Effects of Pin1 on the Proliferation and Apoptosis of Cervical Cancer SiHa Cells by Regulating Key Enzymes of Lipid Metabolism
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摘要:
目的 探讨下调Pin1表达对宫颈癌SiHa细胞的脂质合成及增殖、凋亡的影响。 方法 Western Blot检测Pin1在Hela、SiHa和H8细胞的表达情况；慢病毒转染技术构建Pin1低表达稳转细胞株，根据不同处理分为对照组（shPin1-NON）、敲低组1（shPin1-1）和敲低组2（shPin1-2），GEPIA2分析脂质代谢关键酶（ACC1、FASN）在宫颈癌及非肿瘤组织中的表达；Western Blot和qRT-PCR检测ACC1、FASN 蛋白和mRNA的表达；Western Blot检测Caspase-8、BCL-2、C-myc 蛋白表达；CCK-8检测细胞增殖能力；克隆形成实验检测细胞集落形成能力；流式细胞术检测细胞凋亡情况。 结果 Pin1在宫颈癌细胞中高表达，且在SiHa细胞中表达最高（P < 0.05）；Pin1低表达慢病毒有效下调了Pin1表达水平；宫颈癌中ACC1、FASN mRNA表达高于非肿瘤组织；shPin1-1组和shPin1-2组ACC1、FASN 蛋白和mRNA表达均低于shPin1-NON组（P < 0.05）；shPin1-1组和shPin1-2组相较于shPin1-NON组Caspase-8蛋白表达被上调，而BCL-2、C-myc的表达均被抑制；shPin1-1组和shPin1-2组细胞增殖能力低于shPin1-NON组（P < 0.05）；shPin1-1组和shPin1-2组细胞集落形成能力小于shPin1-NON组（P < 0.05）。shPin1-1组和shPin1-2组细胞总凋亡率相较shPin1-NON组显著增加（P < 0.05）。 结论 Pin1低表达有效下调宫颈癌SiHa细胞脂质代谢关键酶，抑制细胞增殖，诱发细胞凋亡，为靶向治疗宫颈癌提供新思路。 -
关键词:
- 宫颈癌 /
- 肽基脯氨酰同分异构酶 /
- 脂肪酸合成酶
Abstract:Objective To investigate the effect of down-regulation of Pin1 expression on lipid synthesis, proliferation and apoptosis of cervical cancer SiHa cells. Methods Western Blot was used to detect the expression of Pin1 in Hela, SiHa and H8 cells; Lentiviral transfection technology constructed Pin1 low-expression stable transduction cell line, which was divided into the control group （shPin1-NON）, knockdown group1 （shPin1-1） and knockdown group2 （shPin1-2） according to different treatments; GEPIA2 was used to analyze the expression of key enzymes of lipid metabolism （ACC1, FASN） in cervical cancer and non-tumor tissues and the expression of ACC1 and FASN in cervical cancer and non-tumor tissues; Western Blot and qRT-PCR were used to detect the ACC1, FASN protein and mRNA expression; Western Blot was used to detect the Caspase-8, BCL-2, C-myc protein expression; CCK-8 was used to detect the cell proliferation; Clone formation assay was used to detect the cell colony formation ability and flow cytometry was used to detect the cell apoptosis. Results Pin1 was highly expressed in cervical cancer cells, and the highest expression was in SiHa cells; Pin1 low expression lentivirus effectively down-regulated the Pin1 expression level; ACC1 and FASN mRNA