Interventional Effect and Mechanism of Saikosaponin A on Noise-induced Tinnitus in Mice
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摘要:
目的 探究柴胡皂苷A对噪音诱发耳鸣（Tinnitus）小鼠模型的干预作用及机制。 方法 将50只小鼠随机分为对照组（Control组）、噪音诱发耳鸣小鼠模型组（BBN组）、BBN组基础上分别灌胃10 mg/kg、20 mg/kg、40 mg/kg柴胡皂苷A（SSA）的SSA-L组、SSA-M组和SSA-H组，每组10只。检测小鼠耳鸣行为；通过旷场实验、高架十字迷宫实验和强迫游泳实验评估小鼠的抑郁样行为；ABR阈值测定小鼠听力；RT-qPCR和Western blot检测小鼠听觉皮层中IL-6、TNF-α、IL-1β mRNA和蛋白表达。 结果 和Control组相比，BBN组小鼠在噪声暴露2 h后3 d、14 d和28 d时GPIAS%值降低（P < 0.05）；和BBN组相比，SSA-L组、SSA-M组和SSA-H组小鼠在噪声暴露2 h后3 d、14 d和28 d时GPIAS%值升高，且呈剂量依赖（ P < 0.05）。和Control组相比，BBN组小鼠进入中央区时间和距离、进入开放臂次数和时间均减少，不动时间及Click和8、16、32 kHz声刺激下ABR阈值均升高（ P < 0.05）；和BBN组相比，SSA-L组、SSA-M组和SSA-H组小鼠进入中央区时间和距离、进入开放臂次数和时间均增加，不动时间及Click和8、16、32 kHz声刺激下ABR阈值均降低（ P < 0.05）。和Control组相比，BBN组小鼠听觉皮层中IL-6、TNF-α、IL-1β mRNA和蛋白表达均升高（ P < 0.05）；和BBN组相比，SSA-L组、SSA-M组和SSA-H组小鼠听觉皮层中IL-6、TNF-α、IL-1β mRNA和蛋白表达均降低（ P < 0.05）。 结论 柴胡皂苷A可改善噪声诱导耳鸣小鼠抑郁行为和听力，其可能和抑制耳鸣小鼠听觉皮层炎症因子密切相关。 Abstract:Objective To investigate the intervention effect and mechanism of Saikosaponin A on noise-induced tinnitus in a mouse model. Methods Fifty mice were randomly divided into control group（Control group）, noise-induced tinnitus mouse model group（BBN group）, and SSA-L group, SSA-M group and SSA-H group based on BBN group with 10 mg/kg, 20 mg/kg and 40 mg/kg of Caihu saponin A by gavage, respectively, 10 mice in each group. The tinnitus behavior of mice was detected; the depression-like behavior of mice was assessed by the open field experiment, elevated cross-maze experiment and forced swimming experiment; the hearing of mice was measured by ABR threshold; and IL-6, TNF-α, IL-1β mRNA and protein expression in the auditory cortex of mice were detected by RT-qPCR and Western blotting. Results Compared with the Control group, mice in the BBN group had significantly lower GPIAS% values at 3 d, 14 d and 28 d after 2 h of noise