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保留十二指肠的胰头切除术与胰管切开取石胰腺管空肠吻合术在胰腺头部结石中的临床疗效

苏琨 王连敏 马朝宇 刘东方 李世俊 汪襄袆 李金璠 张凌 李博 吴涛

邓勇军, 陈倩, 邹建彬, 宫政, 刘焕鹏. ZIC1基因过表达激活P53信号通路抑制胸膜间皮瘤细胞增殖[J]. 昆明医科大学学报, 2024, 45(4): 35-40. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20240405
引用本文: 苏琨, 王连敏, 马朝宇, 刘东方, 李世俊, 汪襄袆, 李金璠, 张凌, 李博, 吴涛. 保留十二指肠的胰头切除术与胰管切开取石胰腺管空肠吻合术在胰腺头部结石中的临床疗效[J]. 昆明医科大学学报, 2023, 44(3): 103-112. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20230316
Yongjun DENG, Qian CHEN, Jianbin ZOU, Zheng GONG, Huanpeng LIU. Overexpression of ZIC1 Gene Inhibits Proliferation of Pleural Mesothelioma Cells by Activating P53 Signaling Pathway[J]. Journal of Kunming Medical University, 2024, 45(4): 35-40. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20240405
Citation: Kun SU, Lianmin WANG, Chaoyu MA, Dongfang LIU, Shijun LI, Xianghui WANG, Jinfan LI, Ling ZHANG, Bo LI, Tao WU. Clinical Effect of Duodenum-Preserving Pancreaticohead Resection And Pancreaticojejunostomy for Pancreatic Head Calculi[J]. Journal of Kunming Medical University, 2023, 44(3): 103-112. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20230316

保留十二指肠的胰头切除术与胰管切开取石胰腺管空肠吻合术在胰腺头部结石中的临床疗效

doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20230316
基金项目: 云南省省级重大科技专项基金资助项目(202002AA100007)
详细信息
    作者简介:

    苏琨(1988~ ),男,云南昆明人,医学学士,主治医师,主要从事肝胆胰外科疾病的临床与基础研究工作

    通讯作者:

    吴涛,E-mail: kmwt@163.com

  • 中图分类号: R657.5+1

Clinical Effect of Duodenum-Preserving Pancreaticohead Resection And Pancreaticojejunostomy for Pancreatic Head Calculi

  • 摘要:   目的   探讨保留十二指肠的胰头切除术(duodenum-preserving pancreatic head resection,DPPHR)与胰管切开取石胰腺管空肠吻合术(Partington手术)对于胰腺头部结石手术治疗的疗效差别,评估二者手术的优缺点,并对其进行一定的优化和改进。   方法   通过回顾性分析2017年1月1日至2022年10月1日以来,昆明医科大学第二附属医院肝胆胰外科一至四病区收治的139例需行手术治疗的胰腺头部结石患者的临床、影像和病理资料;根据对患者所施行的手术方式不同,将其分为DPPHR组和Partington组,分析2组患者临床特征以及外科治疗的近期和远期疗效。   结果   术前一般资料分析差异均无统计学意义(P > 0.05);DPPHR组以Ⅰ型结石为主(80.2%),而Partington组以Ⅰ、Ⅲ型结石为主(45.3%、47.2%),差异有统计学意义( P < 0.001);近期疗效中,DPPHR组在手术时间、术中出血量、术后住院天数和术后并发症发生率方面较Partington组具优势( P <0.05);远期疗效中,DPPHR组在结石复发再手术、术后胰腺功能等方面均优于Partington组(P <0.05);Logistic多因素分析显示CP≥5 a (95%CI 1.057~3.884,P = 0.012)、术后长期有饮酒史(95%CI 0.987~3.128,P = 0.025),CP≥5a和术后长期有饮酒史均是影响胰腺头部结石术后无疼痛复发生存期的独立危险因素。   结论   胰腺头部结石患者近期疗效(手术时间、术中出血量、术后住院天数和术后并发症发生率)和远期疗效(结石复发再手术、术后胰腺功能)分析,DPPHR手术均优于Partington术,可认为DPPHR手术目前成为一种有效的治疗PDS的方法;但还需为患者制定个体化手术策略,并重视术后护理和随访,以便为患者提供最佳预后。
  • 恶性胸膜间皮瘤(malignant pleural mesothelioma,MPM)是1种相对罕见的发生于胸膜间皮细胞的侵袭性恶性肿瘤[1],虽然MPM被归类为1种相对罕见的恶性肿瘤,但它是所有间皮瘤中最常见的1种,是1种高度侵袭性和致死性癌症,MPM的预后通常较差,据报道,诊断后的中位总生存期约为1 a[2],且尚无明确治愈方法。MPM的发生与发展是由于MPM细胞增殖及侵袭的结果,而MPM 细胞的增殖与侵袭受到包括癌基因、抑癌基因和细胞因子等多因素的调节[3]。小脑锌指结构1 (zinc finger of the cerebellum gene1,ZIC1)在小脑中强烈表达,因此被命名为小脑锌指结构蛋白,实际上它是1种转录因子,该因子不仅在脊椎动物的神经嵴和小脑的发育中起着关键作用[4-5],而且在一些肿瘤的发生发展过程中也起着促癌基因或者抑癌基因的作用,在胃癌中ZIC1的低表达淋巴结转移和胃癌患者的不良预后相关,并且ZIC1能抑制胃癌的转移[6];在肝癌中ZIC1敲低促进肝癌细胞自我更新和增殖,同时减弱细胞凋亡,并伴有异种移植肿瘤的加速形成和转移[7]。另外ZIC1能促进成骨[8],并且和椎骨转移相关[9]。目前,对ZIC1基因在恶性胸膜间皮瘤中的作用的研究相对较少,那么,在恶性胸膜间皮瘤的发生、发展过程中, ZIC1基因究竟扮演着什么角色呢?为了进一步探讨这一问题,本研究通过构建慢病毒介导的ZIC1表达载体,并稳定转染至胸膜间皮瘤SMC-1细胞中,观察转染ZIC1基因对胸膜间皮瘤细胞增殖、凋亡的影响及可能的作用机制。