expressions in cervical cancer were higher than those in non-tumor tissues; The protein and mRNA expressions of ACC1 and FASN in shPin1-1 group and shPin1-2 group were lower than those in the shPin1-NON group; the shPin1-1 and shPin1-2 groups were up-regulated compared with the shPin1-NON group, while the expression of BCL-2 and C-myc was up-regulated. The expression was inhibited; The proliferation ability of shPin1-1 group and shPin1-2 group was lower than that of shPin1-NON group; The colony formation ability of shPin1-1 group and shPin1-2 group was lower than that of shPin1-NON group. Compared with the shPin1-NON group, the total apoptotic rate of cells in the shPin1-1 and shPin1-2 groups was significantly increased. （P < 0.05）. Conclusion Low expression of Pin1 can effectively down-regulate fatty acid synthase in cervical cancer SiHa cells, inhibit cell proliferation, and induce cell apoptosis, which provides a new idea for targeted therapy of cervical cancer. -
Key words:
- Cervical cancer /
- Peptidylprolyl isomerase /
- Fatty acid synthase
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慢性阻塞性肺疾病（chronic obstructive pulmonary disease，COPD）是一种致残率和致死率较高的慢性气道炎症性疾病。近年来通过分析各种生物标志物与相关临床参数、评分量表相关性，以期提出COPD新的病情评估指标和治疗靶点。关于肿瘤坏死因子（tumor necrosis factor，TNF）-α、可溶性肿瘤坏死因子受体（soluble tumor necrosis factor receptor，sTNFR）水平在COPD中的研究并不少见，但大都以COPD稳定期患者为研究对象，且仅单一在血清或者诱导痰中检测TNF-α、sTNFR水平，不同研究纳入的临床参数不同。本研究在急性加重的COPD（acute exacerbation of COPD，AECOPD）患者中同时检测诱导痰和血清中TNF-α、sTNFR-55、sTNFR-75水平，比较治疗前后、戒烟后上述炎症介质的水平变化，探讨炎症介质与肺功能、急性生理学及慢性健康状况评分-II（acute physiology and chronic health evaluation score-II，APACHE-II评分）的相关性，进行气道炎症与全身炎症的相关性分析，以期为AECOPD患者提出新的疗效及病情评估生物标志物提供理论依据。
1. 资料与方法
1.1 病例资料
1.1.1 研究对象
选择昆明医科大学第一附属医院于2019年1月至2020年12月住院的40例AECOPD患者入组，其中男性38例，女性2例，年龄57～87岁。纳入标准：（1）符合2018年GOLD指南C组和D组诊断标准[1]：肺功能检查示吸入支气管扩张剂后第1 s用力呼气容积比用力肺活量（forced expiratory volume in one second / forced vital capacity，FEV1/FVC） < 70%，过去1 a中重度急性加重史（≥ 2或≥ 1次导致住院）；（2）处于急性加重期[2]；（3）既往至少有20 a以上吸烟史。排除标准：（1）合并支气管哮喘、支气管扩张、肺结核等慢性呼吸系统疾病；（2）合并严重心、肝、肾疾病，2型糖尿病，过敏性疾病，恶性肿瘤；（3）需要机械通气，需全身激素治疗，合并肺炎，治疗1周病情无明显缓解；（4）不能配合肺功能检查，不能顺利完成诱导痰及痰标本不合格；（5）已戒烟，但戒烟时间不足1 a者。
1.1.2 分组
分为治疗前（Ⅰ组）：入院当天，输液治疗前；治疗后（Ⅱ组）：入院治疗第8天且临床表现有明显好转；根据目前是否戒烟（要求至少完全戒烟1 a及以上），分为戒烟组（Ⅲ组）、吸烟组（Ⅳ组）。
1.1.3 治疗和知情同意
氧疗、抗感染、平喘、抗炎、祛痰治疗。签署知情同意书。
