Mechanisms of Ginsenoside Rg1 in Protecting Cardiomyocytes by Sestrin2
-
摘要:
目的 研究人参皂苷Rg1（G-Rg1）对抗心肌缺血再灌注损伤中Sestrin2的作用及相关机制。 方法 体外培养大鼠 H9c2 心肌细胞，按实验要求随机分5组，分别为对照组，缺氧复氧组，G-Rg1组，缺氧诱导因子 -1α（Hypoxia Inducible Factor-1，HIF-1，HIF-1α） 抑制剂组，Sestrin2 siRNA干扰组。流式细胞术检测各组心肌细胞内活性氧簇（reactive oxygen species，ROS）含量。蛋白质免疫印迹法检测HIF-1α、Sestrin2、蛋白激酶R样内质网激酶（protein kinase R-like ER kinase，PERK）、活化转录因子6（the activating transcription factor 6，ATF-6）和跨膜蛋白激酶1（inositol requiring enzyme 1，IRE-1）蛋白表达。免疫荧光法检测Sestrin2、HIF-1α、IRE-1蛋白表达。 结果 与对照组相比，缺氧复氧组细胞内ROS水平、HIF-1α、Sestrin2、ATF-6、PERK、IRE-1蛋白表达水平明显升高（P < 0.05）；与缺氧复氧组相比，G-Rg1组细胞内ROS水平明显降低（P < 0.05），HIF-1α、Sestrin2、ATF-6、PERK、IRE-1蛋白表达水平明显升高（P < 0.05）；与G-Rg1组比较，HIF-1α抑制剂组心肌细胞内ROS水平升高，Sestrin2蛋白表达明显下调（P < 0.05）；与G-Rg1组比较，siRNA干扰组心肌细胞内ROS水平升高，IRE-1表达明显升高（P < 0.05）。 结论 G-Rg1通过上调Sestrin2表达，保护缺氧复氧心肌细胞，并维持内质网应激平衡稳态。 Abstract:Objective To explore the role and mechanisms of Sestrin2 in ameliorating hypoxia-reoxygenation injury of rat’s cardiomyocytes by ginsenoside-rg1 （G-Rg1）. Methods Rat H9c2 cardiomyocytes cultured in vitro were randomly divided into 5 groups according to the experimental requirements: control group, Hypoxia reoxygenation group, G-Rg1 group, hypoxia Inducible Factor-1 （HIF-1, HIF-1α） inhibitor group, and Sestrin2 siRNA interference group. Flow cytometry was used to detect the expression levels of ROS in cardiomyocytes. Western blot was used to detect the protein expression of HIF-1α, Sestrin2, ATF-6, PERK, IRE-1 in cardiomyocytes. Immunofluorescence was used to test the protein expression of Sestrin2, HIF-1α, IRE-1. Results Compared with control group, the level of ROS and protein expression of HIF-1α、Sestrin2、ATF-6、PERK、IRE-1 of hypoxiareoxygenation group were significantly increased （P < 0.05） . Compared with the hypoxiareoxygenation group , the ROS level in G-Rg1 group were significantly reduced and protein expression of HIF-1α、Sestrin2、ATF-6、PERK、IRE-1 in G-Rg1 group were significantly increased （P < 0.05） . Compared with G-Rg1 group, the level of ROS were significantly increased and the protein level of Sestrin2 were significantly reduced, in HIF-1α inhibition group （P < 0.05）. Compared with G-Rg1 group, the level of ROS were significantly increased and the protein level of IRE-1 were significantly upregulated in Sestrin2 siRNA group （P < 0.05）. Conclusions G-Rg1 protects rat cardiomyocytes and maintains endoplasmic reticulum homeostasis in vitro by upregulating expression of Sestrin2. -
