留言板

尊敬的读者、作者、审稿人, 关于本刊的投稿、审稿、编辑和出版的任何问题, 您可以本页添加留言。我们将尽快给您答复。谢谢您的支持!

姓名
邮箱
手机号码
标题
留言内容
验证码

miR-196b靶向ERG促进肺腺癌的增殖和迁移

刘邦卿 李剑锋 刘晓辉 张劲男 梁金屏

李文卓, 杨莉, 夏婧. 心脉隆注射液对脓毒症心肌病的临床疗效观察[J]. 昆明医科大学学报, 2022, 43(12): 111-116. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20221221
引用本文: 刘邦卿, 李剑锋, 刘晓辉, 张劲男, 梁金屏. miR-196b靶向ERG促进肺腺癌的增殖和迁移[J]. 昆明医科大学学报, 2023, 44(10): 83-91. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20231023
Wenzhuo LI, Li YANG, Jing XIA. Efficacy of Xinmailong Injection on Septic Cardiomyopathy[J]. Journal of Kunming Medical University, 2022, 43(12): 111-116. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20221221
Citation: Bangqing LIU, Jianfeng LI, Xiaohui LIU, Jinnan ZHANG, Jinping LIANG. MiR-196b Promotes Proliferation and Migration of Lung Adenocarcinoma by Targeting ERG[J]. Journal of Kunming Medical University, 2023, 44(10): 83-91. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20231023

miR-196b靶向ERG促进肺腺癌的增殖和迁移

doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20231023
基金项目: 河北省医学科学研究课题基金资助项目(20231805)
详细信息
    作者简介:

    刘邦卿(1988~),男,山东巨野人,医学硕士,主治医师,主要从事肺癌基础与临床研究工作

  • 中图分类号: R734.2

MiR-196b Promotes Proliferation and Migration of Lung Adenocarcinoma by Targeting ERG

  • 摘要:   目的   探究miR-196b影响肺腺癌(lung adenocarcinoma,LUAD)进展的机制。   方法   通过TCGA数据库分析miR-196b在LUAD组织中的表达水平,利用TargetScan预测其下游靶基因并用双荧光素酶实验进行验证,qRT-PCR检测miR-196b和ETS相关基因(ETS-related gene,ERG)在LUAD细胞系中的表达情况,MTT、划痕愈合和Transwell实验分别检测不同处理后LUAD细胞的增殖、迁移和侵袭能力的变化情况。   结果   miR-196b在LUAD中高表达(P = 3.50e-17)并靶向负调控ERG,过表达miR-196b能够促进LUAD细胞的增殖、迁移和侵袭(P < 0.05),回复实验证实miR-196b/ERG调控轴能够影响LUAD细胞增殖、迁移和侵袭( P < 0.05)。   结论   miR-196b靶向ERG促进LUAD进展的分子机制,对开发LUAD新的临床治疗方法具有潜在意义。
  • 烧伤、创伤、感染等多种因素引起宿主反应失控的全身炎症反应综合症(systemic inflammatory response syndrome,SIRS)[1],也称为脓毒症,可发展为脓毒性休克、多器官功能衰竭等严重并发症,严重危害人类生命健康。虽然随着脓毒症研究不断深入,对脓毒症的治疗策略取得一定成效,但脓毒症患者死亡率仍然居高不下,脓毒症往往会引发脓毒症性心肌病[2]。目前,脓毒症心肌病病因尚未完全阐明,多以抗感染、改善心脏灌注等手段进行对症支持治疗[3]。心脉隆注射液是从蜚蠊体内提取富含核苷碱基、心血管活性肽和结合氨基酸等主要成分的国家二类新中药,目前主要用于治疗心力衰竭患者[4]。据报道,心脉隆注射液具有增强心肌收缩作用,在安全剂量范围内呈现量效关系,且作用半衰期较长。彭芳[5]研究提示心脉隆注射液能够促进心肌细胞外钙离子向心肌细胞内内流,到达增加心肌收缩力作用;其它研究[6]也表明心脉隆注射液能增加内源性超氧化物歧化酶大量释放,加强清除氧自由基,同时又能降低心律失常发生率,降低脓毒症患者病死率[7]。但目前关于心脉隆注射液对脓毒症性心肌病医学证据尚不完善[8]。因此,笔者通过心脉隆注射液对脓毒症性心肌病的治疗作用研究,进一步完善此药对脓毒症性心肌病治疗作用的医学证据。

    2019年6月1日至2020年6月1日,昆明医科大学第一附属医院急诊ICU符合研究标准的43名患者。所有患者纳入前征得患者直系亲属或法定委托人同意接受临床试验,并签署之情同意书。有4名患者在收集数据过程中相应时间点因做临床必须治疗,与采样时间冲突,未采集到相应时间点数据,存在试验数据脱落或缺失,3名患者因为家庭经济原因自动出院,最终纳入36名患者进行分析。年龄28~76岁,男性21例(58.33%),女性15例(41.67%),试验组17例,对照组19例。