1.2 研究方法
1.2.1 诱导痰操作及采集
入组患者治疗前后吸入沙丁胺醇400 μg，15 min后再次测定肺功能，若第1秒用力呼气容积占预计值百分比（percentage of predicted FEV1 value，FEV1%pred）≥ 60%以浓度3%高渗盐水雾化，而FEV1%pred < 60%以0.9%生理盐水雾化，参照文献[3-4]的方法进行诱导操作。用无菌镊子夹取痰栓于离心管中，称重（≥ 0.2 g），加入4倍体积0.1%二硫苏糖醇（DTT）37 ℃温浴10 min，振荡摇匀，用300目尼龙滤网过滤后，滤液于3600 r/min离心5 min，离心后上清液置于冻存管中-80 ℃冰箱中保存待测。
1.2.2 采血
空腹外周静脉血3 mL，离心（2500 r/min，10 min）后取上清液置于冻存管中-80 ℃冰箱中保存待测。
1.2.3 TNF-α、sTNFR-55、sTNFR-75的测定
诱导痰上清和血清均应用江苏酶免实业有限公司人类TNF-α/TNFR酶联免疫吸附实验（ELISA）试剂盒，采用ELISA法测定TNF-α、sTNFR-55、sTNFR-75水平，操作按照试剂盒说明书进行。
1.2.4 肺功能、动脉血气分析
入组患者在治疗前后均进行肺功能和动脉血气检测，包括FEV1、FEV1%pred、FEV1/FVC。
1.2.5 APACHE-II评分
收集入组患者年龄、合并症，结合治疗前和治疗后生命体征、血常规、血生化、动脉血气分析、尿量进行APACHE-II评分。
1.3 统计学处理
数据分析采用SPSS25.0统计软件。计量资料服从正态分布采用均数±标准差（
$\bar x \pm s $ ）表示；同组治疗前后比较采用配对t检验，不同组别比较用独立样本t检验。偏态分布用M（P25，P75）描述，2组间比较采用秩和检验。相关性分析，服从正态分布采用Pearson相关分析，不服从正态则用Spearman相关分析。P < 0.05为差异具有统计学意义。2. 结果
2.1 AECOPD受试者基线资料
入组40例AECOPD患者平均年龄（72.43±8.51）岁，吸烟指数（548.00±280.42）。GOLD Ⅱ级（50%～79%）14例、Ⅲ级（30%～49%）18例、Ⅳ级（< 30%）8例。戒烟组（Ⅲ组）25例，目前吸烟组（Ⅳ组）15例。
与Ⅰ组相比、Ⅱ组患者PaO2、APACHE-II评分、肺功能指标明显改善。Ⅳ组肺功能较Ⅲ组差（P < 0.05）；而年龄、BMI、吸烟指数、PaO2、PaCO2、APACHE-II评分在不同组别之间差异均无统计学意义（P > 0.05），见表1。
表 1 各组一般情况比较（$ \bar x \pm s $ ）Table 1. The general situation of each group is compared （$ \bar x \pm s $ ）组别 n 年龄（岁） BMI（kg/m2） 吸烟指数 FEV1（L） FEV1%pred FEV1/
FVC（%）PaO2
（mmHg）PaCO2
（mmHg）APACHE-II
评分Ⅰ组 40 72.43 ± 8.51 20.29 ± 2.04 563.00 ± 308.85 0.98 ± 0.32 42.83 ± 11.94 44.68 ± 8.69 56.75 ± 3.07 39.00 ± 2.86 34.00 ± 6.03 Ⅱ组 40 72.43 ± 8.51 20.29 ± 2.04 563.00 ± 308.85 1.00 ± 0.30 44.22 ± 11.57 46.26 ± 8.31 61.28 ± 3.16 38.85 ± 3.65 31.45 ± 6.05 t − − − 2.713 2.997 3.166 11.785 0.256 7.727 P − − − 0.010* 0.005* 0.003* < 0.001* 0.799 < 0.001* Ⅲ组 25 72.72 ± 9.12 20.11 ± 1.95 560.80 ± 320.91 1.09 ± 0.27 46.62 ± 10.62 47.35 ± 7.45 56.40 ± 3.16 39.08 ± 2.81 34.24 ± 6.69 Ⅳ组 15 71.93 ± 7.68 20.20 ± 2.76 566.67 ± 298.61 0.79 ± 0.32 36.50 ± 11.64 40.23 ± 9.02 57.33 ± 2.92 38.87 ± 3.02 33.60 ± 4.93 t 0.280 −0.121 −0.057 3.078 2.816 2.706 −0.929 0.226 0.321 P 0.781 0.904 0.955 0.004* 0.008* 0.010* 0.359 0.822 0.750 *P < 0.05。 2.2 治疗后TNF-α、sTNFR-55、sTNFR-75的变化
治疗后血清中TNF-α水平明显下降（t = 2.348，P = 0.024），sTNFR-55、sTNFR-75水平增加（P > 0.05）；治疗后诱导痰中TNF-α水平下降（t = 2.191，P = 0.035），而sTNFR-55（P < 0.05）和sTNFR-75（P > 0.05）水平均升高，见表2。
