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血清CRP、TNF-α及IL-6在青春期多囊卵巢综合征患者中的表达

苑晓微,  秦茂华,  王丽君,  段源琪

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文章导航 > 昆明医科大学学报  > 2022 >  43(10): 136-138
周勇, 张尊月, 杨继青, 熊普, 王昆华. 海洛因造成呼吸系统损伤研究进展[J]. 昆明医科大学学报, 2022, 43(5): 155-161. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20220525
引用本文: 苑晓微, 秦茂华, 王丽君, 段源琪. 血清CRP、TNF-α及IL-6在青春期多囊卵巢综合征患者中的表达[J]. 昆明医科大学学报, 2022, 43(10): 136-138. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20221026
shu
Yong ZHOU, Zunyue ZHANG, Jiqing YANG, Pu XIONG, Kunhua WANG. Research Progress of Heroin-induced Respiratory Damage[J]. Journal of Kunming Medical University, 2022, 43(5): 155-161. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20220525
Citation: Xiaowei YUAN, Maohua QIN, Lijun WANG, Yuanqi DUAN. Expression of CRP，IL-6 and TNF-a in Serum of Patients with Adolescence Polycystic Ovary Syndrome[J]. Journal of Kunming Medical University, 2022, 43(10): 136-138. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20221026
shu

血清CRP、TNF-α及IL-6在青春期多囊卵巢综合征患者中的表达

doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20221026

  • 昆明市妇幼保健院，云南 昆明　650031

基金项目: 昆明市卫健委科研项目 （2020-05-01-001）
详细信息
    作者简介:

    苑晓微（1981～），女，吉林松原人，医学硕士，副主任医师，主要从事妇科内分泌疾病、青少年妇科学诊疗工作

  • 中图分类号: R711

Expression of CRP，IL-6 and TNF-a in Serum of Patients with Adolescence Polycystic Ovary Syndrome

  • Dept. of Gynecology，Kunming Maternal and Child Health Care Hospital， Kunming Yunnan 650031，China

摘要

    摘要
  • 摘要:   目的  探讨血清CRP、TNF-α及IL-6水平在青春期多囊卵巢综合征中的表达特点。  方法  选择符合纳入标准的100 例青春期PCOS患者作为观察组，其中肥胖型PCOS 40例（肥胖型PCOS组），非肥胖型60例（非肥胖型PCOS组）；同期70例正常青春期女性作为对照组。检测CRP、TNF-α及IL-6水平；检测空腹血糖（ fasting plasma glucose，FPG）和胰岛素（ fasting serum lisulin， FINS） 水平，计算胰岛素抵抗指数（HOMA-IR）。  结果   PCOS组中血清CRP、TNF-α、IL-6及HOMA-IR水平明显高于对照组（P < 0.05）；肥胖型PCOS组血清CRP、TNF-α、IL-6水平明显高于非肥胖型PCOS组（P < 0.05）。  结论  青春期PCOS患者血清CRP、TNF-α、IL-6水平明显升高，说明炎症因子可能参与青春期PCOS的发病过程。
    Abstract:   Objective   To study the expression of CRP, IL-6 and TNF-a in the serum of patients with Adolescence polycystic ovary syndrome （PCOS）.   Methods  Patients with Adolescence polycystic ovary syndrome（PCOS）were selected as the observation group （100cases）, and 70 routine medical examination Adolescence women as the control group. The levels of CRP, IL-6, TNF-a, fasting plasma glucose （FPG）and fasting serum insulin （FINS） were detected Insulin Resistance Index （HOMA-IR） was calculated.   Results  Serum levels of CRP, TNF-a, IL-6 and HOMA-IR in PCOS group were significantly higher than those in the control group （P < 0.05）. The levels of CRP, TNF-a and IL-6 in the obese PCOS group were higher than those in the non-obese PCOS group （P < 0.05）.   Conclusion  The serum levels of CRP, TNF-a and IL-6 were significantly increased in Adolescent PCOS patients, which suggested that inflammatory factors might be involved in the pathogenesis of Adolescence polycystic ovary syndrome.
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  • 肾间质纤维化（renal interstitial fibrosis，RIF）是慢性肾脏疾病进展至终末期肾病的必经过程[1]，RIF的主要病理特征为大量细胞外基质成分（extracellular matrix，ECM）如纤连蛋白（fibronectin，FN）、Ⅰ型胶原（collagen type Ⅰ，Col Ⅰ）等在肾间质沉积并形成瘢痕，从而破坏肾脏结构，导致肾功能受损[2-3]。