exposure（P < 0.05）; compared with the BBN group, mice in the SSA-L, SSA-M and SSA-H groups had significantly higher GPIAS% values at 3 d, 14 d and 28 d after 2 h of noise exposure in a dose-dependent manner（ P < 0.05）. Compared with the Control group, mice in the BBN group had significantly reduced time and distance to the central zone, number and time to the open arm, and significantly higher immobility time and ABR thresholds under Click and 8, 16 and 32 kHz acoustic stimulation（ P < 0.05）; compared with the BBN group, mice in the SSA-L, SSA-M and SSA-H groups had significantly higher time and distance to the central zone, and The number and time of entering the open arm were significantly increased, and the immobility time and Click and ABR thresholds under 8, 16 and 32 kHz acoustic stimulation were significantly decreased（ P < 0.05）. Compared with the Control group, IL-6, TNF-α, IL-1β mRNA and protein expression were significantly increased in the auditory cortex of mice in the BBN group（ P < 0.05）; compared with the BBN group, IL-6, TNF-α, IL-1β mRNA and protein expression were significantly decreased in the auditory cortex of mice in the SSA-L, SSA-M and SSA-H groups（ P < 0.05）. Conclusion Saikosaponin A can improve depressive behavior and hearing in noise-induced tinnitus mice, which may be closely related to the inhibition of inflammatory factors in the auditory cortex of tinnitus mice. -
Key words:
- Saikosaponin A /
- Tinnitus /
- Depressive behavior /
- Inflammatory response
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草乌甲素（Bulleyaconitine A，C35H49NO10）是从滇西特有乌头属药用植物滇西嘟啦（Aconitum L.bulleyanum Diels）中分离出来的生物碱，见图1 A。具有抗炎、镇痛及免疫调节作用，是1种活性极强的镇痛[1-10]、抗炎[11-18]的现代植物药。临床应用的草乌甲素制剂有片剂、胶囊剂、注射剂[7，19]，草乌甲素剂量小、药效强，但是口服后胃肠不良反应较大，肝脏首过效应强，注射剂使用时注射部位长时间剧烈疼痛，透皮贴剂是其比较理想的给药剂型。首先，透皮贴剂可以维持相当平稳的血药浓度，显著减少副反应的发生率，并可在副反应发生时及时中断给药，大大提高患者用药的安全性；其次，透皮贴剂可有效避免首过效应，提高治疗效果；再者，透皮贴剂可以维持长时间释药，减少用药次数，特别适合于类风湿性关节炎等慢性疾病的治疗。另外，草乌甲素针对的疾病多为身体局部疼痛，而透皮给药[20-23]可以作为局部给药方式，使药物直达患处，避免全身给药带来的毒副作用。
