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罕见乙肝病毒感染合并非肝脏合成功能障碍所致的胆碱酯酶极度降低2例个案报道并文献复习

柏保利 匡小林 胡明芬 常国楫 张露 李生浩 王晴晴

张静秋, 陆永萍, 他林昆, 孙月, 陈琦. 内皮损伤后血栓模型制备方法的比较[J]. 昆明医科大学学报, 2024, 45(1): 35-40. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20240112
引用本文: 柏保利, 匡小林, 胡明芬, 常国楫, 张露, 李生浩, 王晴晴. 罕见乙肝病毒感染合并非肝脏合成功能障碍所致的胆碱酯酶极度降低2例个案报道并文献复习[J]. 昆明医科大学学报, 2023, 44(12): 59-64. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20231210
Jingqiu ZHANG, Yongping LU, Linkun TA, Yue SUN, Qi CHEN. Comparison of Methods for Generating Thrombotic Models after the Endothelial Injury[J]. Journal of Kunming Medical University, 2024, 45(1): 35-40. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20240112
Citation: Baoli BAI, Xiaolin KUANG, Mingfen HU, Guoji CHANG, Lu ZHANG, Shenghao LI, Qingqing WANG. Rare Cases of Hepatitis B Virus Infection Combined with Severe Cholinesterase Deficiency not Caused by Liver Dysfunction: Two Case Reports and Literature Review[J]. Journal of Kunming Medical University, 2023, 44(12): 59-64. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20231210

罕见乙肝病毒感染合并非肝脏合成功能障碍所致的胆碱酯酶极度降低2例个案报道并文献复习

doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20231210
基金项目: 国家自然科学基金资助项目(82260408);云南省科技厅基础研究专项面上基金资助项目(202101AT070054);昆明市社会发展与科技惠民计划基金资助项目(2023-1-NS-002);昆明市卫健委卫生科研课题基金资助项目(2022-03-08-005;2022-03-08-011)
详细信息
    作者简介:

    柏保利(1982~),女,湖南祁阳人,医学硕士,主治医师,主要从事肝脏疾病临床诊治及研究工作

    匡小林与柏保利对本文有同等贡献

    通讯作者:

    李生浩,E-mail: doctorlee3h@163.com

    王晴晴,E-mail: wangqingqing1511@163.com

  • 中图分类号: R512.6+2

Rare Cases of Hepatitis B Virus Infection Combined with Severe Cholinesterase Deficiency not Caused by Liver Dysfunction: Two Case Reports and Literature Review

  • 摘要:   目的   分析乙肝病毒感染合并非肝脏合成功能障碍所致的胆碱酯酶(CHE)极度降低的罕见病例,探讨其临床意义。   方法   收集2021年7月和2022年2月在昆明市第三人民医院住院的2例罕见病例的临床资料,包括肝功能、凝血功能、乙肝标记物、乙肝病毒量、全外显子测序等进行分析,并作文献复习。   结果   2例乙肝病毒感染患者均长期CHE极度降低,肝脏合成功能良好,全外显子测序均显示存在血清胆碱酯酶(BCHE)基因突变。   结论   案例CHE极度低下并非是肝脏合成功能障碍所致。全外显子测序检出了2例患者的BCHE基因突变,非肝脏合成功能障碍所致的胆碱酯酶极度降低患者,进行BCHE基因突变筛查可能是必要的。
  • 下肢深静脉血栓(deep vein thrombosis,DVT)是一种常见病,其并发症肺栓塞(pulmonary embolism,PE)和血栓后综合征对患者的生活质量和生命安全产生显著影响[1]。目前,对深静脉血栓的形成机制和诊治疗方案的研究是一个热点领域,因此建立动物模型成为了关键。血管内皮细胞损伤是引发血栓形成的重要触发因素[2-3]。因此,本研究寻找一种安全可行的方法,制备内皮损伤后的血管内血栓模型,通过超声及病理切片比较模型效果,旨在为深入研究内皮损伤和深静脉血栓提供可靠的实验模型,为更好地模拟DVT的发生过程,及深入研究DVT的机制和开发新的治疗方法提供基础。