    2组患者性别、年龄、身高、APACHEII评分、血液进化情况,差异无统计学意义(P > 0.05),见 表1

    表  1  2组患者基本情况比较( $ \bar x \pm s $)
    Table  1.  Baseline Participant Characteristics ( $ \bar x \pm s $)
    指标 试验组 对照组 χ2/t P
    性别(男/女) 10/7 11/8 0.003 0.955
    年龄(岁) 54.65 ± 12.32 53.25 ± 11.87 0.297 0.803
    身高(cm) 164.65 ± 12.31 166.87 ± 13.62 −0.212 0.832
    APECHEII评分 19.12 ± 5.28 18.97 ± 5.59 1.766 0.079
    血液净化(有/无) 15/2 16/3 0.122 0.726
    下载: 导出CSV 
    | 显示表格
    1.1.1   纳入标准

    (1) 符合脓毒症及脓毒性休克诊断标准(2018年版)[9]。(2)①既往无心脏病病史;②cTnI或 BNP升高;③心脏超声提示心脏收缩或舒张功能异常;④患者出现冷休克表现。(3)年龄 > 18岁。(4)家属同意参加心脉隆注射液对脓毒症心肌病的临床疗效观察研究并签署相应知情同意书。

    1.1.2   排除标准

    (1)心肺复苏术患者;(2)SOFA评分肝脏系统评分≥3分或SOFA评分肾脏系统评分≥3分;(3)免疫系统功能严重障碍或合并其他终末期疾病;(4)心脉隆皮试(+);(5)无法行深静脉穿刺术;(6)妊娠期妇女。

    1.1.3   剔除标准

    (1) 心脉隆用药期间放弃治疗或自动出院;(2)存在试验数据脱落或缺失。患者纳入过程,见图1

    图  1  患者纳入过程
    Figure  1.  The process of patients inclusion

    本实验为单中心、随机对照、单盲研究。利用随机表法把患者随机分成试验组和对照组。2组患者均按照2018年脓毒症指南规范化治疗[10],包括抗感染、液体复苏、器官功能支持等,使用去甲肾上腺素维持收缩压 > 90 mmHg,2组患者均静脉持续泵入多巴酚丁胺改善心功能2 μg/(kg·min)初始泵注速度,1 h后增加到4 μg/(kg·min)持续泵入,同时均予颈内静脉置管、股动脉穿刺置入PICCO导管,连接PICCO 监测仪进行监测。多巴酚丁胺使用剂量视患者具体病情调整,患者生命征平稳,减量致2 μg/(kg·min)可停用。实验组在此基础上加用心脉隆注射液5 mg/kg +0.9%氯化钠注射液200 mL静脉滴注,每天2次,2次间隔6 h以上,连续滴注5 d;对照组在与实验组同一时间给予0.9%氯化钠注射液200 mL 静脉滴注,每天2次,2次间隔6 h以上,连续滴注5 d,输入速度同心脉隆组。2组患者输注心脉隆及氯化钠注射液均计算入总输液量中。

    心脉隆注射液(云南腾药制药股份有限公司,批准文号:国药准字Z20060443);肝素钠注射液(天津生物化学制药有限公司);多普勒超声心动图仪(美国生产,型号:GELogiq E);血流动力及容量检测仪[PICCO(德国生产,型号:PC8500)];生命体征监测仪(美国生产,型号:Solar 8000M)。

    记录患者一般资料,包括性别、年龄、身高、APACHEII评分(acute physiology and chronic health evaluation II,APACHEII)、SOFA评分(sequential organ failure assessment,SOFA);是否行血液净化治疗。2组患者于治疗开始前、开始后第24 h、72 h、120 h抽取血检测B型脑利钠尿肽(brain natriuretic peptide,BNP)、肌钙蛋白I(calcitonin-i,cTnI);同时行多普勒超声心动图检查,评估左室射血分数(left ventricular ejection fraction,LVEF)、左室收缩/舒张末内径、二尖瓣血流频谱E/A峰、E峰减速时间(E peak deceleration time,EDT)、三尖瓣环收缩期偏移幅度(tricuspid annular plane systolic excursion,TAPSE);在相同时间点记录PICCO通过动脉轮廓分析法测每博量指数(stroke volume index,SVI)、外周血管阻力指数(systemic vascular resistance index,SVRI),经热稀释法得全心舒张末容积指数(global end-diastolic volume index,GEDI)、心功能指数(cardiac function index,CFI)。

    采用SPSS 26.0统计学软件包进行统计学分析,基本描述正态分布计量资料采用均数±标准差,计数资料采用例及构成比,计数资料用χ2检验,正态分布计量资料用两组间比较采用两独立样本t检验,重复测量资料采用重复测量的方差分析,P < 0.05 表示差异有统计学意义。