本试验选择日本大耳白兔作为在体透皮试验动物，通过破损皮肤模拟临床外伤的皮肤状态、病理损伤模拟临床扭伤等内伤的生理状态，进行正常家兔正常皮肤、正常家兔破损皮肤、病理损伤正常皮肤、病理损伤破损皮肤在体透皮试验，对4种不同皮肤屏障模型家兔应用草乌甲素凝胶贴的药代动力学进行考察，比较不同皮肤屏障环境用药后透皮吸收的差异，全面准确评价不同皮肤、生理状态下草乌甲素凝胶贴的应用，为后期草乌甲素凝胶贴的继续开发应用提供非临床药代数据支持。为经皮给药制剂药理药效试验设计和安全性评价皮肤刺激性试验进行不同模型动物选择比较提供参考。
1. 材料与方法
1.1 实验材料
1.1.1 实验仪器
Agilent 1200SL液相色谱仪（美国Agilent公司）；API
3200 Q-Trap 三重四级杆串联质谱（美国AB公司）；Analyst 1.5工作站；十万分之一分析天平（美国 Ohaus公司）；Allegra 64R高速冷冻台式离心机（美国Backman公司）；XW-80A涡旋混合器（上海精科实业有限公司）；MD200氮吹仪（杭州奥盛仪器有限公司）；宠物用电推剪（上海CODOS KP-3000 ）。1.1.2 试药试剂
草乌甲素凝胶贴（规格：4 mg/片，规格为6.5 cm×10.0 cm，云南省药物研究所，批号：20150619）；草乌甲素对照品（见图1A，纯度≥98%，中国药品生物制品检定所，批号：100530-200501）；次乌头碱对照品（纯度≥98%，北京世纪奥科生物技术有限公司，批号：MUST-13011706），见图1B；醋酸铵（色谱纯，Adamas analysis reagent Co.，LTD，批号：22L11-C213）；甲醇（色谱纯，德国MERCK公司，批号：I584507-113）；甲酸（色谱纯，Adamas analysis reagent Co.，LTD，批号：10K11-F312）。薇婷脱毛膏（芦荟精华+维生素E）[利洁时家化（中国）有限公司]。
1.1.3 实验动物
普通级日本大耳白家兔24只，4种皮肤屏障模型，每组6只，雌雄各半，3～4月龄，2.1～2.8 kg，来源于昆明市艾尼莫实验动物养殖中心，许可证号：SCXK（滇）K2012-0002。本研究经云南白药集团创新研发中心动物实验伦理委员会审查批准[动（伦）IACUC-2018-32-2]。
1.2 研究方法
1.2.1 试剂配制
（1）草乌甲素储备液及工作液。精密称取草乌甲素样品5.78 mg，置于25 mL容量瓶中，加甲醇溶解后定容至刻度，摇匀，即得浓度为0.231 mg/mL的草乌甲素标准贮备液，2～8 ℃保存。使用时先取出放至室温。每日根据用量，用甲醇稀释至所需浓度，摇匀，即得草乌甲素标准工作液。
（2）内标储备液（次乌头碱）及工作液。 乌头碱样品4.86 mg，精密称定，置于50 mL容量瓶中，加异丙醇∶二氯甲烷=1∶1的混合溶剂溶解后定容至刻度，摇匀，即得浓度为
0.0972 mg/mL的次乌头碱内标贮备液，2～8 ℃保存。使用时先取出放至室温。用适宜量程的移液器吸取上述内标储备液125 µL至50 mL容量瓶中，加适量异丙醇：二氯甲烷=1∶1的混合溶剂稀释并定容至刻度，摇匀，即得浓度为243 ng/mL的次乌头碱内标工作液。1.2.2 LC-MS/MS检测条件
色谱条件： 色谱柱，Agilent poroshell SB-C18柱（50 mm×4.6 mm，2.7 µm）；流动相：10 mmol/L醋酸铵0.1%甲酸水溶液-甲醇（12：88，v/v）；流速：0.5 mL/min；柱温：20 ℃；进样量：5 µL。
质谱条件： ESI源，POS模式，MRM定量。草乌甲素 [M + H]+：m/z 644.4→584.3，次乌头碱 [M + H]+：m/z616.3→556.2。质谱参数：CUR：30.0，IS：
5500.0 ，TEM：600.00，GS1：60.00，GS2：60.00，ihe：ON，CAD：Medium，DP：72.0，EP：10.00。草乌甲素和次乌头碱的子离子扫描图，见图2。1.2.3 兔血浆样品处理测定方法
精密取200 µL兔血浆样品，精密加入内标工作液10 µL，旋涡混匀，加入1 mL乙酸乙酯，旋涡3 min，后以