    选取雄性日本大耳白兔(45)只,体重2.5~3.2 kg。随机分为3组(A组、B组、C组),每组15只。自由饮水,基础饲料喂养。本研究经昆明医科大学动物实验伦理委员会批准 ( 伦理备案号:kmmu2020258A )。

    采用法国Supersonic Imagine公司(Supersonic Imagine,Aixen Provence,France)生产的Aixplorer型全数字化彩色多普勒超声波诊断仪,L4-15线阵探头,频率12-15 MHz,也可以对存储的图像进行回顾性测量。

    1.3.1   动物血栓模型制备

    将3组兔称重编号,在新环境下适应性喂养1周后,行股静脉造模,麻醉、取仰卧及四肢外展位固定,分别游离动、静脉主干长约1.5 cm,分组制备:A组不做血管结扎处理,B组采取完全结扎兔股静脉近端,C组采取不全结扎兔股静脉近端(显露左股静脉后平行放置超滑缝线并一同结扎,打结后撤出超滑缝线)。此外,3组均结扎股静脉侧支并使用无齿血管夹反复钳夹静脉管壁。术后缝合创口,连续3 d后肢肌注青霉素40万U预防感染。

    1.3.2   超声观察

    纵行与横行扫查兔股静脉目标区域,观察血管内回声及血流情况并记录血管内径后(图1),启用SWE(shear wave elastography, SWE)模式,选取感兴趣区域,取样框面积1mm²,测量血栓的弹性模量值[包括最大值(Max)、最小值(Min)和平均值(Mean)]、弥散度(Sd),选择图像稳定且Sd<5Kpa者,取样3次后计算平均值。对以上所有数据及图片均作记录并保存。

    图  1  造模后超声横行与纵行扫查兔股静脉,观察血管内回声及血流情况并记录血管内径
    A:横行;B:纵行。
    Figure  1.  After modeling,perform transverse and longitudinal ultrasound scans of the rabbit femoral vein to observe the echo and blood flow within the blood vessels and record the vascular diameter
    1.3.3   病理观察

    超声检查后处死动物,取病变血管,放入10%中性福尔马林溶液内固定,血栓组织石蜡切片包埋,HE染色,显微镜检。

    所有数据用SPSS17.0进行统计分析,计量资料用( $ {\bar x \pm s} $)表示,多组计量资料比较采用单因素方差分析,进一步两两比较采用LSD-t检验,P<0.05为差异有统计学意义。

    血管内皮损伤早期(建模后1 d),A、B、C 3组血管内呈均匀一致低回声。血管内皮损伤中期(建模后3 d),C组血管内回声较前稍增强,管腔内径较前增宽(P < 0.05)。到晚期(建模后7 d),B组出现部分管腔闭塞萎缩,管腔均较前有所减小( P < 0.05);C组内血栓充填更明显,管腔内回声稍增强,管腔内径明显增宽( P < 0.05);CDFI显示:A组部分管腔内有点状或短线状血流通过,内径测值见 表1

    表  1  3组兔股静脉管腔内径比较[( $\bar x \pm s$),mm]
    Table  1.  Comparison of the intraluminal diameter of the femoral vein in three groups of rabbits [( $\bar x \pm s$),mm]
    组别 n 术后1 d 术后3 d 术后7 d F P
    A组 15 1.547±0.106 1.553±0.106 1.620±0.086 2.475 0.096
    B组 15 1.567±0.105 1.473±0.122 1.413±0.226* 3.483 0.040#
    C组 15 1.587±0.106 1.740±0.130* 1.980±0.204*△ 25.336 < 0.001#
      与术后1 d比较,*P < 0.05;与术后3 d比较, P < 0.05; #P < 0.05
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    1 d、3 d及7 d兔股静脉造模处均有弹性显像,见图2

