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硼替佐米、来那度胺结合地塞米松治疗多发性骨髓瘤的有效率及安全性

李建梅 晋艳玲

王禹雪, 张华莉, 陈理军, 陆永萍. 一种经济的乳兔骨髓来源的肥大细胞诱导培养及鉴定[J]. 昆明医科大学学报, 2023, 44(6): 1-5. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20230622
引用本文: 李建梅, 晋艳玲. 硼替佐米、来那度胺结合地塞米松治疗多发性骨髓瘤的有效率及安全性[J]. 昆明医科大学学报, 2023, 44(6): 120-125. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20230610
Yuxue WANG, Huali ZHANG, Lijun CHEN, Yongping LU. An Economical Method for Cultivation and Identification of Mast Cell Derived from Suckling Rabbit Bone Marrow[J]. Journal of Kunming Medical University, 2023, 44(6): 1-5. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20230622
Citation: Jianmei LI, Yanling JIN. Efficacy and Safety of Bortezomib,Lenalidomide Combined with Dexamethasone in the Treatment of Multiple Myeloma[J]. Journal of Kunming Medical University, 2023, 44(6): 120-125. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20230610

硼替佐米、来那度胺结合地塞米松治疗多发性骨髓瘤的有效率及安全性

doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20230610
基金项目: 曲靖市第一人民医院院内科研项目(2022YJKTY17)
详细信息
    作者简介:

    李建梅 (1979~),女,云南曲靖人,本科,副主任医师,主要从事急慢性白血病、血小板减少症及多发性骨髓瘤等血液病的诊治工作

    通讯作者:

    晋艳玲,E-mail:1303712056@qq.com

  • 中图分类号: R733.3

Efficacy and Safety of Bortezomib,Lenalidomide Combined with Dexamethasone in the Treatment of Multiple Myeloma

  • 摘要:   目的  探讨硼替佐米、来那度胺联合地塞米松在多发性骨髓瘤(multiple myeloma,MM)患者中的有效率及治疗安全性。  方法  选择2021年9月至2022年9月曲靖市第一人民医院血液科94例多发性骨髓瘤患者为对象,采用随机数字表法分为2组。对照组(n = 47)采用硼替佐米联合地塞米松治疗,观察组(n = 47)联合来那度胺治疗,1个疗程为3周,共治疗6个疗程,记录2组有效率、血液生化指标、免疫水平、疾病负荷情况及不良反应。  结果  疗程结束后,观察组有效率高于对照组,差异有统计学意义(P < 0.05);2组疗程结束后,观察组骨髓浆细胞、血M蛋白量血液生化指标低于对照组,差异有统计学意义(P < 0.05),BAP、OPG及LDH高于对照组,差异有统计学意义(P < 0.05);观察组疗程后 CD3+、CD4+、CD4+/CD8+高于对照组,CD8+低于对照组,差异有统计学意义(P < 0.05);2组疗程结束后骨髓浆细胞百分比、M蛋白水平、自由轻链水平得到降低;观察组骨髓浆细胞百分比、M蛋白水平、自由轻链水平均低于对照组,差异有统计学意义(P < 0.05);2组用药过程中骨髓抑制、指尖麻木、脱发、肾损伤及胃肠道反应发生率,差异无统计学意义(P > 0.05)。  结论  硼替佐米、来那度胺结合地塞米松连续治疗6个疗程,用于多发性骨髓瘤患者中能可提高治疗的有效率,且改善其血液生化指标,提高CD3+、CD4+、CD4+/CD8+水平,且药物安全系数明显提升,值得推广应用。
  • 九十年代初期的研究表明,在动脉粥样硬化(atherosclerosis,AS)形成过程中,动脉内膜和外膜层聚集着肥大细胞(mast cells,MCs),首次提出MCs参与AS进程[1]

    血管的微环境一旦发生变化,炎性细胞便会从血管外膜的滋养血管中渗出,参与疾病的变化[2-3]。MCs激活时释放出来的趋化因子、细胞因子、组胺、白三烯等炎症因子[4]使血管的通透性增加,导致单核巨噬细胞和淋巴细胞聚集到斑块处[5],释放出大量的中性蛋白酶,可以加速低密度脂蛋白(low-density lipoprotein,LDL)进入到血管内膜局部并聚集[6],促进AS斑块形成。