4000 r/min离心10 min，吸取上清液600 µL，氮吹至干，残渣加甲醇100 µL溶解，15000 r/min离心10 min，取上清液至进样瓶中，5 µL进样。1.2.4 不同皮肤屏障环境家兔在体透皮试验
（1）正常家兔正常皮肤透皮试验设计。日本大耳白兔6只，雌雄各半，动物禁食不禁水约12 h后，称重，体重为2.16～2.87 kg，将其放置于试验台上，用宠物电推剪先将左后肢近臀部待试验区域被毛尽量剔除干净，剔除过程中应注意勿将兔皮肤划伤。之后用薇婷脱毛膏涂敷于剔毛后皮肤8 min，刮匙去除膏体，用大量温水将脱毛剂冲洗干净，再将草乌甲素凝胶贴1片贴敷在待试验区域。分别于给药前（0 h）和给药后1 h、2 h、3 h、4 h、5 h、6 h、8 h、10 h，于耳中央动脉取血约1.0 mL，分离血浆，-20 ℃保存。按“1.2.3兔血浆样品处理测定方法” 测定血药浓度。
（2）正常家兔破损皮肤透皮试验设计。日本大耳白兔6只，雌雄各半，动物禁食不禁水约12 h后，称重，体重为2.17～2.60 kg，将其放置于试验台上，用宠物电推剪先将左后肢近臀部待试验区域毛尽量剔除干净，剔除过程中应注意勿将兔皮肤划伤。将1号砂纸包裹在木棒上，然后在皮肤表面待试验区域轻轻摩擦2～3次，直至皮肤表面变为浅红即可。将草乌甲素凝胶贴1片贴敷在待试验区域。分别于给药前（0 h）和给药后1 h、2 h、3 h、4 h、5 h、6 h、8 h、10 h、12 h、24 h、36 h，于耳中央动脉取血约1.0 mL，分离血浆，-20 ℃保存。按“1.2.3兔血浆样品处理测定方法”测定血药浓度。
（3）病理损伤家兔正常皮肤透皮试验设计。对比家兔软组织物理挫伤-砝码自由落体挫伤法和化学损伤-50%甘油肌肉注射法，造模后通过病理切片、造模影响因素、操作重现性、动物福利等方面进行对比，最后选定50%甘油肌肉注射法进行软组织化学损伤，获得病理损伤模型，将甘油与生理盐水按体积比1∶1混合均匀制成50%甘油（V/V），家兔称重，按照1.25 mL/kg.bw计算所需注射量，将家兔固定于试验台上，在家兔左后肢近臀部软组织进行注射，注射结束后，每日观察家兔精神状态、注射部位皮肤表面有无破损、红斑等异常，造模后第4天若各动物均无异常即可用于透皮试验。
造模动物禁食不禁水约12 h后，称重，体重为2.44～2.83 kg，按“（1）正常家兔正常皮肤透皮试验设计”进行试验。
（4）病理损伤家兔破损皮肤透皮试验设计。选择日本大耳白兔6只，雌雄各半，于在体透皮试验前第4 d，按“（3）病理损伤家兔正常皮肤透皮试验设计”，对各家兔左后肢近臀部进行病理损伤造模，每日观察动物一般状况，造模后第4天若各动物均无异常，造模动物禁食不禁水约12 h后，称重，体重为2.12～2.66 kg，按“（2）正常家兔破损皮肤透皮试验设计”进行皮肤破损后，即可用于透皮试验。
1.3 统计学处理
4种皮肤屏障模型家兔草乌甲素血药浓度应用DAS 3.2.0实用药代计算程序进行药代参数计算。药代参数以均数±标准差（ $ \bar x \pm s $）表示，采用SPSS 23.0软件对药代参数进行统计分析，数据符合正态分布且组间方差齐的药代参数采用单因素方差分析，数据不符合正态分布或虽符合正态分布但组间方差不齐的药代参数采用非参数检验中独立样本“克鲁斯卡尔-沃利斯单因素ANOVA检验（k个样本）”，P < 0.05为差异有统计学意义。
2. 结果
2.1 方法学验证结果
2.1.1 特异性
本试验所建立的液质条件下，空白样品中杂质没有干扰，草乌甲素及内标次乌头碱峰形较好，两者保留时间分别为1.21 min和1.19 min，见图3。
图 3 专属性考察图A：空白兔血浆；B：草乌甲素-血浆加标；C：次乌头碱-血浆加标；D：草乌甲素-含药血浆。Figure 3. Investingation of method specificity2.1.2 基质效应
本实验针对低、中、高3个浓度，考察了空白兔血浆经提取后，内源性杂质对草乌甲素和内标次乌头碱的离子抑制情况。结果显示，草乌甲素兔血浆质控样品在
0.2050 、3.275、52.50 ng/mL 3个浓度下的基质效应（n = 6）分别为92.49%、94.92%、97.28%；内标次乌头碱基质效应（n = 6）分别为91.32%、94.55%、103.07%。结果表明，在本试验色谱条件下可忽略基质效应的影响。2.1.3 标准曲线和线性范围