    1.1.1   细胞株与质粒

    人间皮瘤细胞(SMC-1细胞)购自中国科学院细胞库,含ZIC1基因的慢病毒质粒及空质粒由吉玛公司构建。

    1.1.2   主要仪器及试剂

    CO2 恒温培养箱(Termo Forma公司,美国)、Fresco-17型台式高速低温离心机(Termo Scientific公司,美国)、7900T实时荧光定量聚合酶链式反应(RT-qPCR)仪、Western bolt装置、RPMI-1640 培养基(Corning公司);胎牛血清(FBS,上海康晟生物科技有限公司);青链霉素混合液(北京华越洋生物科技有限公司),磷酸缓冲生理盐水(PBS) 、胰蛋白酶及无血清培养基(购自康为生物科技有限公司),Trizol购自Invitrogen公司、羊抗人ZIC1多克隆抗体购自Santa Cruz 公司,BCA蛋白测定试剂盒、RIPA裂解液(中)购自碧云天生物技术研究所。

    1.2.1   胸膜间皮瘤细胞培养

    将胸膜间皮瘤SMC-1细胞接种于T25培养瓶,以1640完全培养基(含10% FBS和1%双抗)置于37℃、5% CO2的培养箱中培养,每2 d换液,待细胞密度达到70%~80%时,用胰酶消化后传代,取对数生长期的细胞进行实验。

    1.2.2   慢病毒载体pLV-ZIC1-PGK-Puro

    的构建及细胞转染 慢病毒载体pLV-ZIC1-PGK-Puro 的构建参照笔者前期的实验方法[10],在转染前22 h将处于对数生长期的细胞用胰酶消化,按3×103个细胞/孔浓度接种于6孔板内,37 ℃培养至细胞密度为70%~80%时,加入含ZIC1载体的病毒悬液,构建稳定的ZIC1质粒转染细胞株,操作按试剂说明书进行,构建成功后继续在培养箱中培养48 h。

    1.2.3   实验分组

    按实验目的将细胞分为3组:(1)Zic1过表达组:用上述方法构建的pcDNA3.1-ZIC1质粒载体和pcDNA3.1转染SMC-1细胞;(2)空载体组:用pcDNA3.1空载质粒转染SMC-1细胞;(3)空白对照组:常规培养未进行转染的SMC-1细胞。

    1.2.4   细胞总蛋白提取

    细胞转染质粒48 h后,六孔板内加入蛋白酶抑制剂和细胞裂解液,提取细胞总蛋白,采用BCA测蛋白浓度试剂盒,按照说明书操作方法测定蛋白浓度,分装后置于-20 ℃冰箱备用,同时提取阴性对照组和空白对照组的细胞总蛋白。

    1.2.5   Western blot检测各组蛋白表达水平

    配制分离胶及浓缩胶,并以所提取的各组蛋白作为样品,放置于80 V电泳120 min,用20V电压半干转至PVDF膜20 min,快速封闭液封闭20 min,TBST漂洗5 min×4次,随后将兔抗人ZIC1单克隆抗体(1∶2000)及鼠抗人β-actin单克隆抗体(1∶8000)用含PBST封闭液稀释后分别加入孵育体系,4 ℃孵育过夜,TBST漂洗5 min×4次后,加入二抗孵育2 h,TBST漂洗5 min×4次,采用化学发光底物进行曝光。

