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LC-MS/MS法研究酒精对人体血液中内源性GHB的影响

罗芳 赵瑞斌 李国军 付旭宪 范贤谋 苏少明 文云波 黄齐林 李斌

罗芳, 赵瑞斌, 李国军, 付旭宪, 范贤谋, 苏少明, 文云波, 黄齐林, 李斌. LC-MS/MS法研究酒精对人体血液中内源性GHB的影响[J]. 昆明医科大学学报, 2024, 45(5): 170-177. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20240526
引用本文: 罗芳, 赵瑞斌, 李国军, 付旭宪, 范贤谋, 苏少明, 文云波, 黄齐林, 李斌. LC-MS/MS法研究酒精对人体血液中内源性GHB的影响[J]. 昆明医科大学学报, 2024, 45(5): 170-177. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20240526
Fang LUO, Ruibin ZHAO, Guojun LI, Xuxian FU, Xianmou FAN, Shaoming SU, Yunbo WEN, Qilin HUANG, Bin LI. Researches on the Effect of Alcohol on Endogenous GHB in Human Blood by LC-MS/MS Method[J]. Journal of Kunming Medical University, 2024, 45(5): 170-177. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20240526
Citation: Fang LUO, Ruibin ZHAO, Guojun LI, Xuxian FU, Xianmou FAN, Shaoming SU, Yunbo WEN, Qilin HUANG, Bin LI. Researches on the Effect of Alcohol on Endogenous GHB in Human Blood by LC-MS/MS Method[J]. Journal of Kunming Medical University, 2024, 45(5): 170-177. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20240526

LC-MS/MS法研究酒精对人体血液中内源性GHB的影响

doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20240526
基金项目: 云南省刑事科学技术重点实验室创新研究基金资助项目(YNPL-S2021001)
详细信息
    作者简介:

    罗芳(1980~),女,重庆万州人,理学学士,高级工程师,主要从事法医毒物分析工作

    通讯作者:

    付旭宪, E-mail:184152817@qq.com

  • 中图分类号: DF795.4

Researches on the Effect of Alcohol on Endogenous GHB in Human Blood by LC-MS/MS Method

  • 摘要:   目的  运用LC-MS/MS法研究酒精对人体血液中内源性GHB含量的影响。  方法  建立血液中γ-羟基丁酸(GHB)、γ-丁内酯(GBL)和1,4-丁二醇(1,4-BD)的LC-MS/MS法,以22名健康受试者为研究对象,模拟真实案例饮酒,测定研究对象饮酒前、饮酒7 h后血液中内源性GHB的含量,比较饮酒前后血液中内源性GHB的含量。  结果  GHB在0.1~50 µg/mL浓度范围、GBL和1,4-BD在0.15~50 µg/mL浓度范围内,线性关系良好(R2 > 0.999),GHB、GBL和1,4-BD的检出限分别为0.015 µg/mL,0.025 µg/mL和0.01 µg/mL,定量限分别为0.1µg/mL,0.15 µg/mL和0.15 µg/mL。3种目标物的基质效应在18.2%~20.1%之间,回收率为81.6 %~92.3%,日内和日间精密度RSD均小于10%,准确度为-5.8%~7.0%。饮酒7 h后血液中内源性GHB浓度范围为0.71~3.81 µg/mL,相比饮酒前GHB含量升高,差异有统计学意义(P < 0.05)。  结论  饮酒7 h后人体血液中内源性GHB含量增高,但浓度低于4 µg/mL,为真实案例涉及的内外源性GHB的判定提供数据支持,丰富了GHB的法医毒物学数据。
  • γ-羟基丁酸(γ-hydroxybutyric acid,GHB),别名4-羟基丁酸,分子式C4H8O3,相对分子质量为104.106,为粉末状或无色、无味液体,GHB为强效中枢神经系统抑制剂,摄入人体后可导致暂时性记忆丧失,又称“听话水”或“迷奸水”,为我国规定管制的第一类精神药品。GHB目前滥用严重,引发了大量的药物辅助性犯罪(drug-facilitated sexual assault,DSFA)案件[12],因此,GHB的分析检测已成为法医学实践中的重要工作之一。由于GHB为哺乳动物体内存在的内源性神经递质,在处理GHB相关的DSFA案件时,判定GHB的来源(内源性或外源性?),已成为涉及GHB案/事件性质判定及死因认定的难题。在法医学实践中,经常出现GHB与酒精共同使用的情形,这使得司法鉴定的难度更大,但目前鲜见酒精对人体血液中内源性GHB影响的报道,因此,研究酒精对内源性GHB的影响具有必要性。

    酒精和GHB都属于中枢神经系统抑制剂,外源性GHB能与GABAb受体结合发挥镇静作用。同时,GHB还可与酒精竞争GABAb受体,具有缓解酒依赖或治疗酒精戒断综合征的作用[3]。有关酒精对GHB的影响研究结果主要来源于动物实验或尸体检材的统计学数据。Moriya F等[4]研究喝酒和吸烟对尿液中内源性GHB的影响,发现尼古丁能够在夜间增加尿液中内源性GHB的释放,而酒精对尿液中内源性GHB的释放无影响。PoldrugoF等[5]研究认为酒精会增加内源性1,4-BD在大鼠组织中的分布,并增强1,4-BD的毒性作用。Jung等[6]研究了酒精和GHB的相互作用及药(毒)代动力学,发现乙醇会诱导GHB的中枢抑制作用,延长大鼠的睡眠时间。在法医学实践中常用50 µg/mL作为血液中内外源性GHB的判定阈值,而该阈值浓度主要来源于尸体检材中GHB的统计学数据[710],目前,鲜见关于酒精影响下血液中GHB的含量数据,因此,为实现精准法医学鉴定,提升司法鉴定的证据效用,亟需研究酒精对人体血液中内源性GHB的影响。