以草乌甲素血浆药物浓度C（分别为
0.02550 、0.05100 、0.2050 、0.8200 、3.275、13.10、52.50 ng/mL）为横坐标，草乌甲素峰面积（Ab）和内标峰面积（Ah）比值为纵坐标Y，采用加权最小二乘法拟合，权重系数w=1/C2，正常家兔正常皮肤与病理损伤家兔正常皮肤回归方程为：Y=0.0397C+0.000957 （r2=0.9968 ），权重系数w=1/C2，药物浓度与峰面积间线性关系良好，线性范围为0.02550 ～52.50 ng/mL，最低定量限为0.02550 ng/mL（S/N>10）。2.1.4 精密度和准确度
制备浓度分别为
0.2050 、3.275、52.50 ng/mL的草乌甲素兔血浆质控样品，按“1.2.3兔血浆样品处理测定方法”项下操作，重复3 d，随行的标准曲线计算测定浓度，由实测浓度计算批内与批间精密度，每批实测浓度的平均值与理论浓度的比值为准确度，见表1。表 1 LC-MS/MS测定兔血浆中草乌甲素的精密度、准确度和回收率[（ $ \bar x \pm s$），n = 6]Table 1. Determination of precision，accuracy and recovery of Bulleyaconitin A in rabbit plasma by LC-MS/MS [（ $ \bar x \pm s $），n = 6]质控浓度
（ng/mL）日内（n=6） 日间（n=18） 回收率
（n=6）（%）（ng/mL） 精密度（%） 准确度（%） （ng/mL） 精密度（%） 准确度（%） 0.2050 0.2070 ±0.01000 4.83 100.98 0.2002 ±0.0179 8.94 97.66 81.74±1.67 3.275 3.024±0.266 8.80 92.34 3.086±0.255 8.26 94.23 82.11±2.88 52.50 50.98±2.45 4.80 97.10 54.39±4.14 7.61 103.60 87.21±2.55 2.1.5 提取回收率
制备浓度分别为
0.2050 、3.275、52.50 ng/mL的草乌甲素兔血浆质控样品，按“1.2.3兔血浆样品处理测定方法”项下操作，测定得草乌甲素与内标次乌头碱峰面积比值为PD有；精密移取200 μL空白兔血浆，不加目标物和内标，按“1.2.3兔血浆样品处理测定方法”项下操作提取后得到的含基质残渣，用浓度分别为
0.2460 、3.930、63.00 ng/mL的草乌甲素、14.58 ng/mL次乌头碱工作液复溶，测定得草乌甲素与内标次乌头碱峰面积比值为PA有。PD有和PA有的百分比即为提取回收率，见表1。2.1.6 稳定性
制备浓度分别为
0.2050 、3.275、52.50 ng/mL的草乌甲素兔血浆质控样品，考察兔血浆样品于室温放置24 h、2～8 ℃存放24 h、于-20 ℃放置5 d、于-20 ℃放置5 d冻融3次的稳定性；同时考察按“1.2.3 兔血浆样品处理测定方法”项下操作处理后样品在室温及2～8 ℃放置3 d的稳定性，以随行的标曲计算测定浓度与理论浓度比较。准确度低、中、高浓度质控均在（100±15）%范围内，结果表明在上述条件下草乌甲素稳定。2.2 病理损伤造模病理检查结果
物理挫伤和化学损伤造模后病理检查结果，镜下均可见程度不等的出血、肌纤维坏死，部分样本出现水肿、肉芽组织形成、瘢痕组织形成病变，说明病理损伤造模成功。但物理挫伤造模解剖时，偶见胸腔、腹腔均出血，肾脏、肝脏、脾脏均有一定损伤。造模效果不一致，且造模重复性差。化学损伤造模后形成的软组织病变类型和病变程度较一致，影响因素少，造模易成功，也更符合动物福利保护要求。因此，选定化学损伤-50%甘油肌肉注射法为本研究最适软组织病理损伤模型的造模方法，结果见图4、图5。
图 4 物理挫伤病理检查（×10）A：出血、肌纤维坏死；B：出血；C：出血、水肿、肌纤维坏死；D：肉芽组织、瘢痕形成。Figure 4. Pathological examination of physical contusion（×10）
图 5 化学损伤病理检查（×10）A：出血、肌纤维坏死；B：水肿、肌纤维坏死；C：肌纤维坏死、瘢痕形成；D：出血、肌纤维坏死、肉芽组织形成。Figure 5. Pathological examination of chemical damage（×10）2.3 4种皮肤模型家兔在体透皮吸收药代动力学结果