表 2 治疗后TNF-α、sTNFR-55、sTNFR-75水平的变化[（$ \bar x \pm s $ ），pg/mL]Table 2. Changes of TNF-α，sTNFR-55 and sTNFR-75 levels after treatment [（$ \bar x \pm s $ ），pg/mL]组别 血清 诱导痰 TNF-α sTNFR-55 sTNFR-75 TNF-α sTNFR-55 sTNFR-75 Ⅰ组 72.47 ± 8.57 1088.89 ± 240.54 1531.50 ± 323.48 75.86 ± 14.99 873.00 ± 183.96 1581.67 ± 351.72 Ⅱ组 71.07 ± 9.31 1097.99 ± 250.55 1540.07 ± 325.04 73.00 ± 14.95 932.00 ± 204.02 1591.17 ± 348.28 t 2.348 1.859 1.762 2.191 3.044 1.920 P 0.024* 0.071 0.086 0.035* 0.004* 0.062 *P < 0.05。 2.3 戒烟后TNF-α、sTNFR-55、sTNFR-75水平的变化
Ⅲ组诱导痰中TNF-α水平低于Ⅳ组（Z = -2.626，P = 0.008），而sTNFR-55、sTNFR-75水平高于Ⅳ组（t = 2.716，P = 0.01；Z = -2.696，P = 0.006）。血清中TNF-α、sTNFR-55、sTNFR-75水平在2组患者之间无明显差异（P > 0.05），见表3。
表 3 戒烟后诱导痰和血清中TNF-α、sTNFR-55、sTNFR-75的变化[$ \bar x \pm s $ /M（P25，P75）]Table 3. The changes of TNF-α，sTNFR-55 and sTNFR-75 in sputum and serum were induced after smoking cessation [$ \bar x \pm s $ /M（P25，P75）]分组 AECOPD Z/t P Ⅲ戒烟组（n = 25） Ⅳ目前吸烟组（n = 15） 痰上清 TNF-α（pg/mL） 77.60（59.48，80.77） 85.99（76.95，95.47） −2.626 0.008* STNFR-55（pg/mL） 929.73 ± 181.12 778.47 ± 150.71 2.716 0.010* sTNFR-75（pg/mL） 1679.56（1476.90，2000.26） 1283.44（1021.31，1675.90） −2.696 0.006* 血清 TNF-α（pg/mL） 72.32 ± 9.06 72.73 ± 8.00 −0.145 0.885 sTNFR-55（pg/mL） 1046.38 ± 243.01 1159.74 ± 226.59 −1.464 0.151 sTNFR-75（pg/mL） 1531.13 ± 296.11 1532.11 ± 375.74 −0.009 0.993 *P < 0.05。 2.4 TNF-α、sTNFR-55、sTNFR-75与肺功能、APACHE-II评分的相关性分析
诱导痰中，TNF-α水平与FEV1、FEV1%pred、FEV1/FVC呈负相关（r分别-0.827、-0.865、-0.868，P < 0.001），sTNFR-55水平与FEV1、FEV1%pred、FEV1/FVC呈正相关（rs分别0.415、0.330、0.305，P < 0.05），sTNFR-75水平与FEV1、FEV1%pred、FEV1/FVC呈正相关（rs分别0.903、0.969、0.965，P < 0.001），TNF-α水平与APACHE-II评分呈正相关（r = 0.374，P = 0.001），sTFR-55、sTNFR-75水平与APACHE-II评分呈负相关（r分别为-0.227、-0.341，P<0.05）；而血清中，TNF-α、sTNFR-55、sTNFR-75水平与肺功能指标、APACHE-II评分均不存在相关性（P > 0.05），见表4。
表 4 TNF-α、sTNFR-55、sTNFR-75水平与肺功能、APACHE-II评分的相关性分析（r/rs）Table 4. Correlation analysis of TNF-α，sTNFR-55，sTNFR-75 levels with lung function and APACHE-II score （r/rS）指标 诱导痰 血清 TNF-α sTNFR-55 sTNFR-75 TNF-α sTNFR-55 sTNFR-75 FEV1 −0.827* 0.415* 0.903* 0.166 0.086 −0.016 FEV1%pred −0.865* 0.330* 0.969* 0.149 0.092 −0.059 FEV1%FVC −0.868* 0.305* 0.965* 0.162 0.101 −0.069 APACHE-II评分 0.374* −0.227* −0.341* −0.160 −0.082 −0.083 *P < 0.05。 2.5 诱导痰和血清中TNF-α、sTNFR-55、sTNFR-75水平的相关性分析