    经重复测量资料的方差分析:与对照组比较,在治疗后24 h、72 h、120 h试验组BNP及cTnI均明显下降,差异有统计学意义(P < 0.05)。试验组治疗24 h、72 h、120 h后BNP及cTnI均较实验前明显下降,差异有统计学意义( P < 0.05),见 表2

    表  2  2组患者不同时间点试验室指标比较( $ \bar x \pm s $)
    Table  2.  Comparison of laboratory parameters between two groups of patients at different time points ( $ \bar x \pm s $)
    指标 试验前 试验24 h 试验72 h 试验120 h F P
    BNP(pg/mL)
     试验组 885.76 ± 142.43 762.86 ± 143.54 497.59 ± 132.37 255.92 ± 46.43 132.119 < 0.001 *
     对照组 839.54 ± 231.43 759.63 ± 183.57 553.52 ± 142.65 480.76 ± 143.54 0.831 0.370
    肌钙蛋白I(ng/mL)
     试验组 4.37 ± 1.43 3.28 ± 1.09 1.62 ± 0.78 0.47 ± 0.16 26.899 < 0.001 *
     对照组 5.02 ± 2.82 4.88 ± 1.43 3.35 ± 1.02 1.77 ± 0.57 0.030 0.864
      与实验前比较,P < 0.05;不同时间点指标变化有趋势, *P < 0.05。
    下载: 导出CSV 
    | 显示表格

    经重复测量资料的方差分析:与对照组相比,试验组5 d内LVEF、TAPSE明显升高,EDT、E/A峰更趋于正常化,差异有统计学意义(P < 0.05)。2组患者治疗5 d左室舒张末内径、左室收缩末内径较实验前稍缩小,差异无计学意义( P > 0.05)。试验组治疗后24 h、72 h、120 h时LVEF、TAPSE均较试验前明显增加,EDT、E/A峰较前趋于正常,差异有统计学意义( P < 0.05),见 表3

    表  3  2组患者不同时间点心脏彩超相关指标比较( $ \bar x \pm s $)
    Table  3.  Comparison of Echocardiography at different time points between two groups of patients ( $ \bar x \pm s $)
    指标 试验前 试验24 h 试验72 h 试验120 h F P
    左室射血分数(%)
     试验组 35.76 ± 4.54 42.54 ± 8.43 49.56 ± 8.92&△ 51.32 ± 8.76&△# 4.836 0.081
     对照组 36.32 ± 5.42 39.52 ± 4.32 45.72 ± 10.87 49.76 ± 10.42 0.681 0.417
    左室舒张末内经 (mm)
     试验组 68.32 ± 7.55 67.27 ± 7.12 65.28 ± 6.84 64.33 ± 7.62 8.095 0.009*
     对照组 68.47 ± 8.21 65.54 ± 7.36 66.78 ± 7.52 66.13 ± 7.01 0.013 0.911
    左室收缩末内经 (mm)
     试验组 59.77 ± 10.46 57.92 ± 11.34 57.38 ± +9.27 56.79 ± 11.66 8.707 0.007*
     对照组 59.67 ± 10.28 57.32 ± 10.39 56.48 ± 10.99 57.24 ± 10.31 0.287 0.594
    二尖瓣血流频谱E/A峰
     试验组 3.36 ± 0.52 0.92 ± 0.28 0.72 ± 0.32&△ 1.49 ± 0.34&△# 10.397 0.003*
     对照组 3.95 ± 0.58 1.32 ± 0.31 0.66 ± 0.23 1.01 ± 0.31 0.110 0.741
    E峰减速时间(ms)
     试验组 133.62 ± 25.32 169.47 ± 43.76 256.87 ± 80.92&△ 205.53 ± 86.54&△# 26.899 < 0.001 *
     对照组 129.53 ± 35.72 148.93 ± 69.42 289.06 ± 76.43 244.65 ± 73.52 0.555 0.458
    三尖瓣环收缩期偏移幅度(mm)
     试验组 11.33 ± 2.87 13.75 ± 5.42 15.87 ± 4.72&△ 16.89 ± 3.72&△# 10.542 0.002*
     对照组 12.17 ± 3.72 12.98 ± 3.92 13.37 ± 3.31 14.28 ± 3.09 1.173 0.283
      与试验前比较,P < 0.05;与试验后24 h比较, P < 0.05; 与试验后72 h比较, P < 0.05;不同时间点指标变化有趋势, *P < 0.05。
    下载: 导出CSV 
    | 显示表格

    经重复测量资料的方差分析:与对照组相比,试验组SVI、CFI均有明显升高,SVRI明显下降,差异有统计学意义(P < 0.05)。试验组治疗24 h、72 h、120 h与治疗前相比SVI、CFI、GEDI均有所升高,SVRI下降,差异有统计学意义( P < 0.05)。试验组和对照组间GEDI差异无统计学意义( P > 0.05),见 表4