    在肾脏损伤过程中，多种因子（如TGF-β1）可诱导肾小管上皮细胞转化为成纤维细胞 /肌成纤维细胞，并导致ECM蛋白沉积的过程被称为上皮间质转化（epithelial-mesenchymal transition，EMT）。大量研究表明，EMT是RIF的发生和发展中重要的病理生理过程，是启动和维持RIF的关键机制[4-5]。芒果苷元（norathyriol，NL）属于双苯并吡喃酮类黄酮化合物，本课题组前期研究发现芒果苷元能降低血尿酸水平且改善动物肾功能，已经申请国家发明专利（申请号：201610181082.3），尤其是对肾小管具有很好的保护作用。本研究拟采用TGF-β1诱导人肾小管上皮细胞（HK-2）成EMT模型，以苯溴马隆作为阳性对照，观察芒果苷元对HK-2细胞EMT的影响，为芒果苷元肾保护作用的后续研究奠定基础。

    1.   材料与方法

    1.1   材料

    人肾小管上皮细胞（HK-2），购自中国科学院上海细胞库；芒果苷元，昆明制药集团股份有限公司；苯溴马隆，阿拉丁；人重组TGF-β1，Peprotech；MTT，Amresco公司；DMEM干粉培养基，Gibico；DMSO，Biofroxx；胎牛血清，Gibico；胰蛋白酶干粉，Amresco公司；Transwell小室，Corning；结晶紫，Meilunbio；兔抗Fibronectin抗体，万类生物；兔抗ColⅠ抗体，万类生物；山羊抗兔IgG/辣根酶标记，中山金桥。

    1.2   仪器

    二氧化碳培养箱为Thermo产品，型号heracell 150i；倒置显微镜为Olympus产品，型号CKX41；全波长紫外-可见光酶标仪为美国Biotek产品，型号Synergy2；高压锅为上海申安医疗器械厂产品，型号LDZX-50KBS；恒温摇床为博彩产品。型号THZ-032；超低温冰箱为美国Thermo Electron公司产品，型号Forma -86 C991。

    1.3   方法

    细胞培养：人肾小管上皮细胞（HK-2细胞）用含有10%胎牛血清的DMEM培养基，置于37 ℃、5%CO2、饱和湿度的CO2 培养箱内孵育培养，隔2 d换液。

    MTT法检测芒果苷元对HK-2细胞活力的影响：选生长状态良好的HK-2细胞，待其生长达70%～80%融合时，按5×103个/孔接种于96孔细胞培养板，37 ℃，5% CO2培养箱中孵育培养。待细胞贴壁后，加入无FBS的DMEM培养基饥饿细胞过夜，使细胞同步化于G0期。给以芒果苷元（10-9、10-8、10-7、10-6、10-5 mol/L）和苯溴马隆（10-7 mol/L）干预48 h，48 h后，每孔加20 μL MTT，继续培养4 h，弃上清，每孔加入150 μL DMSO，震荡混匀10 min，492 nm 波长下测定OD值，计算细胞活力。细胞相对活力（%） = （处理孔OD492/正常对照孔OD492）×100[6]。

    划痕实验检测细胞迁移能力：选生长状态良好的HK-2细胞，待其生长达70%～80%融合时，接种至六孔板（种板前用marker笔在六孔板背后均匀的划横线，大约每隔0.5 cm一道，使每孔至少有五条线穿过，便于后续拍照时定位），将细胞分为正常组、模型组（TGF-β1诱导组）、芒果苷元10-8、10-7、10-6 mol/L组和苯溴马隆10-7 mol/L组。37 ℃，5% CO2培养箱内孵育培养细胞，待其贴壁后，将含10% FBS的培养基换成无FBS培养基，使细胞同步化于G0期。加入各浓度芒果苷元（10-8、10-7、10-6 mol/L）和苯溴马隆（10-7 mol/L），培养箱孵育培养4 h，4 h后用200 μL枪头垂直于marker笔所划横线划痕，每孔划5条，PBS洗涤3次，重新加入系列浓度芒果苷元和苯溴马隆，同时给以10 ng/mL的TGF-β1诱导，在TGF-β1诱导后第0 h和24 h时，每孔选取六个点拍照，计算24 h迁移率。迁移率（%） = （0 h划痕宽度 - 测定时划痕宽度）/ 0 h划痕宽度× 100%[6]。