诱导痰与血清中TNF-α、sTNFR-55、sTNFR-75水平之间均不存在相关性（P > 0.05），见表5。
表 5 诱导痰与血清中TNF-α、sTNFR-55、sTNFR-75水平相关性分析Table 5. Correlation analysis between induced sputum and serum levels of TNF-α，sTNFR-55 and sTNFR-75诱导痰与血清 AECOPD rs P TNF-α −0.160 0.156 sTNFR-55 −0.004 0.972 sTNFR-75 −0.080 0.480 3. 讨论
TNF-α是一种强大的促炎介质，在AECOPD炎症驱动中发挥重要作用[5]。sTNFR是循环和气道中的潜在抗炎介质，可阻断炎症反应，高浓度时缓解TNF-α诱导的炎症反应，低浓度时则可以作为炎症状态标志物[6]。COPD患者血清、诱导痰中均检测到TNF-α、sTNFR-55、sTNFR-75水平升高[7]。
本研究结果与Zeng[8]和Vernooy等[9]的研究相符，治疗后诱导痰和血清中促炎介质TNF-α水平下降，抗炎介质sTNFR水平上升，气道炎症与气流受限密切相关，诱导痰TNF-α水平越高，肺功能损伤程度越重。一项横断面研究[10]分析比较COPD急性加重期及稳定期、健康对照者3组受试者血清TNF-α、sTNFR水平差异，发现COPD患者中TNF-α、sTNFR水平较健康对照组均有升高，其中TNF-α表达在急性加重期组升高，在稳定期组降低；而sTNFR表达在急性加重期组下降，在稳定期组上升。表明在COPD不同时期均存在气道和全身促炎与抗炎介质动态变化，治疗后或疾病恢复后二者恢复平衡。不同的是，这项研究中血清TNF-α、sTNFR水平与肺功能指标存在相关性，可能与该研究纳入的AECOPD患者肺功能更差、病情更重有关。
本研究发现APACHE-II评分与诱导痰中TNF-α水平呈正相关，与sTNFR-55、sTNFR-75水平呈负相关，而与血清中3种炎症介质水平不存在相关性，提示气道炎症能而非全身炎症能一定程度反映AECOPD病情严重程度。
本研究结果表明诱导痰和血清中TNF-α、sTNFR-55、sTNFR-75水平之间不存在相关性，仅诱导痰中TNF-α、sTNFR-55、sTNFR-75水平与肺功能指标存在相关性，提示全身炎症的存在可能并不是由于局部炎症的溢出，气道及全身炎症反应的调控机制可能不同。Sapey等[11]研究同样指出血清和诱导痰中的TNF-α无直接关联，没有证据支持任何一种细胞因子直接从肺部溢出至血液中。然而，一种细胞因子可能通过自分泌及旁分泌局部释放，引起另一种细胞因子释放至血液循环中从而引起全身炎症，例如IL-6释放引起CRP产生[12]。近年来研究[13]指出全身炎症表型作为COPD一个新的表型，并非所有患者均存在持续系统炎症反应，长期随访过程中炎症反应并不稳定，而且不同COPD研究中炎症标志物种类均不同，各种气道和全身炎症介质的代谢途径尚未完全清楚。COPD全身炎症与气道炎症之间的联系尚不清楚，并不能通过简单“溢出”原理来解释，目前并未发现能解释两个部位炎症联系的标志物及炎症通路，可能存在特定的全身炎症表型也尚不可知，有待进一步研究。
本研究结果表明戒烟后诱导痰中TNF-α水平降低，sTNFR-55、sTNFR-75水平升高，而血清中TNF-α、sTNFR-55、sTNFR水平则不存在上述改变，与Vernooy等[9]研究结果相符，提示COPD患者戒烟后气道炎症并未减轻。Willemse等[14]一项前瞻性研究，观察28名COPD吸烟者戒烟1 a后气道炎症变化，结果发现支气管活检中气道炎症持续存在，痰液中中性粒细胞比例和IL-8水平均增加，进一步证实COPD患者戒烟后气道炎症仍在进行，可能与持续微生物刺激和自身免疫机制有关[15]。目前认为戒烟是COPD预防和治疗的重要措施，既往研究[16]表明戒烟能减缓FEV1下降，改善呼吸系统症状和气道高反应性，关于戒烟对疾病影响的潜在机制尚不可知，可能与气道炎症及气道重塑过程受到影响有关。
综上，诱导痰中TNF-α、sTNFR-55、sTNFR-75水平有望作为AECOPD疗效、病情严重程度评估的炎症标志物。COPD全身与气道炎症可能存在不同的调节机制，二者之间的联系尚不清楚，可能存在特定的全身炎症表型。戒烟后COPD患者气道炎症仍在进展。
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图 1 Pin1蛋白在宫颈癌及正常宫颈上皮的表达情况
A：Pin1的Western blotting结果;B:Pin1蛋白相对表达量。与正常宫颈上皮细胞比较，*P < 0.05。
Figure 1. The Expression of Pin1 protein in cervical cancer and normal cervical epithelium
图 2 检测Pin1慢病毒转染效率
A：转染慢病毒后Pin1蛋白的表达情况；B：Pin1蛋白相对表达量；C：转染慢病毒后Pin1的PCR结果。与shPin1-NON组比较，*P < 0.05。
Figure 2. Detection of Pin1 lentiviral transfection efficiency