Key words:
- Ginsenoside-rg1 /
- ATF-6 /
- PERK /
- IRE-1 /
- Sestrin2
-
肌少症属于老年综合征常见类型，随年龄增长，骨骼肌细胞体积及数量均明显减少，肌力降低，致使躯体功能减弱，从而诱发跌倒等并发症[1]。欧洲学者Beaudart等[2]实施Meta分析，结果显示：患有肌少症者机体功能减退概率、死亡率更高，分别为未患有肌少症者3倍、4倍。我国学者罗旺辉等[3]开展Meta分析，结果显示：社区老年人中肌少症发生率为11%，亚洲地区发病率为9%，亚洲以外地区发病率为13%，女性发病率为16%，男性发病率为11%。如何帮助老年群体减慢肌肉流失速度，降低肌少症发生风险，提高老年群体生命质量是临床工作者亟须解决的问题[4]。营养干预通过调整饮食结构，培养患者养成健康饮食习惯，不仅能维持正常营养摄入量，同时还可以避免进食过多可加重病情的食物，有助于控制病情进展[5]。抗阻运动为肌肉战胜外来阻力而开展的主动运动方式，针对缺乏锻炼的老年群体，经短时间抗阻运动，其蛋白合成率与神经肌肉适应性反应能达到与年轻群体相似水平[6]。但目前临床关于营养干预联合抗阻运动对老年肌少症患者营养水平及日常生活能力影响报道较少，故本研究重点分析营养干预联合抗阻运动对老年肌少症患者营养水平及日常生活能力的影响，现报道如下。
1. 资料与方法
1.1 一般资料
采用目的抽样法，选取2020年8月至2022年5月在昆明市第二人民医院老年病科收治的50例老年肌少症患者为研究对象。纳入标准：（1）符合《肌少症亚洲诊断标准更新》[7]中关于肌少症相关诊断标准；（2）年龄60～71岁；（3）具备基本理解与沟通能力；（4）近期未进行规律体育活动。排除标准：（1）无法参与抗阻运动者；（2）近3个月内服用含VD制剂药物者；（3）心脏安装起搏器；（4）合并四肢或脊柱等骨关节病；（5）血糖、血压、尿酸控制不佳者。脱落标准：（1）发生不良反应；（2）因诸多因素未完成本次研究而中途退出者。依据病案号前后次序将其分为观察组与对照组，各25例，2组均维持慢性病常规药物治疗。2组患者一般资料见表1。患者个人信息比较无明显差异，具有可比性（P > 0.05）。课题符合《赫尔辛基宣言》要求，患者签署知情同意书。
表 1 2组患者常规信息对比（$\bar x \pm s $ ）Table 1. Comparison of basic information between the two groups （$\bar x \pm s $ ）项目 对照组（n = 25） 观察组（n = 25） t/χ2 P 年龄（岁） 65.87 ± 5.19 65.31 ± 5.16 0.276 0.784 性别（n，男/女） 13/12 14/11 0.081 0.777 体质量指数（kg/m2） 18.51 ± 3.46 18.45 ± 3.54 0.061 0.952 体重（kg） 64.64 ± 11.63 65.68 ± 10.96 0.325 0.747 脂肪含量（%） 13.58 ± 4.52 13.17 ± 4.43 0.324 0.747 握力（kg） 24.03 ± 7.44 25.28 ± 8.71 0.546 0.588 骨骼肌质量指数（kg/m2） 4.99 ± 0.49 4.89 ± 0.29 0.878 0.384 1.2 方法
1.2.1 对照组
采用常规饮食及传统康复锻炼，具体措施：（1）医护人员应依据患者每日能量需求提供充足蛋白质与热量，并帮助其纠正不良生活与饮食结构，尽量戒烟戒酒；（2）传统康复锻炼包括：①物理因子治疗；②运动治疗（坐位及站立位平衡训练等）；③传统康复治疗（针灸、中药膏摩、推拿及药棒穴位按摩等）；④日常生活活动治疗；⑤慢性疾病知识宣教及护理指导。（3）医护人员应指导患者及家属熟练掌握药物使用方法，详细讲解用药过程中较易发生的毒副作用，告知其预防方法，邀请患者及家属定期参与健康教育知识讲座，避免多重用药；（4）医护人员应依据患者年龄、身高、BMI及SMI等基本情况实施个性化诊疗。
1.2.2 观察组