AUC（0-t）、AUC（0-∞）、Cmax 3个药代参数在4种皮肤屏障模型家兔的变化趋势一致，由大至小的顺序为：正常家兔破损皮肤>病理损伤破损皮肤>病理损伤正常皮肤>正常家兔正常皮肤；Tmax由大至小的顺序为：病理损伤破损皮肤>正常家兔正常皮肤>正常家兔破损皮肤>病理损伤正常皮肤；t1/2z由大至小的顺序为：病理损伤破损皮肤>正常家兔破损皮肤>正常家兔正常皮肤>病理损伤正常皮肤；CL由大至小的顺序为：正常家兔正常皮肤>病理损伤正常皮肤>正常家兔破损皮肤>病理损伤破损皮肤，药代参数结果见表2，不同模型家兔药时曲线，见图6。
表 2 4种不同皮肤模型家兔体内主要药动学参数[（ $ \bar x \pm s$），n = 6]Table 2. Main pharmacokinetic parameters of Bulleyaconitine A in rabbits with four different skin models [（ $ \bar x \pm s$），n = 6]参数 正常家兔正常皮肤 正常家兔破损皮肤 病理损伤正常皮肤 病理损伤破损皮肤 AUC（0-t）（μg/L·h） 2.199±2.204 25.117±16.462 2.682±1.834 20.834±11.167 AUC（0-∞）（μg/L·h） 3.215±4.099 25.637±16.244 3.059±1.934 21.553±10.376 Cmax（μg/L） 0.379±0.316 2.495±1.570 0.472±0.302 1.655±0.828 Tmax（h） 3.667±1.033 3.5±1.378 3.167±0.983 4.833±1.472 t1/2z（h） 3.573±2.725 9.533±10.476 3.071±0.885 13.244±22.289 CL（L/h） 3882.402 ±3555.427 362.47±446.772 1709.041 ±849.386251.724±192.713 
图 6 草乌甲素在4种不同皮肤模型家兔体内平均药-时曲线Figure 6. The average plasma concentration-time curves of Bulleyaconitine A in rabbits with four different skin models皮肤状态是影响草乌甲素吸收、消除的主要因素，角质层是限制吸收的主要屏障，皮肤正常或破损，只要状态一致，是否受内伤，对于草乌甲素家兔透皮给药的吸收和消除没有显著性影响，吸收程度、消除能力与皮肤状态紧密相关，皮肤受到损伤，草乌甲素的透过量大幅升高、消除能力显著降低，差异有统计学意义（P < 0.05），但消除速度却无明显影响，见 表3。
表 3 4种皮肤模型家兔体内主要药动学参数显著性差异统计结果Table 3. Statistical results of significant differences about main pharmacokinetic parameters in rabbits with four different skin models药动参数
显著性差异正常家兔正常皮肤-
正常家兔破损皮肤病理损伤正常皮肤-
病理损伤破损皮肤正常家兔正常皮肤-
病理损伤正常皮肤正常家兔破损皮肤-
病理损伤破损皮肤正常家兔正常皮肤-
病理损伤破损皮肤P[AUC（0-t）（μg/L·h）] <0.016* <0.003* <0.522 <0.609 <0.02* P[AUC（0-∞）（μg/L·h）] <0.010* <0.002* <0.522 <0.615 <0.02* P[Cmax（μg/L）] <0.025* <0.025* <0.522 <0.273 <0.016* P[Tmax（h）] <0.817 <0.044* <0.411 <0.136 <0.143 P[t1/2z（h）] <0.078 <0.055 <0.749 <0.337 <0.150 P[CL（L/h）] <0.010* <0.006* <0.522 <0.423 <0.006* *P < 0.05。 病理损伤模拟内伤生理状态，皮肤正常时，与正常家兔正常皮肤相比，草乌甲素的吸收程度稍大、吸收速度稍快、消除能力稍弱，但差异无统计学意义（P > 0.05）。当皮肤破损时，病理损伤模拟内伤生理状态，与正常家兔破损皮肤相比，草乌甲素的吸收程度稍小、吸收速度稍慢、消除能力稍弱，但差异无统计学意义（ P > 0.05），见 表3。