    图  2  造模后1 d、3 d及7 d 3组兔股静脉实时剪切波弹性成像观察
    Figure  2.  Real-time shear wave elastography observation of the femoral vein in three groups of rabbits at 1 d,3 d,and 7 d after modeling

    随着造模时间延长,3组兔股静脉血栓模型杨氏模量均值呈增高趋势,且在造模后7 d显著增高,差异有统计学意义(P < 0.05)。同一时间内组间比较,C组于第3天及第7天血栓模型的杨氏模量较A、B 2组明显增高( P < 0.05)。兔造模处股静脉血栓杨氏模量值比较结果,见 表2

    表  2  3组兔股静脉血栓模型杨氏模量值MEAN值比较(Kpa)
    Table  2.  Comparison of mean values of Young’s modulus (MEAN) in the femoral vein thrombus model of three groups of rabbits (Kpa)
    组别 n 术后1 d 术后3 d 术后7 d F P
    A组 15 5.16±1.001 5.987±0.756 9.22±1.725*△ 45.546 < 0.001
    B组 15 4.747±0.986 5.927±0.834 10.56±2.564*△ 51.566 < 0.001
    C组 15 4.453±1.119 7.993±1.223*#+ 18.82±1.66*△#+ 458.322 < 0.001
    F 1.760 22.549 98.855
    P 0.185 < 0.001 * < 0.001 *
      与术后1 d比较,*P < 0.05;与术后3 d组比较, P < 0.05;同一时间内与A组比较, #P < 0.05;同一时间内与B组比较, +P < 0.05; P < 0.05。
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    随着造模后时间的延长,3组实验组均出现不同程度的血管壁的损伤、内皮细胞脱落、炎细胞侵润,最终导致不同程度的血栓形成,并于造模第7天C组血管内出现一定程度的纤维蛋白机化血栓,见表3图3

    表  3  建模后不同时期血管的病理学变化
    Table  3.  Pathological changes in blood vessels at different time points after modeling
    组别 A组 B组 C组
    1 d 血管壁少量内皮细胞脱落,炎细胞侵润;血管内血细胞淤滞 血管壁少量内皮细胞脱落,管壁水肿可见炎细胞侵润,血管内血细胞淤滞 血管壁部分内皮细胞脱落,
    管壁水肿可见炎细胞侵润,血管内血细胞淤滞
    3 d 血管壁内肉芽组织增生,血管内血细胞淤滞 部分血管壁纤维素样坏死,血管周围炎细胞侵润,血管内血细胞淤 部分血管壁纤维素样坏死,血管周围炎细胞侵润,部分血管内红色血栓形成
    7 d 血管壁纤维组织增长,部分血管内出现红色血栓 部分血管壁增厚,血管周围炎细胞侵润,血管内形成红色及白色血栓 血管壁增厚,血管内血栓形成,出现纤维蛋白机化血栓
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    图  3  C组兔造模1 d、3 d及7 d后股静脉血栓病理切片观察(HE100×)
    Figure  3.  Pathological observation of femoral vein thrombosis in rabbits of group C at 1 d,3 d,and 7 d after modeling (HE100×)

    Virchow[4]最早提出了深静脉血栓形成的3大因素:血流淤积、静脉内皮损伤和血液高凝状态。目前,深静脉血栓动物模型的制备方法主要包括阻断静脉血液回流以引发血液淤滞,通过注入促凝物质、异物或机械性损伤血管内皮细胞等辅助手段诱发血栓形成[5-6]。已报道的几种制备方法,包括结扎法、创伤性击打后固定下肢,以及放置球囊导管阻塞血管并局部使用凝血酶[7-10]。这些方法各有适用的研究领域,相较于结扎法,其余3种方法制备血栓时间较长、操作复杂、耗材较多,并且没有关于机化血栓的报道。本研究旨在比较不同结扎方式制备动物股静脉血栓的效果,以期找到一种简单而有效的方法来改进动物血栓模型的制备过程,为后续实验奠定良好的基础。