    1.2.6   CCK-8细胞增殖试验

    采用CCK-8(cell counting kit-8)细胞增殖试验试剂盒对SMC-1细胞增殖能力进行检测,将3组肿瘤细胞以4×103/孔的密度,均匀种于96 孔板中,采用CCK-8试剂盒检测3组SMC-1细胞72 h内的增殖能力,每孔加入10 μL预先混匀的CCK-8试剂以及100 μL新鲜PRIM-1640培养液,37 ℃环境下将其孵化2 h,在酶联免疫检测仪上于450 nm波长处测量吸光度值(OD值)。检测时间为接种细胞后以细胞贴壁时为0 h,贴壁后8 h、12 h、24 h、36 h、48 h和72 h,定时检测各孔OD 值,设置3个平行组,每次实验重复3次。

    1.2.7   Hoechst-PI双染色法检测细胞凋亡

    按照细胞密度为2.5×105个/孔分别将3组细胞接种于6孔板中培养72 h,中间24 h时更换1次新鲜培养基,弃原有培养液,每孔加入1 mL PBS洗涤,随后加入5 μL Hoechst染色液和5 μL PI染色液,混匀,室温下避光孵育20 min。用PBS洗去多余染色液,并在各孔内加100 μL PBS洗涤,用荧光显微镜观察细胞染色情况。结果判断:经Hoechst染色后可见细胞亮蓝色亮点为细胞早期凋亡的表现,而PI染色的细胞可见呈红色亮点,为细胞晚期凋亡现象,将二者结合起来,可以很好地鉴定凋亡细胞。

    采用SPSS22.0软件与GraphPad Prism5.0软件进行统计分析,计量资料用均数±标准差($ \bar x \pm s $)表示,采用t检验、单因素方差分析或重复测量的方差分析,以P < 0.05为差异有统计学意义。

    Western blot检测结果显示,3组细胞中ZIC1的相对蛋白表达量分别为:ZIC1蛋白过表达组(0.785±0.021)、空载体组(0.373±0.019)、空白组(0.358±0.022),见表1。统计学分析表明,ZIC1过表达组的蛋白表达量明显高于空白组及空载体组的蛋白含量,差异均有统计学意义(P < 0.05);而空白组与空载体组相比较,两者无明显差异(F = 2.356,P = 0.886)。表明ZIC1基因已经成功转染至胸膜间皮瘤SMC-1细胞中,并且将会在一定的时间内持续高表达,而在阴性对照组及空白对照组中则不表达或者低表达,见图1

    表  1  ZIC1在各组细胞中的蛋白表达
    Table  1.  The ZIC1 protein expression in tumor cells of each group
    组别ZIC1过表达组空载体组空白组FP
    相对表达量0.785±0.0210.373±0.0190.358±0.0224.6650.036*
      *P < 0.05。
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    图  1  ZIC1在各组细胞中的蛋白表达情况
    Mean±SD,n = 3,*P < 0.05。
    Figure  1.  The ZIC1 protein expression in tumor cells of each group

    CCK-8细胞增殖试验所测得的各组OD值,见表2。以测定时间为横坐标,OD值为纵坐标,绘制肿瘤细胞生长曲线图,见图2。统计学分析表明,在48 h之前,3组细胞的 OD值两两比较差异无统计学意义(P > 0.05)。而在 48 h之后,ZIC1过表达组的细胞增殖活性明显低于空白组及空载体组,差异有统计学意义(P < 0.05)。而空载体组与空白组的细胞增殖能力比较,两者差异无统计学意义(P > 0.05)。可见ZIC1过表达组的间皮瘤细胞的增殖活性明显受到抑制,提示恶性胸膜间皮瘤细胞中ZIC1基因的过表达能够抑制肿瘤细胞的增殖。

    表  2  各实验组在不同时间点的 OD值
    Table  2.  The optical density value of each group cell at different time points
    分组8 h12 h24 h36 h48 h72 h
    ZIC1过表达组0.677±0.0160.788±0.0180.913±0.0210.988±0.0171.023±0.0221.165±0.020
    空载体组0.798±0.0220.878±0.0241.233±0.0231.355±0.0162.238±0.0233.266±0.018
    空白组0.836±0.0230.955±0.0271.311±0.0261.402±0.0222.548±0.0283.476±0.023
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    图  2  3组肿瘤细胞的增殖能力比较
    Mean±SD,n = 3,*P < 0.05。
    Figure  2.  The ability of cell proliferation of three groups

    过表达ZIC1蛋白组的肿瘤细胞凋亡明显增加,见图3。在双变量流式细胞仪的散点图上,这3群细胞表现分别为:正常细胞为低蓝色/低红色(Hoechst 33342+/PI+),凋亡细胞为高蓝色/低红色(Hoechst 33342++/PI+),坏死细胞为低蓝色/高红色(Hoechst 33342+/PI++)。

