留言板

尊敬的读者、作者、审稿人, 关于本刊的投稿、审稿、编辑和出版的任何问题, 您可以本页添加留言。我们将尽快给您答复。谢谢您的支持!

姓名
邮箱
手机号码
标题
留言内容
验证码

外周血Septin9基因甲基化检测在结直肠腺瘤中的预测价值

邓菊庆 于璐 廖丽琼 杨忠存

邓菊庆, 于璐, 廖丽琼, 杨忠存. 外周血Septin9基因甲基化检测在结直肠腺瘤中的预测价值[J]. 昆明医科大学学报, 2024, 45(3): 151-156. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20240323
引用本文: 邓菊庆, 于璐, 廖丽琼, 杨忠存. 外周血Septin9基因甲基化检测在结直肠腺瘤中的预测价值[J]. 昆明医科大学学报, 2024, 45(3): 151-156. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20240323
Juqing DENG, Lu YU, Liqiong LIAO, Zhongcun YANG. Predictive Value of Peripheral Blood Septin9 Gene Methylation Assay in Colorectal Adenoma[J]. Journal of Kunming Medical University, 2024, 45(3): 151-156. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20240323
Citation: Juqing DENG, Lu YU, Liqiong LIAO, Zhongcun YANG. Predictive Value of Peripheral Blood Septin9 Gene Methylation Assay in Colorectal Adenoma[J]. Journal of Kunming Medical University, 2024, 45(3): 151-156. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20240323

外周血Septin9基因甲基化检测在结直肠腺瘤中的预测价值

doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20240323
基金项目: 昆明市卫生健康委员会卫生科研课题项目(2020-01-04-001)
详细信息
    作者简介:

    邓菊庆(1983~),女,云南镇雄人,医学硕士,主管技师,主要从事分子病理学研究工作

    通讯作者:

    于璐 ,E-mail:1772192143@qq.com

  • 中图分类号: R736.1

Predictive Value of Peripheral Blood Septin9 Gene Methylation Assay in Colorectal Adenoma

  • 摘要:   目的  探讨外周血Septin9基因甲基化(mSEPT9)检测在结直肠腺瘤诊断中的预测意义。  方法  收集2020年10月至2022年5月在昆明市第一人民医院病理科诊断为结直肠腺瘤的31名患者作为实验组,21例肠镜阴性受试者(消化科门诊患者)作为对照组。对2组人员进行外周血mSEPT9检测,并收集其相应外周血CEA检测结果,对检测结果采用受试者特征曲线进行统计分析。  结果  mSEPT9检测对腺瘤的曲线下预测面积(AREA of the ROC:AUC)为0.7205(P < 0.05),分界值(CT值)为39.55,此时对应的敏感度为90.91%,特异度为56.67%;CEA检测对腺瘤的AUC为0.5333(P > 0.05)。  结论  外周血mSEPT9检测筛查结直肠腺瘤效果优于外周血CEA肿瘤标记物,具有较好的敏感度及特异度,一定程度上对mSEPT9筛查阳性人群再行侵入性肠镜检查,更易为该类人群接受且可早期筛查结直肠腺瘤。
  • 结直肠癌(colorectal cancer,CRC)目前是消化道最常见的恶性肿瘤,在2020年世界癌症报告数据中显示,新发的结直肠癌病例数位居第二,死亡人数位居第五[1]。在我国,大部分结直肠癌确诊时多为中晚期,5 a生存率不足50%。因此,结直肠癌早期诊断率的提高显得尤为重要。结直肠癌的主要发生途径为腺瘤癌变途径,传统腺瘤癌变途径导致70%~90%的结直肠癌,锯齿状新生物导致10%~20%的结直肠癌[2]。目前主要筛查方法为肠镜、血清癌胚抗原检测、粪便潜血实验及近年来逐步开展使用的mSEPT9检测、多靶点粪便FIT-DNA检测等。上述方法各有优势及不足,特别是对于结直肠癌发生的早期病变-结直肠腺瘤的检测敏感性及特异性差异较大。而结直肠癌的发生途径主要为腺瘤癌变而来,因此,如能通过提高对结直肠腺瘤早期诊断率从而进行无创-有创的分层递进检查,不仅结直肠癌的早期诊断率能显著提高,也易于在健康人群中进行推广筛查,从而可以显著提高结直肠癌筛查的可操作性。笔者通过对结直肠腺瘤实验组(包括低、高级别上皮内瘤变)和对照组(肠镜检查阴性)外周血mSEPT9检测结果分析并探讨其在结直肠腺瘤发生中的预测意义,并将其与外周血CEA结果进行对比,以期获得结直肠腺瘤早期诊断中最优化的筛查方案,并对是否进行侵入性肠镜做一定程度的分流作用,减少患者因行侵入性肠镜检查并发症风险及增加结直肠腺瘤筛查的可操作性。