    Transwell法检测细胞侵袭能力：用无FBS培养基稀释Matrige，铺于24孔Transwell小室的上室，放入37 ℃培养箱，待Matrigel凝固后，小心吸走上室液体，细胞消化后用无FBS培养基重悬并计数，每孔5×104个细胞，接种于上室，下室加入含10% FBS的培养基，37 ℃，5% CO2培养24 h，吸弃上室培养基，用棉签轻轻擦去上室细胞，并用PBS洗涤2次，甲醇在室温固定20 min，再用PBS洗2次，结晶紫室温染色20 min，PBS洗3次，100×倒置显微镜下选4个视野拍照，计数穿过上室的细胞数。

    Western bolt免疫印迹实验：细胞培养48 h后，用PBS洗涤细胞3次，加入含有蛋白酶抑制剂、PMSF的RIPA裂解液，冰上裂解细胞，用细胞刮刀将细胞刮下并收集至EP管，离心后取上清，将收集好的蛋白样品定量，加5×loading buffer，100 ℃变性，在压缩胶（60 V，30 min），分离胶（110 V，80 min）条件下，进行 SDS-聚丙烯酰胺凝胶蛋白电泳，260 mA，90 min，冰水浴条件下转膜，5%脱脂牛奶室温封闭2 h，用5%脱脂牛奶稀释一抗至适当浓度，4 ℃ 封闭过夜，次日洗膜，加入辣根过氧化物酶标记的二抗室温孵2 h，洗膜，BIO-RAD化学发光成像仪进行成像，采用Image j分析软件对条带进行分析，求出各条带的光密度值。

    1.4   统计学处理

    用Graphpad prsim5.0软件进行统计学分析，所有实验数据用均数±标准差（ $\bar x \pm s$）表示，用单因素方差分析（one-way ANOVA），组间比较采用Dunnett法，P < 0.05为差异有统计学意义。

    2.   结果

    2.1   芒果苷元对HK-2细胞活力的影响

    图1所示，与正常组相比，芒果苷元各浓度组及苯溴马隆组对HK-2细胞活力无明显影响（P > 0.05）。

    图  1  芒果苷元对HK-2细胞活力的影响（ $\bar x \pm s$，n = 3）
    注：NOR：正常组；NL：芒果苷元；Ben：苯溴马隆。
    Figure  1.  Effect of norathyriol on HK-2 cell viability
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    2.2   芒果苷元对TGF-β1诱导的HK-2细胞表型转化的影响

    如图2所示，在倒置显微镜下（40×），正常的HK-2细胞为鹅卵石状、铺路石状、圆形或者椭圆形，细胞与细胞之间连接紧密，TGF-β1作用24 h后，模型组细胞变长，细胞之间连接松散，变为长梭形；在给以芒果苷元10-8、10-7、10-6 mol/L和苯溴马隆（10-7 mol/L）干预之后，与模型组相比，椭圆形细胞增多。

    图  2  芒果苷元对TGF-β1 诱导24 h后的HK-2细胞形态变化的影响（40×）
    注：NOR：正常组；MOD：模型组；NL：芒果苷元；Ben：苯溴马隆。
    Figure  2.  Effect of norathyriol on the morphological changes of HK-2 cells induced by TGF - β 1 for 24 h （40×）
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    2.3   芒果苷元对TGF-β1诱导的HK-2细胞迁移能力的影响

    与正常组比，TGF-β1诱导HK-2细胞24 h后，模型组迁移率显著增加，差异具有统计学意义（P < 0.05，0.01）；与模型组相比，芒果苷元10 -8，10-7，10-6 mol/L组及苯溴马隆组迁移率显著降低，差异具有统计学意义（P < 0.05，0.01），见 图3、图4。

    图  3  芒果苷元对TGF-β1诱导后HK-2细胞迁移率的影响（40×）
    Figure  3.  Effect of norathyriol on the migration of HK-2 cells induced by TGF - β 1 （40×）
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    图  4  芒果苷元对TGF-β1诱导后的HK-2细胞的迁移率的影响（ $\bar x \pm s$，n = 3）
    注：NOR：正常组；MOD：模型组；NL：芒果苷元；Ben：苯溴马隆。与模型组相比，*P < 0.05；**P < 0.01；与正常组相比，##P < 0.01。
    Figure  4.  Effect of norathyriol on the migration of HK-2 cells induced by TGF – β1 （ $\bar x \pm s$，n = 3）
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    2.4   芒果苷元对TGF-β1诱导的HK-2细胞侵袭能力的影响