    图  3  3组胸膜间皮瘤细胞凋亡情况(×200)
    采用HO-PI染色进行检测,红色荧光细胞为晚期凋亡或死亡细胞,蓝色荧光较亮的细胞为早期凋亡细胞,其他蓝色荧光强度较弱的细胞显示为活细胞和自然细胞。
    Figure  3.  Apoptosis of pleural mesothelioma cells in the 3 groups (×200)

    为了进一步探索ZIC1过表达对间皮瘤细胞抑制作用的分子机制,采用Western blot技术检测了细胞内P53介导的凋亡信号通路中一些关键蛋白的表达情况,包括P53蛋白、P53磷酸化位点Ser392、负反馈调节因子MDM2以及细胞周期蛋白依赖性激酶抑制剂P21,结果发现P53蛋白表达水平明显上升(P < 0.05),P53磷酸化位点Ser392的表达水平也明显上升(P < 0.05),其下游基因P21及MDM2的表达水平也明显升高(P < 0.05),见图4。这表明ZIC1 蛋白过表达能够通过激活P53介导的凋亡通路来促进细胞的凋亡,从而抑制胸膜间皮瘤细胞的生长。

    图  4  MDM2、P21、P53及P53(Ser392)在各组细胞中的蛋白表达情况
    Mean±SD,n = 3,*P < 0.05;**P < 0.01;*** P < 0.001。
    Figure  4.  The proteins expression of MDM2、P21、P53 and P53(Ser392) in each group of cells

    尽管目前针对信号传导通路的靶向治疗以及免疫治疗在一些恶性肿瘤如肺癌的治疗中获得了巨大的成功,这些传导途径包括细胞周期调节、细胞凋亡、生长因子途径和血管生成[11]。但不幸的是,针对这些分子过程的临床试验显示,这些治疗手段借鉴到恶性胸膜间皮瘤上,对MPM的疗效非常有限,甚至完全无效[12]。因此,需要对MPM的驱动基因、信号传导通路进一步研究。

    ZIC1基因是1种锌指转录因子,以前的研究发现该基因在脑神经系统的生长发育、肌肉细胞的产生以及骨骼发育中发挥着重要作用,最近的研究发现该基因在一些肿瘤中被公认为是1种抑癌基因,例如ZIC1在宫颈癌、胃癌、脂肪肉瘤中处于过度表达状态,提示ZIC1在该类肿瘤中发挥着抑癌基因的作用它可以通过激活或者抑制一些信号传到通路来抑制肿瘤细胞生长[13]。此外,ZIC1的高表达已成为一些肿瘤预后良好的潜在生物标记物[14]。本研究探讨了ZIC1基因过表达对胸膜间皮瘤SMC-1细胞增殖、凋亡的影响以及相应的机制,结果表明其在胸膜间皮瘤中起着抑癌基因的作用,其可能的作用机制为ZIC1基因过表达激活P53介导的细胞凋亡信号通路来实现。

    由于ZIC1基因在多个间皮瘤细胞株中处于沉默表达或者表达下降状态,因此在本研究中,笔者选择采用SMC-1细胞株转染真核表达质粒,结果发现胸膜间皮瘤SMC-1细胞在经过ZIC1过表达质粒成功转染之后,其增殖活力明显下降,而细胞的凋亡明显增加,提示ZIC1蛋白的过表达可以明显抑制胸膜间皮瘤细胞的增殖,并促进肿瘤细胞凋亡,这表明ZIC1基因在胸膜间皮瘤中和在大多数恶性肿瘤中一样,起着抑癌基因的作用。

    细胞凋亡是在内在的信号通路调控下发生的1种精确的程序性细胞死亡,已知由P53基因介导的信号传导通路是目前最常见的细胞凋亡调控通路,此外P53介导的肿瘤细胞凋亡对抑制肿瘤细胞的生长也具有重要作用[15]。因此,为了探讨ZIC1蛋白过表达对胸膜间皮瘤细胞增殖的抑制作用及促进其凋亡的作用机制,笔者检测了P53基因介导的肿瘤细胞凋亡信号通路中一些关键蛋白的表达情况,结果发现当过表达质粒ZIC1片段成功转染进入到SMC-1细胞后,P53基因表达上调,其下游的凋亡基因如MDM2和P21的表达也会发生上调,从而促进SMC-1细胞凋亡。由此推断其作用机制为在SMC-1细胞中过表达的ZIC1蛋白通过激活P53信号通路来促进恶性胸膜间皮瘤细胞的凋亡并抑制肿瘤细胞增殖。事实上,在其类似的研究中也发现,在细胞凋亡反应中,P53基因可以通过调控激活多个下游靶基因如MDM2和PUMA等的活性来共同发挥作用[14],被激活的P53基因也可以通过调节P21基因的活性来诱导细胞周期阻滞来促进细胞凋亡[16]

