是免疫细胞表面标记物均呈呈阴性。

    Figure  2.  Identification of hSCAPs surface antigen by flow cytometry

    图  3  不同浓度PNS下hSCAPs的生长曲线

    Figure  3.  The growth curve of hSCAPs under different concentrations of PNS

    图  4  对照组细胞周期分布

    Figure  4.  Cell cycle distribution of control group

    图  5  25 mg/L组细胞周期分布

    Figure  5.  Cell cycle distribution of 25 mg/L group

    图  6  细胞增殖指数差异

    *P < 0.05。

    Figure  6.  Difference in cell proliferation index

    表  1  不同浓度PNS下hSCAPs增殖的差异

    Table  1.   Differences in HSCAPS proliferation under different concentrations of PNS OD 值,$ \stackrel{-}{X} $ ± S

    组别第1天第3天第5天第7天第9天
    对照组 0.199 ± 0.005 0.275 ± 0.005 0.731 ± 0.006 0.984 ± 0.023 1.975 ± 0.062
    25 mg/L 0.126 ± 0.006* 0.442 ± 0.01* 1.385 ± 0.067* 1.549 ± 0.017* 2.784 ± 0.057*
    50 mg/L 0.075 ± 0.005*# 0.407 ± 0.011*# 1.058 ± 0.007*# 1.146 ± 0.016*# 2.443 ± 0.015*#
    100 mg/L 0.044 ± 0.003*#& 0.245 ± 0.009*#& 0.213 ± 0.009*#& 0.187 ± 0.003*#& 0.158 ± 0.007*#&
    200 mg/L 0.024 ± 0.002*#& 0.192 ± 0.003*#& 0.168 ± 0.005*#& 0.126 ± 0.003*#& 0.079 ± 0.013*#&
    F 490.006 358.621 598.128 3 552.492 2 174.635
    P 0.000 0.000 0.000 0.000 0.000
      与对照组比较,*P < 0.05;实验组两两比较,与25 mg/L组比较,#P < 0.05;与50 mg/L组比较,&P < 0.05;与100 mg/L组比较,P < 0.05。
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  • [1] SANZ J L,FORNER L,ALMUDEVER A,et al. Viability and Stimulation of Human Stem Cells from the Apical Papilla (hSCAPs) Induced by Silicate-Based Materials for Their Potential Use in Regenerative Endodontics:A Systematic Review[J]. Materials (Basel),2020,13(4):947-961.
    [2] Matichescu A,Ardelean L C,Rusu L C,et al. Advanced Biomaterials and Techniques for Oral Tissue Engineering and Regeneration-A Review[J]. Materials (Basel),2020,13(22):5303-5339.
    [3] Nada O A,El Backly R M. Stem Cells From the Apical Papilla (SCAP) as a Tool for Endogenous Tissue Regeneration[J]. Front Bioeng Biotechnol,2018,6:103-118. doi: 10.3389/fbioe.2018.00103
    [4] Sonoyama W,Liu Y,Fang D,et al. Mesenchymal stem cell-mediated functional tooth regeneration in swine[J]. PLoS One,2006,1(1):e79-88. doi: 10.1371/journal.pone.0000079
    [5] Duan L,Xiong X,Hu J,et al. Efficacy and safety of oral Panax notoginseng saponins for unstable angina patients:A meta-analysis and systematic review[J]. Phytomedicine,2018,47:23-33. doi: 10.1016/j.phymed.2018.04.044
    [6] QU J,XU N,ZHANG J,et al. Panax notoginseng saponins and their applications in nervous system disorders:a narrative review[J]. Ann Transl Med,2020,8(22):1525-1534. doi: 10.21037/atm-20-6909
    [7] Xie W,Meng X,Zhai Y,et al. Panax Notoginseng Saponins:A Review of Its Mechanisms of Antidepressant or Anxiolytic Effects and Network Analysis on Phytochemistry and Pharmacology[J]. Molecules,2018,23(4):940-957.
    [8] Sangkert S,Kamolmatyakul S,Meesane J. Mimicked scaffolds based on coated silk woven fabric with gelatin and chitosan for soft tissue defect in oral maxillofacial area[J]. Int J Artif Organs,2020,43(3):189-202. doi: 10.1177/0391398819877191
    [9] Hu L, Zhao B, Gao Z, et al. Regeneration characteristics of different dental derived stem cell sheets [J]. J Oral Rehabil, 2020, 47 Suppl 1: 66-72.
    [10] Smeda M, Galler K M, Woelflick M, et al. Molecular Biological Comparison of Dental Pulp- and Apical Papilla-Derived Stem Cells [J]. Int J Mol Sci, 2022, 23(5): 2615-2632.