    TGF-β1（10 ng/mL）诱导HK-2细胞后，与正常组比，模型组侵袭能力显著增加，差异具有统计学意义（P < 0.05）；与模型组相比，芒果苷元10 -6 mol/L组细胞侵袭能力显著下降，差异具有统计学意义（P < 0.05）；与苯溴马隆组相比，等浓度芒果苷元（10 -7 mol/L）组侵袭率无明显变化（P > 0.05），如 图5，图6。

    图  5  芒果苷元对TGF-β1诱导的HK-2细胞侵袭能力的影响（100×）
    Figure  5.  Effect of norathyriol on invasion of HK-2 cells induced by TGF - β 1（100 ×）
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    图  6  芒果苷元对TGF-β1诱导的HK-2细胞侵袭能力的影响（ $\bar x \pm s$，n = 3）
    注：NOR：正常组；MOD：模型组；NL：芒果苷元；Ben：苯溴马隆。与模型组相比，*P < 0.05；与正常组相比，##P < 0.01，one-way ANOVA。
    Figure  6.  Effect of norathyriol on invasion of HK-2 cells induced by TGF - β 1 （ $\bar x \pm s$，n = 3）
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    2.5   芒果苷元对TGF-β1诱导的HK-2细胞ColⅠ和FN蛋白表达水平的影响

    2.5.1   芒果苷元对TGF-β1诱导的HK-2细胞ColⅠ蛋白表达水平的影响

    与正常组相比，模型组细胞ColⅠ表达显著上调，差异具有统计学意义（P < 0.05）；与模型组相比，芒果苷元10 -6 mol/L组和苯溴马隆组细胞ColⅠ表达显著下调，差异具有统计学意义（P < 0.05，0.01），见 图7。

    图  7  芒果苷元对TGF-β1诱导的HK-2细胞ColⅠ蛋白表达水平的影响（ $\bar x \pm s$，n = 3）
    注：NOR：正常组；MOD：模型组；NL：芒果苷元；Ben：苯溴马隆。与正常组相比，#P < 0.05；与模型组比，*P < 0.05，**P < 0.01，one-way ANOVA。
    Figure  7.  Effect of norathyriol on expression of colⅠprotein in HK-2 cells induced by TGF-β1 （ $\bar x \pm s$，n = 3）
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    2.5.2   芒果苷元对TGF-β1诱导的HK-2细胞FN蛋白表达水平的影响

    与正常组相比，模型组细胞FN蛋白表达显著上调，差异具有统计学意义（P < 0.01）；与模型组相比，芒果苷元10 -6 mol/L组细胞FN蛋白表达显著下调，差异具有统计学意义（P < 0.05），见 图8。

    图  8  芒果苷元对TGF-β1诱导的HK-2细胞FN表达水平的影响（ $\bar x \pm s$，n = 3）
    注：NOR：正常组；MOD：模型组；NL：芒果苷元；Ben：苯溴马隆。与正常组相比，##P < 0.01；与模型组比，*P < 0.05，one-way ANOVA。
    Figure  8.  Effect of norathyriol on expression of FN protein in HK-2 cells induced by TGF-β1 （ $\bar x \pm s$，n = 3）
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    3.   讨论

    TGF-β1是公认的最强的纤维化诱导因子，在体外可诱导多种上皮细胞发生EMT。在RIF过程中，TGF-β1可刺激肾小管上皮细胞发生EMT，促进RIF的发生发展[7-8]。本实验参照文献[9-11]，给以10 ng/mL TGF-β1诱导HK-2细胞，复制肾小管上皮细胞EMT模型，在此模型上研究芒果苷元对EMT的作用及其机制。

    正常HK-2细胞呈铺路石形，细胞与细胞之间紧密连接，在发生EMT时细胞形态会发生改变，可由原来的圆形或椭圆形变成长梭形，且细胞与细胞间的间距变大，细胞形态和细胞间间距的改变可反映肾小管上皮细胞EMT的程度[12]，本实验给以TGF-β1诱导HK-2细胞24 h时后拍照，观察细胞形态的变化，发现在TGF-β1诱导后24 h时，模型组细胞发生明显的表型转化，细胞由鹅卵石形态转化为长梭形，提示HK-2细胞发生EMT；在给以芒果苷元干预后，部分HK-2细胞能维持铺路石形态，提示芒果苷元能抑制TGF-β1诱导的HK-2细胞形态的变化。