在对照组基础上采用增加营养干预，给予个体化膳食配比（必需氨基酸、维生素D等营养物质的有效摄入）的同时采用抗阻运动。具体措施：（1）创建医护小组：借助昆明市第二人民医院牵头成立的昆明市医养协会整合现有营养示范病房的医疗资源，组内成员包含老年医学部各科室、康复医学科及营养科的医生、护士及护工，依据组内成员自身优势合理分配任务，确保分工明确，同时，在治疗、康复及护理期间，组内成员应加强关注患者情绪变化，及时沟通，了解其心理状态，并针对性帮助其缓解焦虑或抑郁等情绪，促进其身心健康。（2）营养干预：①制定营养方案：组内成员应每周开展病例研讨会，汇报患者近期营养水平综合评估结果，营养科医生依据患者日常饮食习惯及膳食结构，结合其营养水平评估结果及吞咽情况等，再充分听取患者本人及家属建议，与组内成员进行讨论，共同制定营养方案；②营养宣教：组内成员应基于中国居民膳食指南（2021版）指导患者均衡饮食，确保其每日能量与蛋白质摄入量分别为30 kcal/kg与1.2～1.5 g/kg，碳水化合物与脂类摄入比例分别为60%与24%，同时，营养科医生应一对一指导患者制定个性化饮食方案，给予个体化膳食配比（必需氨基酸、维生素D等营养物质的有效摄入），并通过定期随访进行监督，确保患者各营养素摄入比例符合本课题要求；③营养支持：组内成员应建议患者随餐服用乳清蛋白，10 g/次，3次/d，并将鱼油与VD制成胶囊（每粒胶囊含300 mg二十碳五烯酸、200 mg二十二碳六烯酸及250IU维生素D3），分别在早餐及晚餐后30 min服用，2粒/次。（3）抗阻运动：①器材：组内成员可选用康复弹力带作为运动器材，不同颜色、磅数及长度阻力效果不同，从茶色→黄色→红色→绿色→蓝色→黑色阻力依次增加25%，能较好地实施渐进性抗阻运动；②模式：组内成员可选取动作简单的全身大肌群为主要训练方式，包括扩胸运动、拳击、手肘弯曲、招财猫、大鹏展翅及背水一战等6项上肢动作，抬腿、外展髋关节、踢腿、髋后伸、抬腿提膝及腿屈伸等6项下肢动作；③强度：组内成员应依据患者初始肌力推荐其选取适宜运动强度，运动结束后运用主观疲劳评定量表（rating of perceived exertion，RPE）[8]评估其运动后疲劳程度，以患者锻炼时轻微发汗且未见显著疲劳为宜；④频率：组内成员应要求患者每次对12项训练动作进行3～4组训练，每周进行3～4次训练，组间可适当休息25～30 s，每次训练持续20～25 min；⑤注意事项：开展锻炼前应实施8～12 min热身，可实施屈颈、耸肩、扩胸、抬腿、展髋及坐位踏步等锻炼方式，锻炼后再开展5～8 min肌肉放松，可实施深呼吸或拍打等方式。
1.3 观察指标
1.3.1 营养水平
护理前后分别采集患者空腹静脉血5 mL，并放置到含促凝剂采血管中，运用3000 r/min离心机处理10 min，取血清运用全自动生化分析仪（贝克曼，型号：AU5811）联合配套原装进口试剂（安图生物，型号A2000plus）测定血红蛋白（Hb）、白蛋白（ALB）及维生素D（VD）水平；并运用Ottery[9]改编的整体营养评定量表（PG-SGA）评估患者营养情况，使用likert 5级评分法，1月内体重丢失，大于10%记4分，5%～9.9%记3分，3%～4.9%记2分，2%～2.9%记1分，0～1.9%记0分；是否存在创伤、褥疮等疾病，存在一项记1分，得分介于0～10分，重测信度为 0.708，Cronbach’s α数值为0.951，营养状况与得分呈现负相关。
1.3.2 日常生活能力
护理前后分别运用改良Barthel指数量表评分[10]，包含穿脱衣物、二便控制、平地行走、上下楼梯、独立进食及独立洗漱，使用likert 5级评分法，完全依赖记0分，最大帮助记1分，中等帮助记2分，最小帮助记3分，完全独立记4分，得分介于0～10分，重测信度为 0.891，Cronbach’s α数值为0.928，独立能力与得分呈现正相关。
1.4 统计学处理
运用SPSS 25.0统计软件（IBM公司，美国）实施统计学分析，计数资料采用例数（%）表示，结果采用χ²检验；计量资料运用（
$\bar x \pm s $ ）表示，结果采用t检验，P < 0.05代表差异有统计学意义。2. 结果
2.1 2组患者营养水平比较
干预前，营养水平比较（P > 0.05）；干预2个月后，2组Hb、ALB及VD均高于干预前，PG-SGA评分低于干预前（P < 0.05）；且观察组Hb、ALB及VD高于对照组，PG-SGA评分低于对照组（P < 0.05），见表2。
表 2 2组患者营养水平比较（$\bar x \pm s $ ）Table 2. Comparison of nutritional levels between the two groups （$\bar x \pm s $ ）指标 时间 对照组（n = 25） 观察组（n = 25） Hb（g/L） 干预前 112.86 ± 11.18 114.72 ± 9.89 干预后 120.07 ± 11.32* 128.32 ± 14.49*# ALB（g/L） 干预前 30.77 ± 4.55 31.08 ± 4.23 干预后 34.09 ± 5.89* 38.46 ± 6.01*# VD（ng/mL） 干预前 17.01 ± 5.34 17.34 ± 5.72 干预后 21.34 ± 7.01* 25.89 ± 6.71*# PG-SGA评分（分） 干预前 8.61 ± 0.74 8.64 ± 0.49 干预后 5.05 ± 1.16* 2.04 ± 0.91*# 与本组干预前相比，*P < 0.05；与对照组相比，#P < 0.05。 2.2 2组患者日常生活能力比较