    本研究使用超声联合实时剪切波弹性成像技术观察血栓形成过程,并通过病理切片进行验证,发现不全结扎法制备的静脉血栓模型更符合人体深静脉血栓的特点,具有较高的成功率和更准确的数据基础。动物深静脉血栓模型的制备常因侧支循环的建立,导致模型处血管的完全闭塞和管腔萎缩,因此难以获取充满性深静脉血栓;同时由于缺乏良好的观察方法,不能很好地观察血栓形成过程,最终导致血栓模型的成功制备率较低。超声联合实时剪切波弹性成像技术是一种非侵入性的影像学技术,可以表征血栓的硬度[11-12]。研究已证实SWE可用于评估下肢深静脉血栓的硬度及静脉血栓的临床分期,且其效果优于常规超声检查[13-15]。在本研究中,笔者利用这项技术实时、非侵入性观察血栓形成的过程,获取血栓的形态和血栓硬度的杨氏模量值,帮助笔者了解血栓的形成和演变过程,为后续实验提供了更准确的数据。同时,加入病理检查进行验证,结果表明使用单纯夹闭的方法形成的血栓主要是红色血栓,因此超声观察管腔内以低回声为主,管腔内可见少量血流信号,说明血栓易脱落。完全结扎法制造血栓模型超声及病理结果均证实管腔出现不同程度的闭塞和萎缩。联合不全结扎法同时应用了血流淤滞和静脉内皮损伤这2个导致血栓形成的关键因素,可以快速且大量地形成血栓。在制备模型后的第7天,超声检查发现C组血管内管腔内回声明显充填,SWE证实管腔内杨氏模量值明显升高,说明血栓出现机化后血栓硬度增高,通过病理证实该组血栓机化率明显增高。

    笔者比较了单纯夹闭、联合完全结扎和联合不全结扎法制备血管内皮损伤后血栓模型的优缺点。发现单纯夹闭的方法虽然简单易行,使用止血夹反复夹闭股静脉,可通过损伤血管内皮,并短暂阻断了血流回流造成血流瘀滞,使该血管内处于高凝状态,从而引发血栓形成。但是,单纯夹闭的血栓形成效果不够理想,血栓往往不完整且容易脱落,这导致了观察效果较差。相比之下,完全结扎法能够较好地保持血栓的完整性。它通过将动物的股静脉完全结扎,阻断了血流,并促使血栓形成。这种方法的优点在于血栓形成相对完整,有利于观察和评估血栓的特征和性质。然而,完全结扎法也存在一些局限性。它可能导致血管闭塞和萎缩,影响血管的生理功能,甚至对动物的健康产生负面影响。与完全结扎法相比,不全结扎法则在模拟人体深静脉血栓方面更具优势。这种方法在不全结扎静脉血管壁时可造成一定的血管壁及内皮损伤,同时导致远端血流瘀滞,随着血管内的压力逐渐增高,血管壁承受的血液流体力学发生改变,引起血管壁的病理改变,并影响内皮细胞结构与功能。因此,通过不全结扎兔股静脉,可使血栓形成的速度更快。由于不全结扎法允许少量血流缓慢通过结扎段静脉,很好地模拟了人体静脉疾病的重度狭窄和血流缓慢的特点。因此,这种制模方式形成的静脉血栓模型更符合人体深静脉血栓的病理生理学特点。本研究还发现,使用这种方法进行建模的手术时间较短,血栓制成率高。有利于超声观察,为今后的实验打下了良好的基础。

    综上所述,本研究通过对比3种制备动物股静脉血栓的方法,可以看到不同方法各有其优势和局限性。结扎法简单易行,但血栓形成不完整且易脱落,观察效果较差。完全结扎法能够较好地保持血栓的完整性,但容易导致血管闭塞和萎缩,影响观察结果。而夹闭法联合不全结扎法能够产生较为稳定的内皮损伤和血栓形成。这种方法的优势在于,通过结扎不完全闭塞血管,可以模拟出更接近真实情况下的内皮损伤。此外,该方法制备的血栓模型在血管内径和杨氏模量值上显示出明显的变化,进一步验证了其有效性。这一研究结果对于进一步研究深静脉血栓的发生机制、预防和治疗方法具有重要的指导意义。