    表  4  2组患者不同时间点血流动力学相关指标比较( $ \bar x \pm s $)
    Table  4.  Comparison of hemodynamic related parameters between two groups of patients at different time points ( $ \bar x \pm s $)
    指标 试验前 试验24 h 试验72 h 试验120 h F P
    每搏量指数(mL/m2
     试验组 34.20 ± 9.87 38.32 ± 11.77 44.81 ± 10.62&△ 52.45 ± 9.42&△# 29.843 < 0.001 *
     对照组 35.61 ± 13.33 36.67 ± 11.24 40.12 ± 10.74 45.32 ± 9.38 0.107 0.745
    外周血管阻力指数(dyn*s*cm−5*m2
     试验组 2632.4 ± 314.3 2457.64 ± 367.3 1989.4 ± 344.7&△ 1682.7 ± 276.5&△# 131.768 < 0.001 *
     对照组 2790.6 ± 267.7 2637.2 ± 268.3 2293.2 ± 275.7 1983.2 ± 256.2 0.121 0.742
    全心舒张末容积指数(mL/m2
     试验组 945.2 ± 203.6 908.9 ± 197.3 809.3 ± 184.9&△ 779.6 ± 191.7&△# 78.608 < 0.001 *
     对照组 949.3 ± 233.5 891.7 ± 186.3 822.2 ± 191.4 793.6 ± 205.2 4.937 0.071
    心功能指数(L/min·m2
     试验组 3.21 ± 0.56 3.87 ± 0.71 4.94 ± 0.85&△ 5.32 ± 0.78&△# 9.095 0.005*
     对照组 3.17 ± 0.47 3 .54 ± 0.72 4.58 ± 0.88 4.91 ± 0.69 1.103 0.261
      与试验前比较,P < 0.05;与试验后24 h比较, P < 0.05; 与试验后72 h比较, P < 0.05;不同时间点指标变化有趋势, *P < 0.05
    下载: 导出CSV 
    | 显示表格

    试验组出现1例心动过速,为窦性心动过速,降低滴速后心率恢复至正常速率。

    脓毒症发生率高,全球每年有超过1800万严重脓毒症病例[11],并且每年脓毒症患者上升速度为1.5%~8.0%[12]。脓毒症治疗花费高,医疗资源消耗大,严重影响人类的生活质量,已经对人类健康造成巨大威胁[13]。脓毒症合并心肌抑制严重程度与脓毒症死亡率呈明显正相关。脓毒症性心肌抑制临床表现并无特异性,仅表现为心肌酶谱升高,心肌收缩功能减弱,射血分数降低,对容量负荷反应差等临床症状[14]。且有研究表明既往没有心脏疾病的脓毒症及脓毒性休克患者更容易导致脓毒性心肌病[15]。有研究证实了脓毒症可引起心肌损伤,主要特点表现为心肌对容量负荷收缩反应减弱,心肌收缩功能、收缩峰值压力/收缩末期容积比值及左室射血分数下降[16]。虽然有研究表明脓毒性心肌病在脓毒症得到有效控制后, 通常5~7 d可自行缓解。但部分脓毒症患者在出现脓毒性心肌病后,由于心脏功能严重受损或难以纠正的休克及恶性心脏事件发生,从而导致脓毒性心肌病病死率高达70%。

    cTn是由3种不同基因的亚基组成:心肌肌钙蛋白T(calcitonin-t,cTnT)、心肌肌钙蛋白I(cTn I)和肌钙蛋白C(calcitonin-c,TnC),是诊断心肌损伤的主要指标之一[17]。来源于心室的BNP是诊断心衰的主要指标[18-19]。2016年脓毒症国际指南指出诊断脓毒性心肌病主要是在脓毒症的基础上结合cTnI、BNP等指标进行临床诊断[20]。此次研究着眼于脓毒症患者心肌损伤标记物cTnI和BNP的水平变化来筛选研究对象,并进行治疗效果评价。

    经过临床对比观察,笔者的临床试验结果显示:诊断脓毒性心肌病的患者随着治疗的干预,对照组和试验组cTnI和BNP的水平均呈现一定程度的下降。通过临床治疗,患者心肌损伤得到有效控制。特别是使用心脉隆注射液的试验组患者在用药24 h后上述指标对比对照组患者,下降趋势明显。在观察终点 (120 h)时,指标较对照组下降幅度显著。不难看出心脉隆注射液在逆转脓毒性心肌损伤方面有显著的效果。

    另外,临床用于判断脓毒性心肌病发生的临床指标之一为左室收缩功能下降[21]。有研究表明脓毒性心肌病表现为心室扩大或伴不同程度舒张功能障碍、射血分数降低。本次研究的36例患者中,纳入初期均出现不同程度射血分数降低,三尖瓣环收缩期偏移幅度明显降低,提示双心室收缩功能障碍。脉隆治疗组患者,在治疗后24 h反应心脏收缩功能的左室射血分数、二尖瓣血流频谱E/A峰、E峰减速时间等指标均有一定程度改善;但室舒张末内径、左室收缩末内径变化暂未显示统计学差异。进行标准化治疗的对照组患者上述指标改善不如试验组明显。进一步提示,心脉隆注射液在改善左心收缩功能方面具有明显临床效果。