图 3 shPin1对宫颈癌SiHa细胞脂质代谢关键酶的影响
A：GEPIA2 分析 ACC1、FASN 在宫颈癌中的表达；B：下调Pin1后 ACC1、FASN mRNA的表达情况；C：下调Pin1后ACC1、FASN 蛋白的表达情况；D：ACC1、FASN 蛋白相对表达量。与shPin1-NON组比较，*P < 0.05。
Figure 3. The effect of shPin1 on key enzymes in lipid metabolism in SiHa cells of cervical cancer
图 4 下调Pin1后宫颈癌SiHa细胞增殖和凋亡情况
A：下调Pin1后C-myc、BCL2、Caspase8 蛋白表达情况下；B：Pin1蛋白相对表达量；C：下调Pin1后SiHa细胞集落形成情况；D：下调Pin1后SiHa细胞增殖情况；E：下调Pin1后SiHa细胞凋亡情况。与shPin1-NON组比较，*P < 0.05。
Figure 4. Proliferation and apoptosis of SiHa cells in cervical cancer after downregulation of Pin1
表 1 qRT-PCR检测基因的引物序列
Table 1. Primer sequences of qRT-PCR detection genes
基因 引物序列（5′-3′） Pin1 正向 CTGCCTTCAGCAGAGGTCAGATC 反向 CAGTGCGGAGGATGATGTGGATG ACC1 正向 TACCTTCTTCTACTGGCGGCTGAG 反向 GCCTTCACTGTTCCTTCCACTTCC FASN 正向 GTACACAGACAAAGCCCATTTT 反向 TTTGGTTTACATCTGCACTTGG β-actin 正向 TAGTTGCGTTACACCCTTTCTTG 反向 TCACCTTCACCGTTCCAGTTT 
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[1] Fernandes A,Viveros-Carreño D,Hoegl J,et al. Human papillomavirus-independent cervical cancer[J]. Int J Gynecol Cancer,2022,32(1):1-7. doi: 10.1136/ijgc-2021-003014 [2] Bedell S L,Goldstein L S,Goldstein A R,et al. Cervical cancer screening: Past, present, and future[J]. Sex Med Rev,2020,8(1):28-37. doi: 10.1016/j.sxmr.2019.09.005 [3] Xu Y,Chen X,Pan S,et al. TM7SF2 regulates cell proliferation and apoptosis by activation of C-Raf/ERK pathway in cervical cancer[J]. Cell Death Discov,2021,7(1):299. doi: 10.1038/s41420-021-00689-5 [4] Wang S Y,Hu Q C,Wu T,et al. Abnormal lipid synthesis as a therapeutic target for cancer stem cells[J]. World J Stem Cells,2022,14(2):146-162. doi: 10.4252/wjsc.v14.i2.146 [5] Li Y,Qian X,Lin Y,et al. Lipidomic profiling reveals lipid regulation by a novel LSD1 inhibitor treatment[J]. Oncol Rep,2021,46(5):233. doi: 10.3892/or.2021.8184 [6] Sharma A,Jha A K,Mishra S,et al. Imaging and quantitative detection of lipid droplets by yellow fluorescent probes in liver sections of plasmodium infected mice and third stage human cervical cancer tissues[J]. Bioconjug Chem,2018,29(11):3606-3613. doi: 10.1021/acs.bioconjchem.8b00552 [7] Guo Y T,Lu Y,Jia Y Y,et al. Predictive value of Pin1 in cervical low-grade squamous intraepithelial lesions and inhibition of Pin1 exerts potent anticancer activity against human cervical