    选取2020年10月至2022年5月期间在昆明市第一人民医院病理科行结肠镜检查镜下取材送检诊断为大肠腺瘤的30名患者作为实验组研究对象,将22例肠镜检查结果阴性受试者作为对照组研究对象。该研究中受试者均签署知情同意书,并经本院医学伦理委员会审查批准通过,伦理批件号:YLS-53。

    1.1.1   纳入标准

    (1)实验组:受试者均经肠镜及组织活检病理诊断,依据诊断标准[3]确诊为结直肠腺瘤,含25例低级别腺瘤(包含管状腺瘤伴低级别上皮内瘤变、绒毛状-管状腺瘤伴低级别上皮内瘤变;5例高级别腺瘤(包含绒毛状-管状腺瘤伴高级上皮内瘤变、管状腺瘤伴高级别上皮内瘤变、锯齿状腺瘤伴高级别上皮内瘤变);(2)对照组:经结直肠镜检测无结直肠腺瘤受试者。

    1.1.2   排除标准

    (1)受试者存在全身感染性疾病、精神疾病,以及其他严重器质性病变;(2)女性受试者处于妊娠状态;(3)受试者年龄大于75岁。

    1.1.3   观测指标:

    实验组及对照组受试者均检测有外周血外周血mSEPT9及CEA血清浓度。

    本检测是运用实时荧光定量PCR 平台,采用甲基化特异性引物和Taqman 特异性荧光检测技术,偏向扩增和检测甲基化片段。利用重亚硫酸盐处理DNA可将未甲基化的胞嘧啶转化成尿嘧啶,而甲基化特异性引物特异识别甲基化片段,并偏向扩增甲基化模板,利用Taqman 探针特异性识别甲基化片段,以鉴别甲基化片段的存在。另外通过Blocker与非甲基化片段的结合,抑制高浓度野生型DNA可能存在的翘尾现象。本试剂盒选择Sep和内参基因ACTB 同时扩增的双重PCR受控体系,通过阳性质控品和阴性质控品与样本平行提取、硫化纯化、PCR 检测,可对样本的检测过程进行质控。

    标准化操作规程:(1)含EDTA抗凝剂的采血管进行采血5 mL、温度为2~8 ℃保存;(2)血浆游离DNA提取:采用磁珠法进行血浆游离DNA的提取;① DNA硫化修饰和纯化:采用硫化试剂进行血浆游离DNA的硫化修饰后,利用纯化试剂对硫化后的产物进行纯化,作为mSEPT9检测的模板;②血浆样品中SEP9甲基化检测(荧光PCR法);③分析PCR结果:FAM CP ≤ 47.93,有扩增信号,且呈 S 型扩增曲线趋势,并且 VIC CP≤40.21 则结果为阳性;FAM CP > 47.93,并且 VIC CP≤40.21 则结果为阴性。

    采用SPSS 26.0及GraphPad Prism 9软件进行数据分析,计量资料用均数±标准差($ \bar x \pm s $)表示。使用受试者特征曲线(ROC)进行外周血mSEPT9检测结果及外周血CEA结果对特异性及敏感性进行统计分析,采用Fisher精确检验对mSEPT9结果与腺瘤级别进行统计分析,P < 0.05为差异具有统计学意义。