干预前，日常生活能力比较（P > 0.05）；干预2个月后，2组日常生活能力均高于干预前（P < 0.05）；且观察组日常生活能力高于对照组（P < 0.05），见表3。
表 3 2组患者日常生活能力比较（分，$\bar x \pm s $ ）Table 3. Comparison of daily living ability between the two groups （points，$\bar x \pm s $ ）指标 时间 对照组（n = 25） 观察组（n = 25） 穿脱衣物 干预前 4.58 ± 0.56 4.76 ± 0.47 干预后 6.75 ± 0.69* 9.49 ± 0.44*# 二便控制 干预前 4.17 ± 0.91 4.12 ± 0.89 干预后 6.34 ± 0.27* 9.49 ± 0.37*# 平地行走 干预前 4.81 ± 0.92 4.95 ± 0.87 干预后 6.98 ± 0.91* 9.33 ± 0.39*# 上下楼梯 干预前 4.46 ± 0.72 4.24 ± 0.95 干预后 6.69 ± 0.54* 9.27 ± 0.32*# 独立进食 干预前 4.05 ± 0.23 4.17 ± 0.38 干预后 6.21 ± 0.29* 9.39 ± 0.21*# 独立洗漱 干预前 4.58 ± 0.64 4.74 ± 0.72 干预后 6.51 ± 0.59* 9.77 ± 0.21*# 与本组干预前相比，*P < 0.05；与对照组相比，#P < 0.05。 3. 讨论
3.1 营养干预联合抗阻运动能改善老年肌少症患者营养水平
目前，临床主要运用药物治疗、营养支持及运动康复等措施治疗或延缓肌少症，以营养与运动为核心的生活方式干预能够预防及延缓肌少症发生与发展[11]。董欣等[12]研究表明，健身器材等常规抗阻运动对参与锻炼者体能素质拥有一定要求，普遍存在极高锻炼风险，而弹力带抗阻运动不受身体素能或锻炼场地影响，具有操作简单、安全性好及灵活度高等显著优势。但单一运动方案虽能在一定程度上改善肌肉供血量，但在提高肌肉质量与促进肌肉细胞增殖等方面效果并不理想，从本质上讲，肌少症发生与机体新陈代谢率降低、年龄高等存在一定相关性[13]，而肌肉功能降低最主要因素为长时间营养物质摄入不足致使肌肉蛋白合成减弱，因此，对于能自主进食的老年肌少症者予以优质膳食管理，可在一定程度上提高其生理状态，恢复其胃肠功能，从而提高其肌肉蛋白质合成能力，进而提升肌肉功能[14]。本研究中，昆明市第二人民医院通过整合医疗资料，创建医护小组，组内成员通过在治疗与护理过程中关注患者情绪变化，增加沟通交流频率，更为全面地掌握其心理状态，并实施个性化心理支持，有助于促进其身心健康，从而提高其治疗及护理依从性，加快康复进程；营养科医生依据患者饮食喜好制定个性化饮食方案，并开展营养支持与饮食宣教，有助于保障均衡摄入各营养素，从而提升患者营养水平；此外，运用康复弹力带行抗阻运动，能够更好地调动全身肌肉群参与到锻炼过程中，改善肌群间配合度，有助于提高肌肉力量。本次研究显示，观察组患者采取营养干预联合抗阻运动后Hb、ALB及VD高于对照组，PG-SGA评分低于对照组（P < 0.05），提示针对老年肌少症患者运用营养干预联合抗阻运动，可明显改善其营养水平。雷娅辉等[15]研究显示：舞蹈运动治疗法可恢复老年肌少症患者营养状况，并提高其肌肉力量，与本次研究结果相似。
3.2 营养干预联合抗阻运动能提升老年肌少症患者日常生活能力
国内外大量研究表明，老年群体通过适宜抗阻运动能避免或延迟衰老期间肌肉质量降低[16-17]。既往多项研究表明[18-19]，肌力在诸多慢性病发病、发展及预防等方面拥有重要作用，高肌力能明显减少心血管疾病相关死亡概率，低肌力为老年群体丧失基本生活能力等独立危险因素。联合饮食干预能明显改善老年群体新陈代谢，提高肌肉蛋白合成量，有助于提升肌肉质量及功能，进而恢复日常生活能力[20]。本次研究显示，干预后观察组日常生活能力优于对照组，差异有统计学意义（P < 0.05），提示针对老年肌少症患者运用营养干预联合抗阻运动，可明显提升其日常生活能力。王光辉等[21]研究发现，短期弹力带抗阻运动训练能够为老年肌少症患者提供更为优质护理措施，极大程度上改善其握力与步速，并提高其生活质量，进而恢复其日常生活能力，与本次研究结果相似。分析原因为开展营养干预联合抗阻运动，通过实施营养干预，帮助患者在思想方面更为注重肌少症危害与预防重要性，确保机体摄入充足热量及蛋白质，有助于改善肌肉量及肌力，纠正肌少症，从而增加老年群体体质量，降低病死率；通过实施抗阻运动，可快速提高肌蛋白与糖原储备量，刺激横纹肌血液循环，有利于加快横纹肌代谢能力，从而提高骨骼肌力量，进而提高患者日常生活能力。