    在骨髓细胞向MCs分化及活化过程中白细胞介素3(interleukin-3,IL-3)和干细胞因子(stem cell factor,SCF)起到重要作用[7-8]。本研究旨在通过提取乳兔骨髓细胞,利用IL-3、SCF、β-巯基乙醇联合作用诱导培养骨髓来源肥大细胞并鉴定其纯度与活性,为进一步研究肥大细胞与AS的关系提供依据。

    IL-3、SCF(美国Peprotech公司);FBS、DMEM、DMEM/F12、RPMI-1640(美国Gibco公司);实验动物:2周龄乳兔,昆明医科大学实验动物学部,环境条件符合国家实验动物环境及设施标准要求,室内保持安静、清洁、干燥和通风。自由饮水。实验动物使用许可证号:SCXK(滇)2015-0002。

    1.2.1   兔骨髓细胞的获取

    麻醉:(经2周龄乳兔耳缘静脉注射3%戊巴比妥钠,1 mL/kg)→浸泡(75%C2H5OH,10 min)→剥离(后肢皮肤切开,逐层分离,剥离肌肉)→暴露股骨→取出→浸泡(75% C2H5OH的无菌培养皿中浸泡3~5 min)→股骨两端剪去→吹打骨髓(吸取DMEM高糖培养基后吹打骨髓,股骨变白)→获取细胞(1000 r/min,5 min。如果在获取的细胞中有较多红细胞,则应用红细胞裂解液进行处理)→培养体系(含84 mL DMEM高糖培养基、15 mL FBS、1 mL双抗)。

    1.2.2   细胞的培养

    接种到T25瓶中(含DMEM高糖培养基)→隔天换液→细胞铺满→消化细胞→新培养瓶→贴壁→改用F12诱导培养基(含84 mL DMEM/F12、15 mL FBS、1 mL双抗、10 ng/mL SCF、10 ng/mL IL-3及0、10×10-5 mol/L的β-巯基乙醇)→放置37 ℃、5% CO2 饱和湿度环境→隔天换液→镜下观察细胞有变圆→更换为1640促成熟培养基(含84 mL RPMI 1640、15 mFBS、1 mL双抗、10 ng/mL SCF、10 ng/mL IL-3及0、10×10-5 mol/L的β-巯基乙醇)→7 d换液→直至细胞诱导成熟。

    1.2.3   肥大细胞功能学鉴定

    诱导成熟的重悬细胞液→载玻片→干燥→甲苯胺蓝染色→95% C2H5OH脱色→清洗→镜下观察。

    1.2.4   肥大细胞形态学鉴定

    通过光镜下观察不同培养时间的细胞形态,直至诱导成熟。

    消化细胞→洗2次(PBS)→细胞密度1×10 7个/mL→每管100 μL→单染管各加入5.0 μL的 CD117-PE抗体及FcεR1α-FITC抗体→双染管加两种抗体→空白对照管(无抗体)→避光孵育30 min→每管加1 mL PBS→离心10 min(400 g)→去上清→上法洗涤1次→去上清→每管加100 μL PBS→检测。

    2 d后开始出现以形态为长梭形的贴壁细胞;7 d时:细胞基本将培养瓶铺满;2周时:细胞逐渐变形;4周时:细胞基本变为圆形,悬浮细胞变多;6周时:细胞基本变为类圆形,且形态均匀具有折光性(图1)。

    图  1  肥大细胞变形过程(100×)
    A:7 d时长梭形贴壁细胞;B:2周时细胞逐渐变形;C:4周时细胞逐渐变圆;D:6周时变为类圆形细胞。
    Figure  1.  Changes in mast cells(100×)

    培养6周细胞成熟后利用甲苯胺蓝染色:可以观察到细胞质为紫红色,细胞核为蓝色。异染颗粒的细胞加入β-巯基乙醇比不加入β-巯基乙醇的能得到更多(图2)。

    图  2  甲苯胺蓝染色(100×)
    A:β-巯基乙醇浓度0 mol/L;B:β-巯基乙醇浓度10×10-5 mol/L。
    Figure  2.  Toluene blue staining(100×)