    实验组(腺瘤组30例):(1)低级别腺瘤组25例:绒毛状-管状腺瘤伴低级别上皮内瘤变7例,男性6例,其中mSEPT9阳性5例,平均年龄(51.80±13.85)岁;阴性1例:69岁;女性1例:mSEPT9阴性;管状腺瘤伴低级别上皮内瘤变18例:男性9例,其中mSEPT9阳性4例,平均年龄(53.00±5.35)岁;阴性5例:平均年龄(50.80±22.65)岁;女性9例:其中mSEPT9阳性7例,平均年龄(59.43±10.75)岁;阴性2例,平均年龄(66.50±6.36)岁。(2)高级别腺瘤组:5例:绒毛状-管状腺瘤伴高级别上皮内瘤变2例:男性1例,mSEPT9阴性,72岁;女性1例,mSEPT9阳性,49岁,管状腺瘤伴高级别上皮内瘤变2人:男性1例mSEPT9阴性,67岁;其中,女性,1例,mSEPT9阳性,73岁;锯齿状腺瘤伴高级别上皮内瘤变,女性1例,mSEPT9阳性,49岁。对照组:男性7例,女性15例,平均年龄(47.77±12.01)岁。

    实验组2例大于3.4 ng/mL,分别为5.44及8.88 ng/mL;对照组:CEA血清浓度均小于3.4 ng/mL。

    低级别管状腺瘤及绒毛状管状腺瘤共计25例,高级别绒毛管状及锯齿状腺瘤共计5例,其病理形态见图1:低级别管状腺瘤:见增生的腺管,腺上皮细胞核柱状,排列紧密;低级别绒毛状管状腺瘤:见增生的腺体,呈乳头状及腺管状,腺上皮细胞核柱状,排列紧密;高级别绒毛状腺瘤:见增生的乳头状结构,腺体上皮细胞核卵圆形、圆形,有异型,核分裂像可见;锯齿状腺瘤:见增生的腺体呈锯齿状,腺上皮细胞核圆形、卵圆形,有异型,可见核分裂。对照组为肠镜阴性门诊患者,因此无病理形态图。图1所显示的病理形态图是本次研究实验组入组对象的病理形态图,代表了入实验组研究对象的主要镜下结构。

    图  1  结直肠低、高级别腺瘤的HE病理形态(×20)
    A:低级别管状腺瘤;B:低级别绒毛状管状腺瘤; C:高级别绒毛管状腺瘤;D:高级别锯齿状腺瘤。
    Figure  1.  Pathological morphology of colorectal low- and high-grade adenoma by HE staining (×20)

    外周血mSEPT9检测,受试者特征曲线显示:曲线下面积为0.7205,P = 0.0070,差异具有统计学意义,利用约登指数计算其分界值(Cut-off值)即CT值是39.55,对应的敏感度为90.91%,特异度为56.67%;外周血CEA血清浓度检测受试者特征曲线显示:曲线下面积为0.533,P = 0.6837,见图2

    图  2  外周血mSEPT9检测结果与CEA血清浓度的ROC曲线比较
    A:外周血mSEPT9甲基化ROC曲线;B:血清CEA表达水平ROC曲线。
    Figure  2.  The ROC comparison between the detection of mSEPT9 and CEA in peripheral blood

    在本研究中腺瘤高级别受试者有5例,阳性3例,阴性2例,阳性率60%,腺瘤低级别受试者有25例,阳性17例,阴性8例,阳性率68.00%,将2组腺瘤对应的mSEPT9阳性例数进行Fisher精确检验(P > 0.05),见图3

    图  3  低、高级别腺瘤组mSEPT9阳性数的比较
    Figure  3.  Comparison of mSEPT9 positivity in the low- and high-grade adenoma groups