    正常肾小管上皮细胞最显著的特征是具有端-基极性且细胞与细胞间保持紧密的连接，他们紧密的排列并粘附于肾小管基底膜上形成单层结构，因此几乎没有运动能力，而成纤维细胞没有粘附到任何膜上，没有细胞极性，也不会形成单层结构，能够自由的移动。在外界诱导因素刺激下，发生EMT的肾小管上皮细胞转化为间充质成纤维细胞，获得迁移和侵袭能力，穿过肾小管基底膜，转化为能分泌大量ECM的肌成纤维细胞，参与RIF进程[12]，因此迁移和侵袭能力可间接反映细胞EMT的程度。本实验用划痕实验法检测TGF-β1诱导24 h后HK-2细胞的迁移能力，实验结果表明，在TGF-β1诱导24 h后，模型组HK-2细胞迁移率显著升高，说明肾小管上皮细胞发生转分化，符合EMT模型特征。给以芒果苷元后，HK-2细胞迁移率有不同程度的下降，提示芒果苷元能抑制TGF-β1诱导的HK-2细胞的迁移，抑制EMT的进程。Transwell法可用于检测细胞侵袭能力，将细胞接种于预先铺好Matrigel的上室，培养24 h，再将穿膜细胞进行计数来评估细胞的侵袭能力，本实验中，模型组HK-2细胞穿膜数显著增多，提示TGF-β1诱导后细胞获得侵袭能力，能够穿过Matrigel，给以芒果苷元后，HK-2细胞侵袭能力显著下降，提示芒果苷元能降低由TGF-β1诱导的细胞侵袭，抑制EMT的发展。

    RIF的主要特征即为ECM在肾间质的积聚，肾脏ECM成分主要来源于活化的间质成纤维细胞和肌成纤维细胞，肌成纤维细胞可由多种细胞转化而来，其中肾小管上皮细胞是肌成纤维细胞的重要来源之一，有研究表明肌成纤维细胞分泌ECM的能力是成纤维细胞的4～5倍，表明肾小管上皮细胞EMT在RIF发生发展过程中具有重要作用。肾脏ECM成分主要包括胶原，糖蛋白以及蛋白聚糖三类物质，在正常生理条件下，肾小管上皮细胞即可产生少量ECM成分，用于形成肾小管基底膜以及维持肾脏生理结构，FN属于糖蛋白类ECM，FN在生理状态下少量表达参与肾小管基底膜的形成，而在外界刺激发生EMT时，FN的沉积最早出现并持续增加，FN的表达水平可用来评判纤维化程度，而胶原成分中的ColⅠ常常被认为可以引发肾脏纤维化，ColⅠ的高表达与肾脏纤维化的发生密切相关[12-14]。本实验中，TGF-β1诱导HK-2细胞48 h后，模型组HK-2细胞中FN和ColⅠ蛋白表达水平显著上调，给以芒果苷元后，蛋白表达均显著下调，提示芒果苷元可降低FN、ColⅠ等ECM成分延缓EMT。

  • 表  1  2组一般资料比较（$\bar x \pm s $）

    Table  1.   Comparison of the general data between the two groups （$\bar x \pm s $）

    项目观察组
    （n = 100）    		对照组
    （n = 70）    		tP
    年龄（岁） 16.62 ± 2.85 16.31 ± 3.17 0.789 > 0.05
    初潮年龄（岁） 12.24 ± 0.98 13.08 ± 1.92 0.805 > 0.05
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    表  2  2组临床指标水平比较（$\bar x \pm s $）

    Table  2.   Comparison of clinical indexes between the two groups （$\bar x \pm s $）

    组别nCRP
    （mg/L）    		TNF-α
    （ng/L）    		IL-6
    （pg/mL）    		HOMA-IR
    观察组 100 9.02 ± 1.23 1.98 ± 0.45 30.78 ± 4.89 3.22 ± 2.28
    对照组 70 4.33 ± 0.86 0.99 ± 0.17 16.44 ± 1.01 2.13 ± 1.97
    t 25.52 17.54 24.16 3.24
    P 0.00 0.00 0.00 0.00
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    表  3  肥胖型PCOS与非肥胖型PCOS炎症因子水平比较（$\bar x \pm s $）

    Table  3.   Comparison of inflammatory factors between obese PCOS and non-obese PCOS （$\bar x \pm s $）