    本研究同时利用PICCO观察CFI、SVI、GEDI、SVRI,可以全面地评估脓毒症心肌病患者心脏功能及前后负荷变化情况。研究中,脓毒性心肌病患者SVI、CFI明显降低,提示心脏收缩功能障碍,GEDI、SVRI升高,提示前后负荷增加。试验组患者较对照组患者,在治疗后各个时间点明显表现出SVI、CFI升高和GEDI、SVRI下降。2组患者治疗前后前负荷均有所降低,心脉隆组患者下降更为明显,推测是心脉隆使心脏收缩功能增强有关。

    综上所述,在脓毒性休克诊疗规范治疗的基础上加用心脉隆注射液能有效降低脓毒性心肌病患者的BNP、cTnI水平,可以逆转心肌损伤并且改善心脏收缩功能,降低心脏前后负荷,对脓毒性心肌病有明显治疗作用。但由于本次试验样本量有限,且为单中心、小样本单盲研究,在研究过程中有1名患者发生心动过速,对于心脉隆注射液的用药安全性、能否改善脓毒症患者预后还需大规模临床试验考证。

  • 图  1  miR-196b和ERG在肺腺癌中的表达情况

    A:通过TCGA数据库预测miR-196b在正常组织和肺腺癌组织中的表达,绿框图表示正常样本(n = 46),红框图表示肿瘤样本(n = 521);B:肺腺癌患者miR-196b表达水平与总生存率的K-M分析,红色表示高表达组,蓝色表示低表达组;C:通过TCGA数据库预测正常组织和肺腺癌组织中ERG的表达,绿框图表示正常样本(n = 59),红框图表示肿瘤样本(n = 535)。

    Figure  1.  Expression of miR-196b and ERG in lung adenocarcinoma

    图  2  miR-196b在肺腺癌细胞中的表达情况

    与BEAS-2B组比较,*P < 0.05。

    Figure  2.  Expression of miR-196b in lung adenocarcinoma cells

    图  3  miR-196b可影响肺腺癌细胞的增殖、迁移和侵袭

    A:qRT-PCR检测过表达或敲低miR-196b后细胞的转染效率;B:MTT法检测过表达或敲低miR-196b后细胞的增殖能力;C:划痕愈合实验检测过表达或敲低miR-196b后细胞的迁移能力;D:Transwell实验检测过表达或敲低miR-196b后细胞的迁移和侵袭能力(100×)。与NC组比较,*P < 0.05。

    Figure  3.  miR-196b can affect the proliferation,migration and invasion of lung adenocarcinoma cells

    图  4  miR-196b的靶点检测及不同处理组细胞中ERG 的表达情况

    A:通过TargetScan数据库预测miR-196b和ERG的靶向结合位点;B:双荧光素酶法检测miR-196b与ERG的靶向结合关系;C:采用qRT-PCR和Western blot检测各细胞系中ERG mRNA和蛋白的表达;D:采用qRT-PCR和Western blot检测不同处理组ERG mRNA和蛋白的表达。与NC组或BEAS-2B组做比较,*P < 0.05。

    Figure  4.  Target detection of miR-196b and expression of ERG in cells of different treatment groups

    图  5  miR-196b能靶向下调ERG促进肺腺癌细胞的增殖、迁移和侵袭能力

    A:采用qRT-PCR和Western blot检测不同处理组大鼠ERG mRNA和蛋白的表达;B:MTT实验检测不同处理组的细胞增殖能力;C:划痕愈合实验检测不同处理组细胞迁移能力;D:Transwell实验检测不同处理组细胞的迁移和侵袭能力(100×)。NC-mimic、NC-inhibitor、oe-NC和si-NC分别表示miR-196b过表达、miR-196b沉默、ERG过表达和ERG沉默对照组,miR-mimic和miR-inhibitor分别表示miR-196b过表达和沉默组,oe-ERG和si-ERG分别表示ERG过表达组和沉默组;miR-mimic/inhibitor + oe/si-NC与NC组比较,miR-mimic/inhibitor + oe/si-NC组与miR-mimic/inhibitor + oe/si-ERG组比较,*P < 0.05,。

    Figure  5.  miR-196b can target down regulate ERG to promote the proliferation,migration and invasion of lung adenocarcinoma cells

    表  1  研究使用的细胞系及培养基

    Table  1.   Cell lines and media used in the study

    细胞系 编号 培养基
    BEAS-2B BNCC338205 DMEM-H
    PC-9 BNCC340767
    HCC-78 BNCC338064 RPMI-1640
    H1395 BNCC255519
    Calu-3 BNCC338514
    下载: 导出CSV