    培养6周收集细胞,利用流式细胞术检测细胞表面CD117及FcεR1α的表达情况,加入β-巯基乙醇双阳性细胞的比例达96.2%,大于不加入β-巯基乙醇的(图3),且与不加β-巯基乙醇相比有统计学意义(P < 0.05),见表1

    图  3  流式细胞仪检测细胞的双阳性率
    A:β-巯基乙醇为0 mol/L;B:β-巯基乙醇为10×10-5 mol/L。
    Figure  3.  Double positive rate of cells detected by flow cytometry
    表  1  不同浓度β-巯基乙醇诱导后CD117+ FcεRIα+肥大细胞的比例
    Table  1.  The proportion of CD117+ FcεRIα+ mast cells induced by different concentrations of β-mercaptoethanol
    β-巯基乙醇
    (mol/L)
    实验次数CD117+ FcεRIα+
    肥大细胞的比例(%)
    P
    0548.97 ± 3.120.7069
    10×10−55 95.64 ± 4.66#
      与β-巯基乙醇浓度为0 mol/L比较,#P < 0.05。
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    在正常人的心脏、主动脉及脂肪组织中有少量的MCs存在,当人类发生疾病时MCs的数量就会增多,比如AS。近年来,研究表明MCs在AS的发生、发展及斑块稳定性中有着重要作用[9]

    当下有研究认为MCs是利用其表面的趋化因子受体-3与AS斑块中表达的嗜酸细胞活化CC趋化因子亚族中趋化因子配体-11结合而向病变部位聚集[10]。MCs起源于骨髓造血干细胞[11],促进MCs成熟的分子主要有SCF和神经生长因子(nerve growthfactor,NGF)[17],SCF可能在MCs向受累区域聚集发挥作用,而MCs侵入受累区域可能会进一步导致更多的炎性细胞浸润,促进AS斑块形成。

    IL-3又被叫做肥大细胞生长因子,在MCs的生长、分化、迁移和效应中具有重要作用。活化T细胞、天然杀伤(NK)细胞和MCs都可产生IL-3,且对于SCF在MCs前体的发生、发展、扩增具有促进意义[12-13]。SCF的配体CD117(c-kit)除在其表面外,各种造血祖细胞中均可存在。MCs发挥重要表面标志的是FcεRIα,但FcεRIα还表达于嗜酸性粒细胞等细胞表面,只有MCs同时表达CD117和FcεRIα[14]。甲苯胺蓝染色是一种常用于识别及判断MCs功能状态的方法,同时也是MCs的特异性染色,可染细胞核为蓝色,胞质内为异染性紫红色颗粒,说明其具有吞噬功能[15]。通过甲苯胺蓝染色和流式细胞仪检测结果对诱导获得的MCs的纯度进行鉴定,就目前来说,利用兔的骨髓间质干细胞来诱导培养MCs的报道是极少的。

    本研究选用2周龄的乳兔来获取骨髓间质干细胞,因为当兔龄大于或者小于2周龄时,笔者发现细胞生长速度变得缓慢,可能是2周龄的骨髓间质干细胞的活性更好,更有利于细胞的培养。当IL-3浓度10 ng/mL、SCF浓度为10 ng/mL,加入β-巯基乙醇时:甲苯胺蓝染色及流式检测均较不加入β-巯基乙醇时可以获取更多、双阳性率更高的MSc,原因可能为β-巯基乙醇作为一种还原剂,在降低氧对细胞产生氧化损伤的同时促进干细胞生长。所以该培养体系是一种良好的体外诱导培养体系,其操作简单,且能获得更加成熟、更具有典型特征的MCs,为下一步对兔行进炎性损伤研究提供了优势。综上所述,本研究利用形态学、功能学2个方面对诱导的兔骨髓来源MCs进行鉴定,培养出的细胞不仅具有成熟MCs的生物学特性,还具有其功能,这便为后续的基础研究及临床研究奠定基础。