    组别nCRP（mg/L）TNF-α（ng/L）IL-6（pg/mL）
    肥胖型
    PCOS组    		 40 10.43 ± 1.13 1.98 ± 0.89 30.91 ± 3.45
    非肥胖型
    PCOS组    		 60 7.16 ± 0.96 1.22 ± 0.66 21.01 ± 1.07
    t 15.54 4.90 20.82
    P 0.00 0.00 0.00
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    • 参考文献(11)
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    [3] 袁嘉嵘, 梁颖, 马健, 齐超, 李楠.  早期运动指导对早产儿发育行为的影响, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20220323
    [4] 苑晓微, 秦茂华, 王丽君, 杨廷仙, 金晶.  炎症因子在青春期多囊卵巢综合征中的表达特点, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20220517
    [5] 邢正江, 李亚雄, 邹弘麟, 于振坤, 李文俊, 唐云, 贾政.  局部枸橼酸抗凝对体外循环心脏术后AKI患者NLRP-3及下游炎性因子表达的影响, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20211221
    [6] 陈怡.  雷公藤多甙联合醋酸泼尼松+硫酸羟基氯喹治疗系统性红斑狼疮, 昆明医科大学学报.
    [7] 马晨丽, 杨根梦, 闫倩文, 张枫弋, 石振金, 周一卿, 王一航, 赵永娜, 张冬先, 李利华, 洪仕君.  天麻素干预甲基苯丙胺依赖大鼠星形胶质细胞、神经元变化及炎性因子IL-6、TNF-α的表达, 昆明医科大学学报.
    [8] 李亚萍, 李永霞, 牛小群, 海冰, 曹宇, 柴燕玲.  吸烟与炎性因子在慢性阻塞性肺疾病急性加重期合并肺动脉高压中的相关性, 昆明医科大学学报.
    [9] 蒋婷婷.  脂肪因子Vaspin、Apelin及瘦素与多囊卵巢综合征的相关性, 昆明医科大学学报.
    [10] 张黎.  活性维生素D3干预高原老年人骨骼肌减少症的相关因素, 昆明医科大学学报.
    [11] 杨建治.  多模式镇痛对结肠癌根治术患者细胞因子及皮质醇水平的影响, 昆明医科大学学报.
    [12] 苏慧鹏.  老年慢性阻塞性肺疾病患者踝-臂脉搏波传导速度、踝臂指数的相关性, 昆明医科大学学报.
    [13] 贺小玉.  慢性阻塞性肺疾病患者SAA及IP-10与炎性因子水平相关性分析, 昆明医科大学学报.
    [14] 师国强.  支气管哮喘患者炎性因子水平与气道重构关系探讨, 昆明医科大学学报.
    [15] 秦敏丽.  RBP4与炎性因子水平对2型糖尿病下肢动脉病变的诊断价值, 昆明医科大学学报.
    [16] 许霞.  回收式自体输血对患者炎性因子及ICAM-1、MMP-9的影响, 昆明医科大学学报.
    [17] 秦敏丽.  不同焦虑状态对糖尿病患者炎性因子及血管内皮功能的影响, 昆明医科大学学报.
    [18] 丁艳杰.  类风湿患者血清颈动脉硬化与炎性因子相关性分析, 昆明医科大学学报.
    [19] 邹智荣.  枫叶黄酮抑制脂多糖诱导破骨前体细胞Raw264.7细胞激活的作用, 昆明医科大学学报.
    [20] 陈泉东.  高危新生儿瞬态耳声发射4 734例听力筛查临床分析, 昆明医科大学学报.
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出版历程
  • 收稿日期:  2022-01-01
  • 网络出版日期:  2022-10-09
  • 刊出日期:  2022-10-31

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摘要
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  • 1.   材料与方法

  • 1.1   材料

  • 1.2   仪器

  • 1.3   方法

  • 1.4   统计学处理

  • 2.   结果

  • 2.1   芒果苷元对HK-2细胞活力的影响

  • 2.2   芒果苷元对TGF-β1诱导的HK-2细胞表型转化的影响

  • 2.3   芒果苷元对TGF-β1诱导的HK-2细胞迁移能力的影响

  • 2.4   芒果苷元对TGF-β1诱导的HK-2细胞侵袭能力的影响

  • 2.5   芒果苷元对TGF-β1诱导的HK-2细胞ColⅠ和FN蛋白表达水平的影响

  • 3.   讨论

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