    [11] Kwon S G,Kwon Y W,Lee T W,et al. Recent advances in stem cell therapeutics and tissue engineering strategies[J]. Biomater Res,2018,22:36-43. doi: 10.1186/s40824-018-0148-4
    [12] Jang S, Jeong J G, Oh T I, et al. Biomaterials for Cell-Surface Engineering and Their Efficacy [J]. J Funct Biomater, 2021, 12(3): 41-55.
    [13] Zheng H,Liu C,Ou Y,et al. Total saponins of Panax notoginseng enhance VEGF and relative receptors signals and promote angiogenesis derived from rat bone marrow mesenchymal stem cells[J]. J Ethnopharmacol,2013,147(3):595-602. doi: 10.1016/j.jep.2013.03.043
    [14] Ou Y F,Fu X K,Mei X S,et al. [Inhibitory effect of total saponins of Panax notoginseng on rat bone marrow mesenchymal stem cell apoptosis][J]. Sheng Li Xue Bao,2016,68(3):285-292.
    [15] Zhu P,Jiang W,He S,et al. Panax notoginseng saponins promote endothelial progenitor cell angiogenesis via the Wnt/beta-catenin pathway[J]. BMC Complement Med Ther,2021,21(1):53-63. doi: 10.1186/s12906-021-03219-z
    [16] Tee A R. The Target of Rapamycin and Mechanisms of Cell Growth [J]. Int J Mol Sci, 2018, 19(3): 880-812.
    [17] Matthews H K,Bertoli C,De Bruin R A M. Cell cycle control in cancer[J]. Nat Rev Mol Cell Biol,2022,23(1):74-88. doi: 10.1038/s41580-021-00404-3
    [18] Otto T,Sicinski P. Cell cycle proteins as promising targets in cancer therapy[J]. Nat Rev Cancer,2017,17(2):93-115. doi: 10.1038/nrc.2016.138
    [19] Schaffer J E. Lipotoxicity:Many Roads to Cell Dysfunction and Cell Death:Introduction to a Thematic Review Series[J]. J Lipid Res,2016,57(8):1327-1328. doi: 10.1194/jlr.E069880
  • [1] 邓勇军, 陈倩, 邹建彬, 宫政, 刘焕鹏.  ZIC1基因过表达激活P53信号通路抑制胸膜间皮瘤细胞增殖, 昆明医科大学学报.
    [2] 李婷, 郭维华.  糖酵解重编程在口腔鳞状细胞癌中的研究进展, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20230611
    [3] 王惠, 曾文珺, 张海萍, 郭瑞威.  钙库操纵型钙通道Orai3分子对冠状动脉血管平滑肌细胞增殖的影响, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20230423
    [4] 张莉, 赵熙, 赵华祥, 熊宝, 徐洁, 汤广平, 喻卓, 陈鹏.  卫茅碱对人血管内皮细胞及血管平滑肌细胞增殖、迁移及细胞周期的影响, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20230723
    [5] 梁彩红, 孟明耀, 李欣欣, 熊晶晶, 李檬, 刘梅, 侯宗柳, 黄永坤.  肠道菌群代谢物脱氧胆酸对人脐带间充质干细胞hUC-MSCs增殖及细胞周期的影响, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20230402
    [6] 袁伟, 孟明耀, 李欣欣, 熊晶晶, 李檬, 曹佳, 刘梅, 侯宗柳, 黄永坤.  内毒素的量效和时效对人脐带间充质干细胞增殖的影响, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20220928
    [7] 王晓寒, 牟善茂, 郝翠芳, 任琳琳, 王敏, 赵彤.  富血小板血浆促进人子宫内膜间充质干细胞(EnMSCs)增殖的机制, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20220126
    [8] 全宇航, 王忠慧, 李珊珊, 刘光顺.  七氟烷抑制宣威肺癌XWLC-05细胞生物学行为, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20211202
    [9] 殷顺会, 周建忠, 李自良.  Tiger17促进口腔黏膜成纤维细胞的增殖和迁移, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20210823
    [10] 贾凤梅, 殷顺会, 冉丽权, 田明彤, 张明珠.  特发性牙龈纤维瘤来源外泌体对正常牙龈细胞周期的影响, 昆明医科大学学报.
    [11] 柏春玲, 廖泽容, 张巧, 董馨忆.  应用流式细胞术快速测定细胞周期的DNA一步法, 昆明医科大学学报.
    [12] 胡正雄.  TGF-β2和geneX对BrdU标记骨髓间充质干细胞增殖与成骨分化的作用, 昆明医科大学学报.
    [13] 戈佳云.  慢病毒介导的FHIT基因过表达调控人肝癌细胞株生长实验研究, 昆明医科大学学报.
    [14] 袁勇.  适度低氧微环境对体外培养脑胶质瘤干细胞生长的影响, 昆明医科大学学报.
    [15] 张健.  盐霉素对人骨肉瘤MG-63细胞体外增殖和凋亡的影响, 昆明医科大学学报.
    [16] 倪滔.  改良贴壁组织块法与改良I型胶原酶消法对成骨细胞增殖效果的比较研究, 昆明医科大学学报.
    [17] 刘韬.  Corilagin对HUVEC增殖及细胞周期的影响, 昆明医科大学学报.
    [18] 赵瑜敏.  牙龈卟啉单胞菌对兔血管平滑肌细胞增殖和迁移的影响, 昆明医科大学学报.
    [19] TRB3在同型半胱氨酸抑制内皮细胞增殖中的作用研究, 昆明医科大学学报.
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出版历程
  • 收稿日期:  2022-06-11
  • 网络出版日期:  2022-10-09
  • 刊出日期:  2022-10-31

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