    然而,笔者也注意到本研究存在一些局限性。首先,本研究仅使用兔作为实验动物,而不涉及其他物种,因此不能确定这种方法在其他动物模型中的适用性。其次,本研究的样本量相对较小,可能存在样本量不足的局限性。为了提高研究结果的可靠性和推广性,未来的研究将考虑增加样本量,并进行更严谨的统计分析,以更准确地评估不同方法制备血栓模型的效果。此外,本研究的观察时间较短,只观察了造模后1 d、3 d和7 d的变化,没有对更长时间的变化进行观察。进一步的长期观察可能有助于更全面地评估血栓模型的稳定性和持久性。

    总之,本研究的结果表明,夹闭法联合不全结扎法是制备内皮损伤后血栓模型的有效方法。然而,笔者需要进一步的研究来验证其在其他动物模型中的适用性,并扩大样本量、进行更长期的观察以评估其稳定性。

  • 图  1  病例1的全外显子测序及家系验证图谱

    BCHE基因发生2个突变,分别为NM_000055:exon2: c.1240C>T: p.Arg414Cys和NM_000055:exon2:c.401dup: p.Asn134LysfsTer24。蓝色阴影为发生基因突变的位点。

    Figure  1.  Whole exon sequencing and family verification of case 1

    图  2  人类BCHE基因图谱及常见的物种突变情况[5]