    Septin是一类具有鸟苷三磷酸活性的保守基因家族,广泛存在于生物中,其中Septin9基因是Septin基因家族的一员,位于人类染色体17q25.3,是一种细胞周期相关蛋白,参与许多生物过程,如细胞分裂、胞膜重建、极化、囊泡运输、脱氧核糖核酸修复、细胞迁移及凋亡[4],与人类很多疾病尤其是肿瘤相关,在其发生发展中发挥重要作用。目前,已有多项研究通过检测受检者外周血游离Septin9 异常甲基化发生情况,从而判断受检者患结直肠癌的可能性,但其作为预测早期结直肠癌报道的敏感性及特异性却各不相同[5-7]

    WARREN JD、CHURCH TR等[8-9]研究显示,血浆mSEPT9在结直肠腺瘤/息肉组中的阳性检出率(11.5% 和 11.2%)与对照组(10.0% 和 9.1%)相比,(P > 0.05 ) ,提示血浆mSEPT9及血清 CEA 对结直肠良性肿瘤(如腺瘤与息肉)的检出率不高,这与笔者的研究结果不一致。本研究显示外周血mSEPT9检测显示ROC曲线下面积为0.7205,P值为0.0070(P< 0.05),差异具有统计学意义。敏感度为90.91%,特异度为56.67%(0.9000 > 0.7205 > 0.7000),说明其敏感性高、特异性相对较好,这与吴东等[10]研究结果显示的诊断进展期腺瘤的敏感度为67.6%,特异度为47.4%相似。说明mSEP9检测可以用于结直肠腺瘤筛查,并且因为其检测方法便捷、患者依从性较好,从而对结直肠癌的早期诊断具有良好的临床推广作用。

    本研究利用甲基化特异性引物和Taqman 特异性荧光检测技术基于实时荧光定量PCR 平台对外周血进行mSEP9的检测,证实了其在结直肠腺瘤中的敏感性及特异性。也有部分学者通过改进或创新,研究新的检测平台以达到更好的操作接受度和更多的临床应用。如Ma Z Y等[11]研究显示mSEPT9率、甲基化丰度及CEA的水平在结直肠癌患者中比正常对照组高,有统计学差异,在CRC中甲基化发生率及丰度的曲线下面积分别为0.707和0.710。甲基化丰度从近端到远端结直肠癌中有增加的趋势,差异具有统计学意义;术后3个月,甲基化率、甲基化丰度都有下降,尤其在三期及直肠癌中明显,差异均具有统计学意义。另外也有学者研制出一个微滴式数字PCR平台可对结直肠癌病人血浆SEP9进行定量的检测。SEP9甲基化丰度早期术后下降,这可能用于监测术后治疗反应的有效性[12]。Qiu Liang等[13]研制了一种检测双链DNA的新型mSEPT9检测方法,在这个方法中甲基化DNA连同质控基因的特异序列能够在一个反应中得到扩增及检测,对结直肠癌发生的敏感性及特异性分别为77.4% ,97.8%,对于临床早期结直肠癌检测有更好的诊断价值。此外,也有研究者探索mSEPT9检测联合不同的标记物,检测其在肿瘤中的表达情况。如LEI ZHANG等[12]通过联合SEPT9甲基化与编码蛋白基因Synuclein Gamma(SNCG)检测,发现其在食道癌中不同分期表达存在差异,联合检测敏感性有所提高。总之,甲基化在部分癌症发生的过程中发挥着重要作用,通过单独或联合筛查筛出早期病变如腺瘤等是笔者努力探索的方向。