    表  2  引物序列表

    Table  2.   Primer Sequence Table

    基因 引物序列(5′→ 3′)
    miR-196b Forward primer: GTACCACTTTATCCCGTTCACCA
    Reverse primer:ATCTCGAGGCAGGGAGAGAGGAATAA
    U6 Forward primer: GCCCATCTTGACCCGAAT
    Reverse primer: AACGCTTCACGAATTTGCGT
    ERG Forward primer:GAGTGGGCGGTGAAAGAATA
    Reverse primer: GGAGATGTGAGAGAAGAGTG
    GAPDH Forward primer:CTCCTCCTGTTCGACAGTCAGC
    Reverse primer:CCCAATACGACCAAATCCGTT
    下载: 导出CSV
  • [1] Luo C,Lei M,Zhang Y,et al. Systematic construction and validation of an immune prognostic model for lung adenocarcinoma[J]. J Cell Mol Med,2020,24(2):1233-1244. doi: 10.1111/jcmm.14719
    [2] Seguin L,Durandy M,Feral C C. Lung adenocarcinoma tumor origin: A Guide for personalized medicine[J]. Cancers (Basel),2022,14(7):1759. doi: 10.3390/cancers14071759
    [3] Siegel R L,Miller K D,Jemal A. Cancer statistics,2016[J]. CA Cancer J Clin,2016,66(1):7-30. doi: 10.3322/caac.21332
    [4] Guo T,Li J,Zhang L,et al. Multidimensional communication of microRNAs and long non-coding RNAs in lung cancer[J]. J Cancer Res Clin Oncol,2019,145(1):31-48. doi: 10.1007/s00432-018-2767-5
    [5] Xin H,Wang C,Chi Y,et al. MicroRNA-196b-5p promotes malignant progression of colorectal cancer by targeting ING5[J]. Cancer Cell Int,2020,20:119. doi: 10.1186/s12935-020-01200-3
    [6] Shao L,Chen Z,Peng D,et al. Methylation of the HOXA10 promoter directs miR-196b-5p-dependent cell proliferation and invasion of gastric cancer cells[J]. Mol Cancer Res,2018,16(4):696-706. doi: 10.1158/1541-7786.MCR-17-0655
    [7] Chen L,Tang H,Liu G,et al. MicroRNA-196b promotes gastric cancer progression by targeting ECRG4[J]. Anticancer Drugs,2021,32(2):127-137. doi: 10.1097/CAD.0000000000000998
    [8] Wu X, Wu G, Zhang H, et al. MiR-196b promotes the invasion and migration of lung adenocarcinoma cells by targeting AQP4 [J]. Technol Cancer Res Treat, 2021, 20: 1533033820985868.
    [9] Xu Q,Xu Z. miR-196b-5p promotes proliferation,migration and invasion of lung adenocarcinoma cells via targeting RSPO2[J]. Cancer Manag Res,2020,12:13393-13402. doi: 10.2147/CMAR.S274171
    [10] Li H,Feng C,Shi S. miR-196b promotes lung cancer cell migration and invasion through the targeting of GATA6[J]. Oncol Lett,2018,16(1):247-252.
    [11] Tharakan B,Hunter F A,Muthusamy S,et al. ETS-related gene activation preserves adherens junctions and permeability in microvascular endothelial cells[J]. Shock,2022,57(2):309-315. doi: 10.1097/SHK.0000000000001899
    [12] Khosh Kish E,Choudhry M,Gamallat Y,et al. The expression of proto-oncogene ETS-related gene (ERG) plays a central role in the oncogenic mechanism involved in the development and progression of prostate cancer[J]. Int J Mol Sci,2022,23(9):4772. doi: 10.3390/ijms23094772
    [13] Lorenzoni M,De Felice D,Beccaceci G,et al. ETS-related gene (ERG) undermines genome stability in mouse prostate progenitors via Gsk3beta dependent Nkx3.1 degradation[J]. Cancer Lett,2022,534:215612. doi: 10.1016/j.canlet.2022.215612
    [14] He Y,Tao W,Shang C,et al. Xeroderma pigmentosum group D suppresses proliferation and promotes apoptosis of HepG2 cells by downregulating ERG expression via the PPARgamma pathway[J]. Int J Exp Pathol,2021,102(3):157-162. doi: 10.1111/iep.12396