    P53基因的修饰方式(即活化方式)主要有磷酸化及乙酰化2种方式,在本研究中,笔者进一步探讨了P53基因的活化机制,发现P53基因的主要磷酸化位点Ser392的表达明显上调,这表明在本实验中P53基因的磷酸化修饰对该基因的激活发挥了重要的作用。到目前为止,已经发现关于P53磷酸化的位点有30个,磷酸化的位点不同,其所起的作用也不同,例如位点Ser6和Ser9的磷酸化可以通过TGF-β通路促进肿瘤发生和癌细胞的转移[17],而位点Ser15和Ser20的磷酸化修饰可以影响细胞的周期阻滞和DNA损伤修复[18-19]。而在本研究中笔者发现,当ZIC1过表达质粒转入SMC-1细胞后,P53基因磷酸化的位点为Ser392,其蛋白水平和活性发生改变,P53的稳定性及与反应原件的结合能力发生改变,从而启动细胞周期阻滞、凋亡、衰老和分化等细胞学效应。

    综上所述,本研究证实了在胸膜间皮瘤细胞中,ZIC1蛋白过表达可以抑制肿瘤细胞的增殖并促进肿瘤细胞凋亡,其可能的作用机制为通过上调磷酸化位点Ser392的表达来激活P53基因介导的信号通路来实现的,表明ZIC1蛋白在胸膜间皮瘤的发生和发展中起到抑癌基因的作用。

  • 图  1  开腹保留十二指肠切除术关键术野

    Figure  1.  The key field of DPPHR

    图  2  胰管切开取石胰腺管空肠吻合术关键术野

    Figure  2.  The key operative field of partington operation

    表  1  临床特征比较[n(%)/ $ \bar x \pm s $ ]

    Table  1.   Comparison of clinical characteristics [n(%)/ $ \bar x \pm s $ ]

    临床特征 DPPHR组(n = 86) Partington组(n = 53) t/χ2 P
    CP病程(月) 0.018 0.999
     < 6 28(32.6) 17(32.1)
     6~24 16(18.6) 10(18.9)
     25~60 20(23.3) 12(22.6)
     > 60 22(25.5) 14(26.4)
    CP分期 1.174 0.759
     早期 2(2.3) 2(3.8)
     进展期 26(30.2) 18(34.0)
     并发症期 28(32.6) 13(24.5)
     终末期 30(34.9) 20(37.7)
    肿瘤标记物增高a 27(31.4) 9(17.0) 3.550 0.060
    胰腺内分泌功能不全 29(33.7) 17(32.1) 0.040 0.841
    胰腺外分泌功能不全 15(17.4) 8(15.1) 0.131 0.718
      注:a指肿瘤标记物检查中任意CA19-9、CA12-5或CEA升高1项。
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    表  2  影像学特征比较[n(%)]

    Table  2.   Comparison of imaging features [n(%)]

    临床特征 DPPHR组(n = 86) Partington组(n = 53) t/χ2 P
    结石分型 24.810 < 0.001 *
     Ⅰ型 69(80.2) 24(45.3)
     Ⅱ型 4(4.7) 1(1.9)
     Ⅲ型 9(10.5) 25(47.2)
     Ⅳ型 4(4.7) 3(5.7)
    结石大小(mm) 2.404 0.301
     ≥13 17(19.8) 16(30.2)
     7~13 44(51.2) 26(49.1)
     < 7 25(29.1) 11(20.8)
    胰腺明显萎缩 25(29.1) 27(50.9) 6.701 0.010*
    胰头肿大 33(38.4) 6(11.3) 11.888 0.001*
    胆总管扩张或受压迫 44(51.2) 14(26.4) 8.259 0.004*
    合并其他并发症a 29(33.7) 9(17.0) 4.626 0.031*
      注:a表示包括胰腺真/假性囊肿、压迫门静脉或脾静脉、压迫导致门脉高压症等;*P < 0.05。
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    表  3  术中指标比较[n(%)/ $ \bar x \pm s $ ]

    Table  3.   Comparison of intraoperative indicators [n(%)/ $ \bar x \pm s $ ]

    项目 DPPHR组(n = 86) Partington组(n = 53) t/χ2 P
    术中出血(mL) 234.50 ± 85.47 270.50 ± 105.11 −0.460 0.669
    手术时间(min) 385.47 ± 92.60 311.00 ± 62.34 2.601 0.014*
    术中输血 5(5.8) 3(5.7) 0.001 0.970
       *P < 0.05。
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    表  4  费用及住院时间比较( $ \bar x \pm s $