    本研究中,外周血mSEPT9检测受试者特征曲线显示SEP9在CT值为39.55是分界值,这与试剂盒建议的小于41为阳性有一定的差异,笔者分析这与本研究总体样本量较小,而且是单中心研究结果有一定的关系,而且可能与本研究结果主要针对的是结直肠癌早期病变-结直肠腺瘤有关,尚需增大样本量、多中心的研究进一步证实。同时,在39.55分界值时候敏感度为90.91%,特异度为56.67%,敏感度较高、而特异度不是很强。因此,在结直肠腺瘤或结直肠癌早筛的过程中,可以通过多个标记物的联合检测以提高敏感性及特异性,FEI XU等[14]通过联合检测mSEP9和支链氨基酸转氨酶1(branched chain amino acid transaminase 1,BCAT1)对于结直肠癌的诊断敏感性可达83.7%,特异性可达93.9%,曲线下面积为0.908。目前,报道稍多的是SEP9基因甲基化联合大便隐血免疫法(fecal immunochemical test ,FIT)检测,H. W等[15]联合 FIT 和DNA甲基化检测(包括mSEPT9),对结直肠癌敏感性提高到81.5%,曲线下面积为 0.93,优于单独的FIT,差异具有统计学意义,而对腺瘤的敏感性为 27.8% ,特异性为94.4%,多维检测在不同阶段的肿瘤中的敏感性及特异性也不同。因此,探讨更便捷和经济的联合检测方式筛查结直肠腺瘤依然是待解决的问题。可以通过多中心、大样本、多分层的研究得到更加经济有效的检测方法,使阴性检测者不必接受肠镜等侵入性检查,而结直肠腺瘤患者能够更有针对性接受肠镜检查,从而大范围减少由腺瘤恶变为癌的可能。

    目前,临床常用筛查结直肠癌的方法主要是检测外周血肿瘤标记物,如 CEA 、CA19-9、CA125等,而这些标记物一般可在多种恶性肿瘤中有不同程度的升高因此对结直肠癌的诊断特异性较差。尤其是在结直肠癌发生的早期病变-腺瘤中的敏感性及特异性则更不明显,这在笔者的研究中也得到证实。本研究在结直肠腺瘤中外周血CEA检测的受试者特征曲线显示曲线下面积为0.533,P值为0.6837(> 0.05),差异无统计学意义,因此,不能单独将外周血CEA检测用于结直肠腺瘤的筛查。

    在结果中经过Fisher精确统计,低级别与高级别腺瘤mSEPT9阳性例数差异无统计学意义,这也许并不能完全代表真实的客观情况,因为此次受试者样本量少尤其高级别腺瘤组受试者样本量很少,只有5例,通过这次研究入组对象等分析在后续的研究中纳入腺瘤更细分类入组及增加入组样本数量,并进行多中心研究对于得到更加客观的结论非常重要,只有这样得到的结论才更能分层分类指导临床推广应用。

    综上所述,在结直肠癌早期病变-腺瘤的早期筛查中,本研究结果一定程度上为临床优先进行mSEPT9检测进行有效分层管理,再对阳性人群进行侵入性肠镜检查提供了一定的理论基础,这样一定程度上可增加结直肠癌或腺瘤早期筛查的阳性诊断率,并可增加该类筛查人群对肠镜检查的接受度及相应减少肠镜侵入性检查的有可能造成的并发症风险。

    本研究有一定的局限性,首先是样本量相对较少,其次是没有进行多因素的分析,因此研究结果外周血mSEPT9检测对预测结直肠腺瘤有较高的敏感性,和相对较好特异性的结论要慎重解读,后续项目组可通过优化如纳入更细分层,入组更多样本量、多中心、多因素分析及联合其他检测项目对结直肠腺瘤进行早期预测及诊断研究,以期为结直肠癌早期病变-腺瘤筛查诊断及管理提供更好的检测保障。

  • 图  1  结直肠低、高级别腺瘤的HE病理形态(×20)

    A:低级别管状腺瘤;B:低级别绒毛状管状腺瘤; C:高级别绒毛管状腺瘤;D:高级别锯齿状腺瘤。

    Figure  1.  Pathological morphology of colorectal low- and high-grade adenoma by HE staining (×20)

    图  2  外周血mSEPT9检测结果与CEA血清浓度的ROC曲线比较

    A:外周血mSEPT9甲基化ROC曲线;B:血清CEA表达水平ROC曲线。

    Figure  2.  The ROC comparison between the detection of mSEPT9 and CEA in peripheral blood