模拟外伤所致正常家兔破损皮肤、内外伤的病理损伤破损皮肤与正常家兔正常皮肤相比，草乌甲素吸收程度均大幅提高、消除能力明显降低，差异有统计学意义（P < 0.05），见 表3。提示外伤或内外伤状态下，可能导致草乌甲素在体内蓄积，影响用药安全，后期对草乌甲素透皮贴剂进行药理药效、药代及毒代研究时，应选用模拟外伤所致的破损皮肤或内外伤的病理损伤破损皮肤模型同时进行对比研究，以获得更加准确的评价结果。
3. 讨论
3.1 透皮吸收差异大
由检测结果可知，草乌甲素凝胶贴在4种不同皮肤屏障模型6只家兔组内血药浓度差异较大，推测产生差异的原因可能由于不同个体间皮肤角质层厚度或皮肤敏感程度不同，从而导致透过率差异。
3.2 局部组织浓度高
在实验中检测4种皮肤屏障模型家兔给药局部肌肉药物浓度，结果表明给药局部肌肉的药物浓度平均值的大小顺序：正常家兔破损皮肤>病理损伤破损皮肤>病理损伤正常皮肤>正常家兔正常皮肤，与上述4种皮肤屏障模型家兔所获AUC、Cmax平均值的变化趋势一致。4种皮肤屏障模型，均呈现给药局部贴膏正下方肌肉药物浓度>血药浓度>未贴膏部位肌肉组织药物浓度，说明贴膏正下方肌肉组织为药物经皮进入后的富集区，即当草乌甲素从凝胶贴中透皮吸收到达肌肉组织后，缓慢富集在贴膏正下方的肌肉组织中，从而为发挥局部治疗作用提供药效物质基础。由此可解释为何外用制剂临床经皮肤给药后，血浆中常常测不到药物，但是药物依然能在给药局部发挥药效作用的原因，提示在外用制剂药物浓度检测或药效物质基础研究时可考虑采用实验动物给药局部肌肉组织进行检测。
3.3 正常-病理模型对照
有学者进行正常与病理状态大鼠灌胃给药后药代动力学对比研究表明[24-29]，病理状态会引起体内环境的变化，对药物的吸收和代谢均会产生影响，使正常与病理状态药动学参数存在较大差异，有必要进行正常与病理模型实验动物对比研究，助于临床精准治疗。本研究进行家兔经皮给药结果表明皮肤或肌肉状态不同，草乌甲素的透皮吸收药动参数差异较大，建议后期进行经皮给药制剂试验研究时，应根据药物特性、药理作用特点同时选择试验动物正常皮肤和破损皮肤，甚至药物关联的药理作用及适应症的病理损伤模型的破损和（或）正常皮肤进行对比研究，将有助于全面准确地评价经皮给药制剂作用特点和安全性。
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图 2 各组小鼠进入中央区时间和进入中央区距离比较
A：小鼠运动活动的代表性痕迹；B：小鼠进入中央区时间比较；C：小鼠进入中央区距离比较。与Control组相比，*P < 0.05；与BBN组相比，#P < 0.05；与SSA-L组相比，△P < 0.05；与SSA-M组相比，☆P < 0.05。
Figure 2. Comparison of the time and distance of mice entering the central region in each group
图 3 各组小鼠进入开放臂次数及进入开放臂的时间比较
A：小鼠迷宫架行为记录；B：小鼠进入开放臂次数比较；C：小鼠进入开放臂时间比较。与Control组相比，*P < 0.05；与BBN组相比，#P < 0.05；与SSA-L组相比，△P < 0.05；与SSA-M组相比，☆P < 0.05。
Figure 3. Comparison of the number of times and time of mice entering the open arm in each group
图 4 各组小鼠强迫游泳实验不动时间比较
A：小鼠强迫游泳实验装置示意图；B：小鼠不动时间比较。与Control组相比，*P < 0.05；与BBN组相比，#P < 0.05；与SSA-L组相比，△P < 0.05；与SSA-M组相比，☆P < 0.05。
Figure 4. Comparison of immobility time in forced swimming experiments of mice in each group
图 5 各组小鼠在Click和8、16、32 kHz声刺激下ABR阈值改变