    [15] Robinson M D,McCarthy D J,Smyth G K. edgeR: A Bioconductor package for differential expression analysis of digital gene expression data[J]. Bioinformatics,2010,26(1):139-140. doi: 10.1093/bioinformatics/btp616
    [16] Zhang B,Chen M,Jiang N,et al. A regulatory circuit of circ-MTO1/miR-17/QKI-5 inhibits the proliferation of lung adenocarcinoma[J]. Cancer Biol Ther,2019,20(8):1127-1135. doi: 10.1080/15384047.2019.1598762
    [17] Sheng K,Lu J,Zhao H. ELK1-induced upregulation of lncRNA HOXA10-AS promotes lung adenocarcinoma progression by increasing Wnt/beta-catenin signaling[J]. Biochem Biophys Res Commun,2018,501(3):612-618. doi: 10.1016/j.bbrc.2018.04.224
    [18] 宋家美,刘洋,史涛,等. DATS调控VEGF信号轴改善URSA小鼠胎盘血管的形成[J]. 昆明医科大学学报.,2023,44(5):6-11.
    [19] 徐冬杏,唐波,朱国,等. Twist1调控Bmi1对胆囊癌细胞侵袭迁移的影响及其机制研究[J]. 昆明医科大学学报,2023,44(3):28-33.
    [20] Wei K,Ma Z,Yang F,et al. M2 macrophage-derived exosomes promote lung adenocarcinoma progression by delivering miR-942[J]. Cancer Lett,2022,526:205-216. doi: 10.1016/j.canlet.2021.10.045
    [21] Xiong Y,Feng Y,Zhao J,et al. TFAP2A potentiates lung adenocarcinoma metastasis by a novel miR-16 family/TFAP2A/PSG9/TGF-beta signaling pathway[J]. Cell Death Dis,2021,12(4):352. doi: 10.1038/s41419-021-03606-x
    [22] Lu J,Lin J,Zhou Y,et al. MiR-328-3p inhibits lung adenocarcinoma-genesis by downregulation PYCR1[J]. Biochem Biophys Res Commun,2021,550:99-106. doi: 10.1016/j.bbrc.2021.02.029
    [23] Zhang J,Yang W,Xiao Y,et al. MiR-125b inhibits cell proliferation and induces apoptosis in human colon cancer SW480 cells via targeting STAT3[J]. Recent Pat Anticancer Drug Discov,2022,17(2):187-194. doi: 10.2174/1574892816666210708165037
    [24] Angeles AK,Heckmann D,Flosdorf N,et al. The ERG-regulated LINC00920 promotes prostate cancer cell survival via the 14-3-3epsilon-FOXO pathway[J]. Mol Cancer Res,2020,18(10):1545-1559. doi: 10.1158/1541-7786.MCR-20-0021
    [25] Smolarz B,Durczynski A,Romanowicz H,et al. miRNAs in cancer (review of literature)[J]. Int J Mol Sci,2022,23(5):2805. doi: 10.3390/ijms23052805
    [26] Singh A P,Luo H,Matur M,et al. A coordinated function of lncRNA HOTTIP and miRNA-196b underpinning leukemogenesis by targeting FAS signaling[J]. Oncogene,2022,41(5):718-731. doi: 10.1038/s41388-021-02127-3
    [27] Dioguardi M,Cantore S,Sovereto D,et al. Potential role of miR-196a and miR-196b as prognostic biomarkers of survival in head and neck squamous cell carcinoma: A systematic review,meta-analysis and trial sequential analysis[J]. Life (Basel),2022,12(8):1269. doi: 10.3390/life12081269
    [28] Adamo P,Ladomery M R. The oncogene ERG: A key factor in prostate cancer[J]. Oncogene,2016,35(4):403-414. doi: 10.1038/onc.2015.109
    [29] Kulda V,Topolcan O,Kucera R,et al. Prognostic significance of TMPRSS2-ERG fusion gene in prostate cancer[J]. Anticancer Res,2016,36(9):4787-4793. doi: 10.21873/anticanres.11037
    [30] Hagglof C,Hammarsten P,Stromvall K,et al. TMPRSS2-ERG expression predicts prostate cancer survival and associates with stromal biomarkers[J]. PLoS One,2014,9(2):e86824. doi: 10.1371/journal.pone.0086824
    [31] Wei Y,Peng J,He S,et al. miR-223-5p targeting ERG inhibits prostate cancer cell proliferation and migration[J]. J Cancer,2020,11(15):4453-4463. doi: 10.7150/jca.44441
    [32] Moh-Moh-Aung A,Fujisawa M,Ito S,et al. Decreased miR-200b-3p in cancer cells leads to angiogenesis in HCC by enhancing endothelial ERG expression[J]. Sci Rep,2020,10(1):10418. doi: 10.1038/s41598-020-67425-4