    Table  4.   Comparison of cost and length of hospital stay ( $ \bar x \pm s $

    项目 DPPHR组(n = 86) Partington组(n = 53) t P
    术后住院天数(d) 8.98 ± 0.24 14.28 ± 2.42 −3.771 0.020*
    住院总费用(万元) 4.25 ± 1.12 5.95 ± 1.67 2.856 0.046*
    术后阵痛时间(d) 0.78 ± 0.65 2.64 ± 0.66 −3.503 0.025*
       *P < 0.05。
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    表  5  术后并发症比较[n(%)]

    Table  5.   Comparison of postoperative complications [n(%)]

    项目 DPPHR组(n = 86) Partington组(n = 53) χ2 P
    残留结石发生率 21(24.4) 34(64.2) 21.649 < 0.001 *
    术后并发症发生率
     腹腔感染 2(2.3) 6(11.3) 4.892 0.027*
     胰漏 6(7.0) 3(5.7) 0.094 0.759
     胆漏 1(1.2) 5(9.4) 5.432 0.020*
     呕吐 12(14.0) 10(19.2) 0.673 0.412
     术后发热 6(7.0) 7(13.2) 1.502 0.220
     胸腔积液 0(0.0) 3(5.7) 4.975 0.026*
     肺部感染 0(0.0) 3(5.7) 4.975 0.026*
     术后出血 1(1.2) 6(11.3) 7.075 0.008*
     胃排空障碍 13(15.1) 29(54.7) 24.388 < 0.001 *
     术后胰腺功能障碍 1(1.2) 12(22.6) 17.844 < 0.001 *
    Clavien-Dindo分级
     Ⅰ 24(100.0) 15(57.7)
     Ⅱ 0(0.0) 9(34.6) 13.018 0.001*
     Ⅲa/b 0(0.0) 2(7.7)
    并发症再手术 0(0.0) 2(3.8) 3.940 0.048*
    并发症相关死亡 0(0.0) 0(0)
    术后疼痛缓解率 84(97.7) 46(86.8) 6.412 0.011*
       *P < 0.05;-表示无数据。
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    表  6  远期疗效分析比较[n(%)/ $ \bar x \pm s $ ]

    Table  6.   Comparison of long-term efficacy analysis [n(%)/ $ \bar x \pm s $ ]

    随访指标 DPPHR组(n = 86) Partington组(n = 53) t/χ2 P
    新发结石 3(3.5) 11(20.8) 10.793 0.001*
    体重变化(kg) 2.51 ± 1.19 2.88 ± 2.08 −0.267 0.802
    胰腺内分泌功能障碍 1(1.1) 10(18.9) 14.282 < 0.001 *
    胰腺外分泌功能障碍 5(5.8) 19(35.8) 20.708 < 0.001 *
    术后脂肪肝 8(9.3) 16(30.2) 10.014 0.002*
    总远期并发症 2(2.3) 15(28.3) 26.475 < 0.001 *
    再次入院治疗 2(2.3) 5(9.4) 3.465 0.063
    再次手术治疗 2(2.3) 3(11.3) 1.052 0.305
       *P < 0.05。
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    表  7  远期并发症比较[n(%)]

    Table  7.   Comparison of long-term complications [n(%)]

    并发症 DPPHR组(n = 86) Partington组(n = 53) χ2 P
    胰肠吻合口溃疡 0(0) 3(5.7) 4.975 0.026*
    胰肠吻合口出血 0(0) 4(7.5) 6.683 0.010*
    胰肠吻合口漏 2(2.3) 3(5.7) 4.975 0.026*
    胃溃疡 0(0) 3(5.7) 4.975 0.026*
    消化道出血 0(0) 2(3.8) 3.293 0.070
       *P < 0.05。
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    表  8  影响患者胰头结石术后无疼痛复发的单因素比较

    Table  8.   Comparison of single factors affecting the postoperative pain recurrence of patients with pancreatic head stones