    图  3  低、高级别腺瘤组mSEPT9阳性数的比较

    Figure  3.  Comparison of mSEPT9 positivity in the low- and high-grade adenoma groups

  • [1] Wild C P, Weiderpass E, Stewart B W. World cancer report: Cancer research for cancer prevention [EB/OL]. (2020-06-20). https://publications.iarc.fr/586
    [2] E S Lander. Comprehensive molecular characterization of human colon and rectal cancer[J]. Nature,2012,487(7407):330-337. doi: 10.1038/nature11252
    [3] 黄丹 朱雄增 盛伟琪. 2019版《WHO消化系统肿瘤分类》胃肠上皮性肿瘤部分解读[J]. 2020, 49(3): 209-213.
    [4] Sun J,Zheng M Y,Li Y W,et al. Structure and function of Septin 9 and its role in human malignant tumors[J]. World J Gastrointest Oncol,2020,12(6):619-631. doi: 10.4251/wjgo.v12.i6.619
    [5] Kang Q,Jin P,Yang L,et al. Significance of Septin9 gene methylation detection of plasma circulation DNA in colorectal cancer screening[J]. Zhonghua Yi Xue Za Zhi,2014,94(48):3839-3841.
    [6] Loomans-kropp H A,Song Y,Gala M,et al. Methylated septin9 (mSEPT9): A promising blood-based biomarker for the detection and screening of early-onset colorectal cancer[J]. Cancer Res Commun,2022,2(2):90-98. doi: 10.1158/2767-9764.CRC-21-0142
    [7] Lu D C,Zhang Q F,Li L,et al. Methylated Septin9 has moderate diagnostic value in colorectal cancer detection in Chinese population: A multicenter study[J]. BMC Gastroenterol,2022,22(1):232. doi: 10.1186/s12876-022-02313-x
    [8] Warren J D, XiongW, Bunker A M, et al. Septin 9 methylated DNA is a sensitive and specific blood test for colorectal cancer [J]. BMC Med, 2011, 14: 9: 133.
    [9] Church T R,Wandell M,Lofton-day C,et al. Prospective evaluation of methylated SEPT9 in plasma for detection of asymptomatic colorectal cancer[J]. Gut,2014,63(2):317-325. doi: 10.1136/gutjnl-2012-304149
    [10] 吴东,杨红. 外周血甲基化Septin9基因联合粪便免疫化学试验对专科门诊患者结直肠癌和腺瘤的筛查[J]. 中华消化杂志,2016,36(2):107-112. doi: 10.3760/cma.j.issn.0254-1432.2016.02.007
    [11] Ma Z Y,Chan C S Y,Lau K S,et al. Application of droplet digital polymerase chain reaction of plasma methylated septin 9 on detection and early monitoring of colorectal cancer[J]. Sci Rep,2021,11(1):23446. doi: 10.1038/s41598-021-02879-8
    [12] Zhang L,Yang X Y,Zhang T L,et al. Noninvasive detection of esophageal cancer by the combination of mSEPT9 and SNCG[J]. Genet Test Mol Biomarkers,2022,26(1):8-16. doi: 10.1089/gtmb.2021.0089