  • 表  1  2组有效率比较[n(%)]

    Table  1.   Comparison of effective rates between the two groups [n(%)]

    组别nCRPRMRPD有效率
    观察组 47 3(6.38) 31(65.96) 10(21.28) 3(6.38) 34(72.34)
    对照组 47 0(0.00) 23(48.94) 14(29.79) 10(21.28) 23(48.94)
    χ2 / - - - - 5.393
    P / - - - - 0.020#
      与对照组比较,#P < 0.05。
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    表  2  2组生化指标比较($ \bar{x} \pm s $

    Table  2.   Comparison of biochemical indicators between the two groups ($ \bar{x} \pm s $

    组别骨髓浆细胞(%)血M蛋白(g/L)BAP(μg/L)OPG(pg/mL)LDH(U/L)
    观察组(n = 47) 治疗前 35.29 ± 5.62 38.63 ± 5.39 4.32 ± 0.79 178.46 ± 8.78 174.34 ± 9.43
    疗程后 15.32 ± 2.38#* 25.16 ± 4.51#* 12.69 ± 1.63#* 199.69 ± 12.63#* 385.45 ± 26.32#*
    对照组(n = 47) 治疗前 35.61 ± 5.64 38.65 ± 5.41 4.35 ± 0.82 178.74 ± 8.95 174.52 ± 9.54
    疗程后 23.29 ± 3.59* 30.42 ± 4.89* 8.54 ± 1.32* 185.34 ± 10.29* 214.69 ± 22.41*
      与对照组比较,#P < 0.05;与治疗前比较,*P < 0.05。
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    表  3  2组免疫水平比较($ \bar{x} \pm s $

    Table  3.   Comparison of immune levels between the two groups ($ \bar{x} \pm s $

    组别时间点CD3+CD4+CD8+CD4+/CD8+
    观察组(n = 47) 治疗前 45.92 ± 6.49 47.41 ± 7.21 25.56 ± 5.42 1.85 ± 0.41
    疗程结束后 40.69 ± 5.14#* 42.56 ± 6.34#* 28.62 ± 6.71#* 1.49 ± 0.29#*
    对照组(n = 47) 治疗前 45.95 ± 6.52 47.43 ± 7.26 25.58 ± 5.44 1.85 ± 0.43
    疗程结束后 34.38 ± 4.58* 38.32 ± 5.82* 32.69 ± 6.75* 1.17 ± 0.17*
      与对照组比较,#P < 0.05;与治疗前比较,*P < 0.05。
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    表  4  2组疾病负荷比较($ \bar{x} \pm s $

    Table  4.   Comparison of disease burden between the two groups ($ \bar x \pm s$

    组别n骨髓浆细胞百分比(%) M蛋白 自由轻链(mg/L)
    治疗前疗程结束后 治疗前疗程结束后 治疗前疗程结束后
    观察组 47 25.29 ± 4.31 12.19 ± 2.04# 51.94 ± 5.61 22.15 ± 3.14# 278.43 ± 12.59 152.15 ± 8.51#
    对照组 47 25.31 ± 4.33 20.15 ± 3.35# 51.96 ± 5.64 33.61 ± 4.69# 279.51 ± 12.62 194.68 ± 10.29#
    T/χ2 / 1.201 6.619 0.458 7.439 0.095 13.239
    P / 0.329 0.001 0.541 0.001 0.518 0.001
      与治疗前比较,#P < 0.05。
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    表  5  2组安全性比较[n(%)]

    Table  5.   Comparison of safty between the two groups [n (%)]

    组别n肾损伤胃肠道反应脱发骨髓抑制指尖麻木发生率
    观察组 47 1(2.13) 3(6.38) 0(0.00) 0(0.00) 1(2.13) 5(10.64)
    对照组 47 3(6.38) 4(8.51) 3(6.38) 1(2.13) 2(4.26) 13(27.66)
    χ2 / 4.398
    P / 0.036#
      与对照组比较,#P < 0.05。
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出版历程
  • 收稿日期:  2023-03-16
  • 网络出版日期:  2023-06-16
  • 刊出日期:  2023-06-25

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