    Figure  2.  Human BCHE gene map and common species mutations

    表  1  病例2全外显子测序检出的BCHE基因突变情况

    Table  1.   BCHE gene mutations detected by whole exon sequencing in case 2

    基因(参考序列) 变异 染色体位置 变异频率
    BCHE(NM_000055.2) c.1699G>A(p.A567T)纯合变异 Chr3: 165491280 0.1137
    BCHE(NM_000055.2) c.1177G>C(p.G393R)杂合变异 Chr3: 165547645 0.0017
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  • [1] 张明,李盾,陈仪本,等. 乙酰胆碱酯酶分子生物学研究进展[J]. 农药,2006,45(1):8-11. doi: 10.3969/j.issn.1006-0413.2006.01.003
    [2] Andersson M L,M Ller A M,Wildgaard K. Butyrylcholinesterase deficiency and its clinical importance in anaesthesia: A systematic review[J]. Anaesthesia,2019,74(4):518-528. doi: 10.1111/anae.14545
    [3] Trujillo R, West W P. Pseudocholinesterase deficiency [M]. StatPearls. Treasure Island (FL); StatPearls Publishing Copyright © 2023, StatPearls Publishing LLC. 2023: 5-8.
    [4] Arslan M,Novak M,Rosenthal D,et al. Cholinesterase deficiency syndrome-A pitfall in the use of butyrylcholinesterase as a biomarker for Wilson's disease[J]. Biomolecules,2022,12(10):1398. doi: 10.3390/biom12101398
    [5] Yen T,Nightingale B N,Burns J C,et al. Butyrylcholinesterase (BCHE) genotyping for post-succinylcholine apnea in an Australian population[J]. Clin Chem,2003,49(8):1297-1308. doi: 10.1373/49.8.1297
    [6] Stockhoff L,Muellner-Bucsics T,Markova A A,et al. Low serum cholinesterase identifies patients with worse outcome and increased mortality after TIPS[J]. Hepatology Communications,2022,6(3):621-632. doi: 10.1002/hep4.1829
    [7] Zivkovic A R,Schmidt K,Sigl A,et al. Reduced serum butyrylcholinesterase activity indicates severe systemic inflammation in critically ill patients[J]. Mediators of Inflammation,2015,2015(5):274607.
    [8] Decker S O,Kr Ger A,Wilk H,et al. Concurrent change in serum cholinesterase activity and midregional-proadrennomedullin level could predict patient outcome following liver transplantation[J]. Biomolecules,2022,12(7):989. doi: 10.3390/biom12070989
    [9] Geng H,Wang S,Jin Y,et al. Nutritional status and body composition in Wilson disease: A cross-sectional study from China[J]. Frontiers in nutrition,2021,8(6):790520.
    [10] Bhusal S,Bhandari R,Dahal S,et al. Organophosphorus poisoning among patients admitted to the intensive care unit of the department of internal medicine in a tertiary care centre: A descriptive cross-sectional study[J]. JNMA; Journal of the Nepal Medical Association,2022,60(253):766-769. doi: 10.31729/jnma.7823
    [11] Garmavy H M S,Mohammed A A,Rashid H M,et al. A meta-analysis of normal human blood cholinesterase activities determined by a modified electrometric method[J]. Journal of Medicine and Life,2023,16(1):22-34. doi: 10.25122/jml-2022-0215
    [12] Anglister N,Gonen-Shalom S,Shlanger P,et al. Plasma cholinesterase activity: A benchmark for rapid detection of pesticide poisoning in an avian scavenger[J]. The Science of the Total Environment,2023,877(6):162903.
    [13] 杜锴. 血浆凝血因子及胆碱酯酶在肝硬化患者的表达及临床意义[J]. 四川解剖学杂志,2020,28(4):62-63. doi: 10.3969/j.issn.1005-1457.2020.04.029
    [14] 孙志君. 胆碱酯酶活性检测对进行性肝硬化诊断的临床意义[J]. 中外医疗,2020,39(22):1-3. doi: 10.16662/j.cnki.1674-0742.2020.22.001
    [15] Cornelius B W,Jacobs T M. Pseudocholinesterase deficiency considerations: A case study[J]. Anesthesia Progress,2020,67(3):177-184. doi: 10.2344/anpr-67-03-16
    [16] Soliday F K,Conley Y P,Henker R. Pseudocholinesterase deficiency: a comprehensive review of genetic,acquired,and drug influences[J]. AANA Journal,2010,78(4):313-320.