综上所述，营养干预联合抗阻运动可改善老年肌少症患者营养水平，并恢复其日常生活能力。但本次研究也存在一定局限性：（1）本研究对象均为昆明市第二人民医院，样本来源较为单一，可能影响结果客观性。（2）本研究在测量人体组成基础上，还应将身体功能相关指标纳入分析，有助于显示营养干预与抗阻运动在临床实践中意义。故后续应积极开展本领域大样本、高质量随机对照研究，并运用更为全面的结局指标开展深入研究。
-
图 1 各组心肌细胞 ROS 水平
用 ROS 阳性细胞所占百分比表示各组心肌细胞中 ROS 水平。**P < 0.01。
Figure 1. The levels of ROS in cardiomyocytes
图 2 各组心肌细胞 HIF-1α、Sestrin2 蛋白表达及内质网跨膜蛋白：ATF-6、PERK、IRE-1 表达
*P < 0.05，**P < 0.01。
Figure 2. The protein expression of HIF-1α，Sestrin2，ATF-6，PERK，IRE-1 in cardiomyocytes
-
[1] Lu M L,Wang J,Sun Y,et al. Ginsenoside Rg1 attenuates mechanical stress-induced cardiac injury via calcium sensing receptor-related pathway[J]. J Ginseng Res,2021,45(6):683-694. doi: 10.1016/j.jgr.2021.03.006 [2] Yang C,Jiang G,Xing Y. Protective effect of ginsenosides Rg1 on ischemic injury of cardiomyocytes after acute myocardial infarction[J]. Cardiovasc Toxicol,2022,22(10-11):910-915. doi: 10.1007/s12012-022-09767-1 [3] Che X,Chai J,Fang Y,et al. Sestrin2 in hypoxia and hypoxia-related diseases[J]. Redox Rep,2021,26(1):111-116. doi: 10.1080/13510002.2021.1948774 [4] Zhu H,Zhou H. Novel insight into the role of endoplasmic reticulum stress in the pathogenesis of myocardial ischemia-reperfusion injury[J]. Oxid Med Cell Longev,2021,2021:5529810. [5] Gao A,Li F,Zhou Q,Chen L. Sestrin2 as a potential therapeutic target for cardiovascular diseases[J]. Pharmacol Res,2020,159:104990. doi: 10.1016/j.phrs.2020.104990 [6] Kishimoto Y,Aoyama M,Saita E,et al. Association between plasma sestrin2 levels and the presence and severity of coronary artery disease[J]. Dis Markers,2020,2020:7439574. [7] Fang C,Yang Z,Shi L,et al. Circulating sestrin levels are increased in hypertension patients[J]. Dis Markers,2020,2020:3787295. [8] Kishimoto Y,Saita E,Ohmori R,et al. Plasma sestrin2 concentrations and carotid atherosclerosis[J]. Clin Chim Acta,2020,504:56-59. doi: 10.1016/j.cca.2020.01.020 [9] Li L,Pan C S,Yan L,et al. Ginsenoside Rg1 ameliorates rat myocardial ischemia-reperfusion injury by modulating energy metabolism pathways[J]. Front Physiol,2018,9:78. doi: 10.3389/fphys.2018.00078 [10] Lyu T J,Zhang