    [33] Yue C,Ma H,Zhou Y. Identification of prognostic gene signature associated with microenvironment of lung adenocarcinoma[J]. PeerJ,2019,7:e8128. doi: 10.7717/peerj.8128
    [34] Tang Q,Chen J,Di Z,et al. TM4SF1 promotes EMT and cancer stemness via the Wnt/beta-catenin/SOX2 pathway in colorectal cancer[J]. J Exp Clin Cancer Res,2020,39(1):232. doi: 10.1186/s13046-020-01690-z
    [35] Gao C,Yao H,Liu H,et al. TM4SF1 is a potential target for anti-invasion and metastasis in ovarian cancer[J]. BMC Cancer,2019,19(1):237. doi: 10.1186/s12885-019-5417-7
    [36] Peng X C,Zeng Z,Huang Y N,et al. Clinical significance of TM4SF1 as a tumor suppressor gene in gastric cancer[J]. Cancer Med,2018,7(6):2592-2600. doi: 10.1002/cam4.1494
  • [1] 严怡然, 沈成万, 尚香玉, 冯婵, 李金秋, 阿仙姑·哈斯木.  高良姜素通过影响Hippo/YAP通路抑制宫颈癌Hela细胞迁移和侵袭, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20250105
    [2] 周锟, 刘亚丽, 李自良, 钱丽萍, 冉丽权, 任娅岚.  miR-34a对人牙周膜干细胞增殖和成骨分化的影响, 昆明医科大学学报.
    [3] 刘卓慧, 覃诗茵, 赵鹤翔, 贾峰峰, 阮标, 龙瑞清.  藏红花素通过IRF7/NF-κB信号通路对垂体腺瘤的抑制作用, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20241203
    [4] 秦祥川, 李金秋, 黄晓婧, 忽吐比丁·库尔班, 阿仙姑·哈斯木.  HPV E6通过Rap1信号通路影响宫颈癌细胞增殖、侵袭及迁移的研究, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20240902
    [5] 胡滔, 吴怡, 耿文达, 章意坚, 贺瑄, 李珊珊, 习杨彦彬, 邓丽玲.  自主运动训练通过调节Caspase-3的活性抑制人BRCA1突变乳腺癌的增殖与生长, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20230419
    [6] 张梁, 王保全, 雷喜锋, 王旭, 柯阳, 张玮.  miR-29c-3p/IGF1分子轴对肝星状细胞活化,增殖和凋亡的作用机制, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20230926
    [7] 马诗淇, 丁毅, 李敏, 王梦慈, 张思宇, 冯树梅.  LINC00341通过MAPK通路抑制肺腺癌细胞增殖, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20230403
    [8] 张黎, 王清岑, 周罗慧, 杨娟, 王红.  木犀草素通过调控内质网应激抑制平滑肌细胞的迁移, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20220518
    [9] 王保全, 张伟, 田园, 雷喜锋, 王旭.  miR-142-5p通过CCND1调控胆囊癌细胞的增殖和转移, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20220223
    [10] 张玮, 王保全, 雷喜锋, 王旭, 张梁.  miR-125b-5p调控HK2抑制胆囊癌细胞增殖和糖酵解, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20221206
    [11] 朱中山, 杨洲, 江承川, 李小兵, 任斗, 黄橙, 张维薇, 李湘军, 赵顺利.  肺腺癌患者PLA2G1B表达情况与预后的相关性, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20220912
    [12] 廖周俊, 杨少华, 刘立鑫, 胡晟, 陈轶晖, 康强, 张小文.  AK4对肝内胆管癌细胞HUCCT1增殖、迁移的影响, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20220611
    [13] 赵斌, 段元鹏, 张国颖, 毕城伟, 杨李波, 施致裕, 杨勇, 张建朋, 高婷.  CircRNA EZH2通过调控miR-30c-5p促进前列腺癌细胞增殖和迁移, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20220731
    [14] 杨兰, 贾霄, 姜奕彤, 崔琪, 刘光赐, 何颖红.  UBE2C基因沉默表达对人胃癌AGS细胞增殖和迁移的影响, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20210504
    [15] 吴琪燕, 边革元, 程绘珺, 李娇霞, 王书廷, 黄照略.  肺腺癌预后因素及血清肿瘤标记物的诊断效能, 昆明医科大学学报.
    [16] 庞月文, 巩会杰, 王玲, 时京, 段珺耀, 冯营营, 闫永吉.  老鹳草素对去势抵抗性前列腺癌细胞增殖与迁移能力的影响, 昆明医科大学学报.
    [17] 朱中山, 严文辉, 李小兵, 杨洲, 白鹏.  200例肺腺癌脑转移患者驱动基因突变情况及预后关系, 昆明医科大学学报.
    [18] 刘立鑫.  二甲双胍对肝癌细胞HCCLM3生物学行为的影响, 昆明医科大学学报.
    [19] 史兆坤.  单核细胞趋化蛋白-1趋化巨噬细胞迁移与侵袭的体外实验研究, 昆明医科大学学报.
    [20] 刘佳鑫.  SDF-1/CXCR4在恶性胶质瘤细胞体外增殖、迁移及侵袭中的作用, 昆明医科大学学报.
  • 期刊类型引用(2)

    1. 张文鑫,袁玉丰,张强. 基于“方证对应”理论辨治脓毒症心肌损伤的研究进展. 中国中医急症. 2024(02): 369-372 . 百度学术
    2. 吴广平,尹鑫,何健卓,郭力恒. 心脉隆注射液对脓毒症休克患者微循环的影响. 实用医学杂志. 2024(05): 627-631 . 百度学术

    其他类型引用(0)

  • 加载中
图(5) / 表(2)
计量
  • 文章访问数:  2553
  • HTML全文浏览量:  1105
  • PDF下载量:  17
  • 被引次数: 2
出版历程
  • 收稿日期:  2023-06-26
  • 刊出日期:  2023-10-25

目录

/

返回文章
返回