    [17] Acharya S,Bhattarai S,Shrimanker I,et al. A prolonged paralysis with succinylcholine in pseudocholinesterase deficiency: An undesired effect[J]. QJM:Monthly Journal of the Association of Physicians,2022,115(8):547-548. doi: 10.1093/qjmed/hcac103
    [18] Maxwell J,Boothby A,Osborne R,et al. Prolonged paralysis after electroconvulsive therapy due to butyrylcholinesterase gene mutation[J]. Journal of Clinical Psychopharmacology,2021,41(5):610-611. doi: 10.1097/JCP.0000000000001423
    [19] Pradhan B K,Van Helmond N,Mitrev L V,et al. Hereditary pseudocholinesterase deficiency discovery after electroconvulsive therapy[J]. BMJ Case Reports,2021,14(1):154-159.
    [20] Yu R,Guo Y,Dan Y,et al. A novel mutation in the BCHE gene and phenotype identified in a child with low butyrylcholinesterase activity: A case report[J]. BMC Medical Genetics,2018,19(1):58. doi: 10.1186/s12881-018-0561-5
    [21] Yang X,Dang P,Liu W,et al. The role of butyrylcholinesterase in the regulation of cognitive dysfunction in minimal hepatic encephalopathy: A potential blood marker of disease evolution[J]. Frontiers in Neurology,2022,13(9):990997.
    [22] Douville N J,Kheterpal S,Engoren M,et al. Genetic mutations associated with susceptibility to perioperative complications in a longitudinal biorepository with integrated genomic and electronic health records[J]. British Journal of Anaesthesia,2020,125(6):986-994. doi: 10.1016/j.bja.2020.08.009
    [23] Kurnutala L N,Rugnath N. Pseudocholinesterase deficiency - Is succinylcholine still needed to facilitate endotracheal intubation?[J]. Cureus,2020,12(9):10721.
    [24] Muntoni S,Rojkind M,Muntoni S. Colchicine reduces procollagen III and increases pseudocholinesterase in chronic liver disease[J]. World Journal of Gastroenterology,2010,16(23):2889-2894. doi: 10.3748/wjg.v16.i23.2889
  • [1] 徐苏, 刘宇晴, 郑兴旺.  血清抗-HBC、CHE、载脂蛋白AI的水平与病毒性肝炎发展的相关性, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20241221
    [2] 海燕, 美力班·吐尔逊, 阿仙姑·哈斯木.  Pin1通过调控脂质代谢关键酶影响宫颈癌细胞的增殖及凋亡, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20230107
    [3] 罗巧, 石宏, 王绍波.  α7-烟碱乙酰胆碱受体在肺癌发生、发展及治疗中的作用, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20220226
    [4] 郝立君, 徐丽秀, 李金秋, 马俊旗, 阿仙姑·哈斯木.  肽基脯氨酰同分异构酶(Pin1)对子宫颈癌细胞脂质代谢的作用, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20210111
    [5] 朱理佳, 马晓丹, 段江, 李檬, 黄永坤.  不同胎龄、不同出生体重新生儿的首次肝功能指标的差异性, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20210330
    [6] 朱菁菁, 钱金桥.  丙泊酚、依托咪酯用于无痛人工流产术的效果观察, 昆明医科大学学报.
    [7] 谢姆西凯麦尔·奥布力喀斯木, 吐尔逊娜依·艾海提, 杨和银.  急性心肌梗死患者应用阿替普酶联合丁苯酞治疗的疗效及对血清MYO、Periostin水平的影响, 昆明医科大学学报.
    [8] 冯国华, 林华, 普菁莹, 高丽辉, 李玲, 牛艳芬.  3,5,2’,4’-四羟基查尔酮对大鼠尿酸及PC12细胞嘌呤代谢酶的影响, 昆明医科大学学报.
    [9] 刘建红, 周冀波.  血清胆碱酯酶在老年慢性阻塞性肺疾病呼吸衰竭患者中的表达及其与呼吸衰竭的相关性, 昆明医科大学学报.
    [10] 李蓝江.  GPIHBP1基因rs142861814位点多态性与高甘油三酯血症的相关性, 昆明医科大学学报.
    [11] 田园.  羧酸酯酶在抗肿瘤药物研究中的作用, 昆明医科大学学报.
    [12] 戴转云.  氟比诺芬酯对老年患者气管插管应激反应的临床研究, 昆明医科大学学报.
    [13] 吴阳.  维生素A棕榈酸酯眼用凝胶治疗干眼症疗效观察, 昆明医科大学学报.
    [14] 沈红.  前列腺特异性膜抗原、α-甲基酰基辅酶A消旋酶在前列腺癌中的表达及其临床意义, 昆明医科大学学报.
    [15] 于萍.  沙丁胺醇在3,4 -二氯苯基异氰酸酯万古霉素手性柱上的对映体分离, 昆明医科大学学报.
    [16] 肖林.  射频靶点结合胶原酶治疗颈椎间盘突出症研究, 昆明医科大学学报.
    [17] 肖林.  射频靶点结合胶原酶治疗颈椎间盘突出症研究, 昆明医科大学学报.
    [18] 曾红静.  蛋氨酸补偿代谢途径及蛋氨酸酶抗肿瘤研究进展, 昆明医科大学学报.
    [19] 朱建文.  丙泊酚复合氯化琥珀酰胆碱在电休克治疗中的安全性, 昆明医科大学学报.
    [20] 木云珍.  树鼩全血胆碱酯酶活性测定分析, 昆明医科大学学报.
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  • 收稿日期:  2023-07-31
  • 刊出日期:  2023-12-25

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