    [13] Liang Q,Huang Z,Xu Q,et al. A newly developed Septin9 gene methylation assay dectecting double DNA strands for screening of colorectal cancer[J]. Cancer Res,2018,78(13):3329.
    [14] Xu F,Yu S S,Han J Y,et al. Detection of circulating tumor DNA methylation in diagnosis of colorectal cancer[J]. Clin Transl Gastroenterol,2021,12(8):e00386. doi: 10.14309/ctg.0000000000000386
    [15] Mo S B,Wang H,Han L Y,et al. Fecal multidimensional assay for non-invasive detection of colorectal cancer: Fecal immunochemical test,stool DNA mutation,methylation,and intestinal bacteria analysis[J]. Front Oncol,2021,36(2):643136. doi: 10.3389/fonc.2021.643136
  • [1] 朱东平, 李海峰, 冯俊飞, 汤秋恒, 冷静.  肺部结节或肿块患者肺泡灌洗液SHOX2和RASSF1A基因甲基化在肺癌诊断中的价值, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20240316
    [2] 刘华, 岳万远, 邵帅, 孙家平, 杨莹, 代晓明.  基因体甲基化在舌粘膜癌变中的变化, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20240704
    [3] 尹文卅, 卢玉梅, 佟金莲, 聂胜洁, 阮冶.  DNA甲基化与精神分裂症的研究进展, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20230811
    [4] 苟海梅, 方莉, 钟晓武.  KRAS、NRAS及BRAF基因突变与结直肠癌肝转移的关系, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20230106
    [5] 王缘, 李蓉, 陈娇娇, 申艳丽, 胡凤娣.  粪便SDC2基因甲基化检测在结直肠癌早期筛查的临床价值, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20230524
    [6] 毛俊鸿, 鲁丹枫, 徐玉, 代毅聪, 张哲瑞, 李悦, 王昆华.  甲基苯丙胺改变成瘾小鼠突触可塑性基因的甲基化修饰, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20220121
    [7] 陈昌贤, 张丽菊, 姜晓明, 张振勇, 刘为军.  结直肠神经内分泌肿瘤的治疗进展, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20201242
    [8] 杨金荣, 阮经艳, 曾云, 武坤, 聂波, 王雪娇.  DNMT3A在IDH1致急性髓系白血病基因组高甲基化中的作用, 昆明医科大学学报.
    [9] 陈思宇, 杨乐, 陈黄鸿, 付帅, 吴勇.  醋酸棉酚对人舌鳞癌Cal-27细胞ER基因甲基化和mRNA表达的影响, 昆明医科大学学报.
    [10] 相立峰, 王青青, 李明颖, 曾鹏, 李永刚.  印记基因H19在不同质量精子和胚胎中的甲基化状态, 昆明医科大学学报.
    [11] 伍刚.  乙肝病毒X蛋白通过DNA甲基化沉默肝癌中miR-338表达, 昆明医科大学学报.
    [12] 赵斐, 姜焰凌, 张寿勋, 夏生, 鲍建军, 张柠, 杨晓佩, 钟树荣.  DNA甲基化的焦磷酸测序通过率, 昆明医科大学学报.
    [13] 杨晓佩, 姜焰凌, 阮冶, 张寿勋, 赵斐, 张柠, 夏生, 钟树荣.  OPRM1基因DNA甲基化在物质依赖中的研究进展, 昆明医科大学学报.
    [14] 岳万远.  醋酸棉酚对人腺样囊性癌ACC-M细胞P16基因甲基化及mRNA表达的影响及其意义, 昆明医科大学学报.
    [15] 张明谦.  ANKRD18B基因在大肠癌中的甲基化与表达, 昆明医科大学学报.
    [16] 贺振新.  多发性骨髓瘤中细胞因子信号转导抑制因子1(SOCS1)基因异常甲基化的研, 昆明医科大学学报.
    [17] 翟宇强.  膀胱癌组织中白细胞介素-12B 基因启动子区甲基化的变化及其意义, 昆明医科大学学报.
    [18] 闫婷.  砒霜厂工人Bcl-2基因相对表达与尿砷甲基化产物的关系, 昆明医科大学学报.
    [19] 杜兴华.  ALX4基因在肿瘤中的甲基化与表达, 昆明医科大学学报.
    [20] 殷亮.  结直肠癌治疗进展, 昆明医科大学学报.
  • 加载中
图(3)
计量
  • 文章访问数:  1038
  • HTML全文浏览量:  708
  • PDF下载量:  13
  • 被引次数: 0
出版历程
  • 收稿日期:  2023-11-20
  • 网络出版日期:  2024-03-13
  • 刊出日期:  2024-03-30

目录

/

返回文章
返回