Z X,Chen J,Liu Z J. Ginsenoside Rg1 ameliorates apoptosis,senescence and oxidative stress in ox-LDL-induced vascular endothelial cells via the AMPK/SIRT3/p53 signaling pathway[J]. Exp Ther Med,2022,24(3):545. doi: 10.3892/etm.2022.11482 [11] Granger D N,Kvietys P R. Reperfusion injury and reactive oxygen species: The evolution of a concept[J]. Redox Biol,2015,6:524-551. doi: 10.1016/j.redox.2015.08.020 [12] Martindale J J,Fernandez R,Thuerauf D,et al. Endoplasmic reticulum stress gene induction and protection from ischemia/reperfusion injury in the hearts of transgenic mice with a tamoxifen-regulated form of ATF6[J]. Circ Res,2006,98(9):1186-1193. doi: 10.1161/01.RES.0000220643.65941.8d [13] Ruan Y,Zeng J,Jin Q,et al. Endoplasmic reticulum stress serves an important role in cardiac ischemia/reperfusion injury (Review)[J]. Exp Ther Med,2020,20(6):268. [14] Liu Y,Li M,Sun M,et al. Sestrin2 is an endogenous antioxidant that improves contractile function in the heart during exposure to ischemia and reperfusion stress[J]. Free Radic Biol Med,2021,165:385-394. doi: 10.1016/j.freeradbiomed.2021.01.048 [15] Park H W,Park H,Ro S H,et al. Hepatoprotective role of Sestrin2 against chronic ER stress[J]. Nat Commun,2014,5:4233. doi: 10.1038/ncomms5233 [16] Wang L X,Zhu X M,Luo Y N,et al. Sestrin2 protects dendritic cells against endoplasmic reticulum stress-related apoptosis induced by high mobility group box-1 protein[J]. Cell Death Dis,2020,11(2):125. doi: 10.1038/s41419-020-2324-4 [17] Zheng J,Chen P,Zhong J,et al. HIF-1α in myocardial ischemia-reperfusion injury (Review)[J]. Mol Med Rep,2021,23(5):352. [18] Essler S,Dehne N,Brüne B. Role of sestrin2 in peroxide signaling in macrophages[J]. FEBS Lett,2009,583(21):3531-3535. doi: 10.1016/j.febslet.2009.10.017 [19] Ala M. Sestrin2 in cancer: a foe or a friend[J]. Biomark Res,2022,10(1):29. doi: 10.1186/s40364-022-00380-6 [20] Lu C,Jiang Y,Xu W,Bao X. Sestrin2: multifaceted functions,molecular basis,and its implications in liver diseases[J]. Cell Death Dis,2023,14(2):160. doi: 10.1038/s41419-023-05669-4 -
下载:
下载:
点击查看大图
计量
- 文章访问数: 2940
- HTML全文浏览量: 1763
- PDF下载量: 6
- 被引次数: 0