    临床因素 n 生存时间[月,均数(范围)] χ2 P
    性别 0.082 0.751
     男 111 20.74(15.69~24.83)
     女 35 18.51(12.31~23.58)
    年龄(岁) 0.388 0.857
     < 35 34 19.57(15.39~27.58)
     35~50 76 21.03(16.53~29.74)
     > 50 29 13.76(8.59~25.81)
    BMI(kg/m2 0.517 0.682
     < 18.5 24 20.91(11.86~32.53)
     18.5~24.0 99 19.94(13.62~30.28)
     > 24.0 16 16.69(11.28~29.70)
    CP病程(a) 11.375 0.002*
     < 5 103 21.62(16.84~27.33)
     ≥5 36 16.58(12.89~21.05)
    CP分期 2.519 0.473
     早期 4 7.55(5.29~12.53)
     进展期 44 21.01(11.06~25.92)
     并发症期 41 19.26(13.75~29.67)
     终末期 50 20.52(12.66~31.86)
    手术方式 0.316 0.935
     DPPHR 86 20.28(14.59~27.81)
     Partington 53 20.13(13.24~26.46)
    术后长期吸烟 1.057 0.129
     是 44 19.28(13.59~25.70)
     否 95 22.15(16.28~30.11)
    术后长期饮酒 9.446 0.003*
     是 25 16.48(10.90~20.54)
     否 114 21.25(16.83~27.95)
       *P < 0.05。
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  • [1] Talukdar R,Unnisa M. Optimizing nutrition in chronic pancreatitis[J]. Curr Opin Gastroenterol,2022,38(5):495-500. doi: 10.1097/MOG.0000000000000866
    [2] Bundred J,Thakkar R G,Pandanaboyana S. Systematic review of sarcopenia in chronic pancreatitis: prevalence,impact on surgical outcomes,and survival[J]. Expert Rev Gastroenterol Hepatol,2022,16(7):665-672. doi: 10.1080/17474124.2022.2091544
    [3] Okazaki K,Kawa S,Kamisawa T,et al. Amendment of the Japanese consensus guidelines for autoimmune pancreatitis,2020[J]. J Gastroenterol,2022,57(4):225-245. doi: 10.1007/s00535-022-01857-9
    [4] Khan M N,Raza S S,Hussain A K,et al. Pancreatic duct stones[J]. J Ayub Med Coll Abbottabad,2017,29(1):154-156.
    [5] Büchler M W,Friess H,Bittner R,et al. Duodenum-preserving pancreatic head resection: Long-term results[J]. J Gastrointest Surg,1997,1(1):13-19. doi: 10.1007/s11605-006-0004-z
    [6] Beger H G,Mayer B,Poch B. Duodenum-preserving pancreatic head resection: A local parenchyma-sparing treatment of benign and premalignant tumors of the pancreatic head[J]. Chirurg,2019,90(9):736-743. doi: 10.1007/s00104-019-0942-0
    [7] Beger H G,Mayer B. Duodenum-preserving pancreatic head resection in chronic pancreatitis: Limitations of the Heidelberg multicenter ChroPac study[J]. Chirurg,2018,89(5):392-396. doi: 10.1007/s00104-018-0615-4
    [8] Boni L,Huo B,Alberici L,et al. EAES rapid guideline: updated systematic review,network meta-analysis,CINeMA and GRADE assessment,and evidence-informed European recommendations on the management of common bile duct stones[J]. Surg Endosc,2022,36(11):7863-7876. doi: 10.1007/s00464-022-09662-4
    [9] 沈磊,杨自轩,丁睿博,等. 胰管结石诊治进展[J]. 中华肝胆外科杂志,2022,28(4):317-320. doi: 10.3760/cma.j.cn113884-20211108-00360
    [10] Jeon C Y,Chen Q,Yu W,et al. Identification of individuals at increased risk for pancreatic cancer in a community-based cohort of patients with suspected chronic pancreatitis[J]. Clin Transl Gastroenterol,2020,11(4):e00147. doi: 10.14309/ctg.0000000000000147
    [11] Beyna T,Neuhaus H,Gerges C. Endoscopic treatment of pancreatic duct stones under direct vision: Revolution or resignation? Systematic review[J]. Dig Endosc,2018,30(1):29-37. doi: 10.1111/den.12909
    [12] Adler J M,Gardner T B. Endoscopic therapies for chronic pancreatitis[J]. Dig Dis Sci,2017,62(7):1729-1737. doi: 10.1007/s10620-017-4502-5
    [13] Farkas G,Leindler L,Daróczi M,et al. Prospective randomised comparison of organ-preserving pancreatic head resection with pylorus-preserving pancreaticoduodenectomy[J]. Langenbecks Arch Surg,2006,391(4):338-342. doi: 10.1007/s00423-006-0051-7