cancer[J]. Aging Dis,2020,11(1):44-59. doi: 10.14336/AD.2019.0415 [8] Aluise C D,Rose K,Boiani M,et al. Peptidyl-prolyl cis/trans-isomerase A1 (Pin1) is a target for modification by lipid electrophiles[J]. Chem Res Toxicol,2013,26(2):270-279. doi: 10.1021/tx300449g [9] Nakatsu Y,Matsunaga Y,Yamamotoya T,et al. Prolyl isomerase Pin1 suppresses thermogenic programs in adipocytes by promoting degradation of transcriptional co-activator PRDM16[J]. Cell Rep,2019,26(12):3221-3230.e3. doi: 10.1016/j.celrep.2019.02.066 [10] Wu D,Yang Y,Hou Y,et al. Increased mitochondrial fission drives the reprogramming of fatty acid metabolism in hepatocellular carcinoma cells through suppression of Sirtuin 1[J]. Cancer Commun (Lond),2022,42(1):37-55. doi: 10.1002/cac2.12247 [11] 郝立君,徐丽秀,李金秋,等. 肽基脯氨酰同分异构酶(Pin1)对子宫颈癌细胞脂质代谢的作用[J]. 昆明医科大学学报,2021,42(1):12-16. [12] Volkova L V,Pashov A I,Omelchuk N N. Cervical Carcinoma: Oncobiology and Biomarkers[J]. Int J Mol Sci,2021,22(22):12571. doi: 10.3390/ijms222212571 [13] Rai N,Sydykov A,Kojonazarov B,et al. Targeting peptidyl-prolyl isomerase 1 in experimental pulmonary arterial hypertension[J]. Eur Respir J,2022,60(2):2101698. doi: 10.1183/13993003.01698-2021 [14] Chuang H H,Zhen Y Y,Tsai Y C,et al. Targeting Pin1 for modulation of cell motility and cancer therapy[J]. Biomedicines,2021,9(4):359. doi: 10.3390/biomedicines9040359 [15] Yu J,Hu D,Wang L,et al. Hyperglycemia induces gastric carcinoma proliferation and migration via the Pin1/BRD4 pathway[J]. Cell Death Discov,2022,8(1):224. doi: 10.1038/s41420-022-01030-4 [16] Bian X,Liu R,Meng Y,et al. Lipid metabolism and cancer[J]. J Exp Med,2021,218(1):e20201606. doi: 10.1084/jem.20201606 [17] Koundouros N,Poulogiannis G. Reprogramming of fatty acid metabolism in cancer[J]. Br J Cancer,2020,122(1):4-22. doi: 10.1038/s41416-019-0650-z 期刊类型引用(5)
1. 林秋水，王越昕，白玉树. SDH课程在日本的应用现状及在中国临床教学中的应用展望. 医学教育管理. 2025(01): 110-114 . 
百度学术2. 刘燕瑜，崔树峰，周春莲. 2019年-2021年某三甲医院两院区急诊死亡病例分析. 中国病案. 2024(01): 76-79 . 百度学术3. 汪刚，潮敏，张晔，张殷. 85例儿童卵黄囊瘤的临床特点及预后分析. 中华小儿外科杂志. 2024(05): 385-392 . 百度学术4. 吴小旭，魏隆隆，窦京彬，张国英. 健康社会决定因素对腰椎退行性变患者阿片类药物使用的影响. 颈腰痛杂志. 2024(05): 811-815 . 百度学术5. 孙丽. 2020—2022年某三级综合医院住院死亡病例分析. 中国医院统计. 2024(04): 258-262 . 百度学术其他类型引用(1)
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