A：小鼠8、16、32 kHz声刺激下ABR阈值改；B：小鼠Click声刺激下ABR阈值改变。与Control组相比，*P < 0.05；与BBN组相比，#P < 0.05；与SSA-L组相比，△P < 0.05；与SSA-M组相比，☆P < 0.05。
Figure 5. Changes in ABR threshold of mice in each group under Click and 8，16，and 32 kHz sound stimulation
图 6 各组小鼠听觉皮层中IL-6、TNF-α和IL-1β mRNA表达比较
A：小鼠听觉皮层中IL-6 mRNA表达比较；B：小鼠听觉皮层中TNF-α mRNA表达比较；C：小鼠听觉皮层中IL-1β mRNA表达比较。与Control组相比，*P < 0.05；与BBN组相比，#P < 0.05；与SSA-L组相比，△P < 0.05；与SSA-M组相比，☆P < 0.05。
Figure 6. IL-6 and TNF in the auditory cortex of mice in each group- α And IL-1 β MRNA expression comparison
图 7 各组小鼠听觉皮层中IL-6、TNF-α、IL-1β蛋白表达比较
A：各组小鼠IL-6、TNF-α和IL-1β蛋白电泳图；B：小鼠听觉皮层中IL-6蛋白表达比较；C：小鼠听觉皮层中TNF-α蛋白表达比较；D：小鼠听觉皮层中IL-1β蛋白表达比较。与Control组相比，*P < 0.05；与BBN组相比，#P < 0.05；与SSA-L组相比，△P < 0.05；与SSA-M组相比，☆P < 0.05。
Figure 7. IL-6 and TNF in the auditory cortex of mice in each group- α、 IL-1 β Comparison of protein expression
表 1 引物序列
Table 1. Primer sequence
基因 引物序列 扩增长度 IL-6 F：5'-ATTGTATGAACAGCGATGATGCAC-3' 400 bp R：5'-CCAGGTAGAAACGGAACTCCAGA-3' TNF-α F：5'-TCAGTTCCATGGCCCAGAC-3' 150 bp R：5'-GTTGTCTTTGAGATCCATGCCATT-3' IL-1β F：5'-CCAGCTGGAGAGTGGATCC-3' 300 bp R：5'-AGCTGTCGGAGATTCGTAGC-3' GAPDH F：5'-GGCACAGTCAAGGCTGAGAATG-3' 150 bp R：5'-ATGGTGGTGAAGACGCCAGTA-3' 
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表 2 各组小鼠噪声暴露2 h后不同时间节点中GPIAS%值比较（ $ \bar x \pm s $，n = 10）
Table 2. Comparison of GPIAS% values at different time points after 2-hour noise exposure in each group of mice（ $ \bar x \pm s $，n = 10）
组别 3 d 14 d 28 d Control组 28.69 ± 2.31 37.58 ± 3.15 40.31 ± 3.20 BBN组 19.34 ± 1.52 18.17 ± 1.28 17.23 ± 1.35 SSA-L组 21.53 ± 1.45▲# 22.62 ± 1.31▲# 20.65 ± 1.69▲# SSA-M组 24.09 ± 1.33▲#△ 28.39 ± 1.57▲#△ 27.19 ± 2.01▲#△ SSA-H组 27.15 ± 1.24#△☆ 32.66 ± 2.09▲#△☆ 33.87 ± 5.64▲#△☆ F 57.080 148.700 87.790 P < 0.001 *< 0.001 *< 0.001 **P < 0.05；与Control组相比， ▲P < 0.05；与BBN组相比， #P < 0.05；与SSA-L组相比， △P < 0.05；与SSA-M组相比， ☆P < 0.05。
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