    [14] Busquets J,Martín S,Secanella L,et al. Delayed gastric emptying after classical Whipple or pylorus-preserving pancreatoduodenectomy: a randomized clinical trial[J]. Langenbecks Arch Surg,2022,407(6):2247-2258. doi: 10.1007/s00423-022-02583-9
    [15] Keck T,Adam U,Makowiec F,et al. Short- and long-term results of duodenum preservation versus resection for the management of chronic pancreatitis: a prospective,randomized study[J]. Surgery,2012,152(3):S95-S102. doi: 10.1016/j.surg.2012.05.016
    [16] Boregowda U,Echavarria J,Umapathy C,et al. Endoscopy versus early surgery for the management of chronic pancreatitis: a systematic review and meta-analysis[J]. Surg Endosc,2022,36(12):8753-8763. doi: 10.1007/s00464-022-09425-1
    [17] Guzmán-Calderón E,Martinez-Moreno B,Casellas J A,et al. Per-oral pancreatoscopy-guided lithotripsy for the endoscopic management of pancreatolithiasis: A systematic review and meta-analysis[J]. J Dig Dis,2021,22(10):572-581. doi: 10.1111/1751-2980.13041
    [18] Zhao X,Cui N,Wang X,et al. Surgical strategies in the treatment of chronic pancreatitis: An updated systematic review and meta-analysis of randomized controlled trials[J]. Medicine (Baltimore),2017,96(9):e6220.
    [19] McCarty T R,Sobani Z,Rustagi T. Per-oral pancreatoscopy with intraductal lithotripsy for difficult pancreatic duct stones: a systematic review and meta-analysis[J]. Endosc Int Open,2020,8(10):E1460-E1470. doi: 10.1055/a-1236-3187
    [20] Gerges C,Pullmann D,Schneider M,et al. Pancreatoscopy in endoscopic treatment of pancreatic duct stones: a systematic review[J]. Minerva Chir,2019,74(4):334-347.
    [21] Malka D,Hammel P,Sauvanet A,et al. Risk factors for diabetes mellitus in chronic pancreatitis[J]. Gastroenterology,2000,119(5):1324-1332. doi: 10.1053/gast.2000.19286
    [22] Ueda J,Miyasaka Y,Ohtsuka T,et al. Short- and long-term results of the Frey procedure for chronic pancreatitis[J]. J Hepatobiliary Pancreat Sci,2015,22(3):211-216. doi: 10.1002/jhbp.176
  • [1] 李留峥, 谌蔚雯, 王雪, 徐雷升, 俸家伟, 王峻峰.  改良Beger手术的临床应用, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20210231
    [2] 倪璠, 叶正成, 郭志唐, 李颖楠, 翟广, 钟超, 李珂佳, 陈晓星, 魏东, 吴雪松, 邹仁超, 戈佳云.  急诊胰十二指肠切除术在闭合性十二指肠胰头外伤中的应用, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20201108
    [3] 李思伟, 王素彬, 周江帆, 张明谦, 顾松涛, 杨明东, 杨睿, 易敬帅, 张志华.  青蒿琥酯对重型急性胰腺炎大鼠胰腺细胞凋亡的保护作用, 昆明医科大学学报.
    [4] 潘瑞, 石红, 杨晓娟.  早期鼻空肠营养支持对重症胰腺炎血感染标志物变化的影响, 昆明医科大学学报.
    [5] 李丽萍, 王关顺, 马坚, 陈迪, 丁莹莹.  表观扩散系数在急性间质水肿性胰腺炎与急性坏死性胰腺炎中的价值, 昆明医科大学学报.
    [6] 刘宝志, 张升宁, 刘剑, 李望, 刘静, 李来邦.  胰十二指肠切除术后发生胰瘘的相关危险因素, 昆明医科大学学报.
    [7] 郭致平, 窦杰, 吴雪松, 王琳, 张帆.  抗凝药物治疗重症急性胰腺炎的临床效果观察, 昆明医科大学学报.
    [8] 普小开, 陆启瑜.  奥曲肽在急性胰腺炎中的疗效及对胰腺血流的影响, 昆明医科大学学报.
    [9] 顾永芳.  姑息性手术与胰十二指肠切除术治疗胰头癌合并壶腹周围癌的远期疗效, 昆明医科大学学报.
    [10] 李晓涛.  后腹腔镜输尿管切开取石治疗输尿管上段嵌顿性结石72例, 昆明医科大学学报.
    [11] 王维.  保留十二指肠升段与间置空肠Y形攀内引流在胰十二指肠切除术中的应用, 昆明医科大学学报.
    [12] 刘志恒.  三七总皂甙对大鼠急性胰腺炎腺泡细胞钙超载的调节, 昆明医科大学学报.
    [13] 李晓凯.  腹腔镜保留脾脏的胰体尾切除术8例手术体会, 昆明医科大学学报.
    [14] 张磊.  改良式胰管内引流联合营养管在胰十二指肠切除术中的应用, 昆明医科大学学报.
    [15] 封永顺.  重症急性胰腺炎的连续性血液净化治疗, 昆明医科大学学报.
    [16] 张新俊.  保留脾脏和脾动静脉的精准胰体尾部切除术, 昆明医科大学学报.
    [17] 腹腔镜下胰十二指肠切除术1例报道, 昆明医科大学学报.
    [18] 胰十二指肠切除术48例临床分析, 昆明医科大学学报.
    [19] 程思根.  凝血4项检测在评价急性胰腺炎预后中的临床意义, 昆明医科大学学报.
    [20] 刁畅.  不阻断体循环及门脉系统大鼠胰十二指肠移植模型的建立, 昆明医科大学学报.
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  • 收稿日期:  2022-10-31
  • 刊出日期:  2023-03-25

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