    本研究为解决1例涉及疑似酒精和GHB合用的重特大案件的法医学问题,首先建立了人体血液中GHB及其2种前体物质GBL和1,4-BD的LC-MS/MS检测方法,并以22名健康受试者为研究对象,饮酒时模拟该案的案情经过,测定研究对象饮酒前、饮酒7 h后血液中内源性GHB的含量,研究饮酒7 h后人体(活体)血液中内源性GHB的含量变化,为真实案例和类似案例涉及的内外源性GHB的判定提供数据支持,丰富酒精对人体血液中内源性GHB影响的法医毒物学数据。

    仪器: Agilent 1290/6470型LC-MS/MS液质联用仪(美国Agilent公司);高速离心机(US Beckman公司);涡旋混合仪(ShangHaiYiheng Technology Co.,Ltd);电子天平(美国METTLER TOLEDO公司);JOYN-308超声波清洗机(Shanghai Qiaoyue Electronic Technology Co,Ltd);0.22 µm有机微孔滤膜(Tianjin JintengCo,Ltd);移液器(US Eppendorf Company)。

    试剂:γ-羟基丁酸钠甲醇溶液(100 µg/mL)、GHB-D6甲醇溶液(100 µg/mL)、GBL-丙酮溶液(100 µg/mL)、1,4-BD-甲醇溶液(100 µg/mL)均购于天津阿尔塔科技有限公司,甲醇(HPLC级购于美国Fisher Scientific公司),氟化钠(分析纯购于上海陆都化学试剂厂),实验水为屈臣氏纯净水,饮用酒为大理啤酒(云南大理啤酒股份有限公司,酒精度为4度)。

    1.2.1   研究对象

    22名健康受试者均为自愿参加本研究,并签署知情同意书。

    1.2.2   实验分组

    将22名健康受试者,随机分为3组,低饮酒量组7名(3次饮酒量共计1000 mL)、中饮酒量组8名(3次饮酒量共计2000 mL)、高饮酒量组7名(3次饮酒量共计4000 mL),3组均模拟案情中的饮酒过程分3个时间段饮酒(用餐后2 h第1次饮酒,3次饮酒间隔时间均为2 h,在不同场所餐后或随餐饮酒期间,均同时饮用冰红茶/苏打水等饮料),3次饮酒量比例为2∶1∶1。

    1.2.3   静脉血的采集

    依据静脉血液标本采集指南[11](WS/T661-2020),分别于饮酒前和饮酒7 h后采集静脉血5 mL于真空抗凝管中(内含肝素),混匀后置于-20 ℃冷冻保存备用。

    1.3.1   空白血样制备

    取健康空白人血(筛选出GHB浓度最低的血液作为空白血)100 µL,加入100 µL内标工作液GHB-d6 (10 µg/mL),再加入800 µL甲醇∶水(1∶1),得到添加内标浓度为1 µg/mL的空白血样,涡旋混匀30 s,超声10 min,9000 r/min离心10 min,移取上清液,有机滤膜(0.22 µm)过滤,得到空白血样,待检。

    1.3.2   空白血添加样的制备

    取健康空白人血100 µL共2份,加入100 µL内标工作液GHB-d6 (10 µg/mL),添加10 µLGHB及其2种前体物质的混标溶液(浓度为100 µg/mL)后,再加入790 µL甲醇∶水(1∶1),配制成GHB及其2种前体物质浓度为1 µg/mL的空白血加标样,按1.3.1方法处理,得到空白血添加样(3种目标物浓度均为1 µg/mL),待检。

    1.3.3   校准系列样品制备

    取健康空白人血100 µL共20份,各加入100 µL内标工作液GHB-d6(10 µg/mL)后,分别添加适量GHB及其2种前体物质的混标溶液后,再加入适量的甲醇∶水(1∶1)使总体积为1 mL,配制成系列浓度的空白血加标样,按1.3.1方法处理,得到浓度为0.1 µg/mL、0.15 µg/mL、0.2 µg/mL、0.5 µg/mL、1 µg/mL、2.5 µg/mL、5 µg/mL、10 µg/mL、25 µg/mL、50 µg/mL的校准系列浓度样品(每个浓度2份平行样),用于测绘校准曲线。

    1.3.4   待测样品制备

    分别取22名健康受试者饮酒前和饮酒7 h后的静脉血100 µL各2份,各加入100 µL内标工作液GHB-d6 (10 µg/mL),再加入800 µL甲醇∶水(1∶1)后,按1.3.1方法处理,得到22名健康受试者饮酒前和饮酒7 h后的静脉血待测样品,待检。

    1.4.1   色谱条件

    色谱柱:Waters T3 (2.1 mm×100 mm,1.8 µm);流动相A:超纯水,流动相B:甲醇;柱温:30 ℃;流速:0.3 mL/min;进样量:5 µL;后平衡时间1.0 min,梯度洗脱条件,见表1

    表  1  HPLC梯度洗脱条件
    Table  1.  HPLC gradient elution conditions
    时间/min流动相A(%)流动相B(%)
    0.009010
    0.59010
    2.51090
    3.01090
    3.19010
    6.09010
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    1.4.2   质谱条件

    离子源:电喷雾电离源(electrospray ionization,ESI),动态多反应监测(dynamic multiple reaction monitoring,d-MRM)正、负离子模式扫描。干燥气温度300 ℃;干燥气流速5 L/min;鞘气温度350 ℃,鞘气流速11 L/min;毛细管电压为:3500 V,喷嘴电压:500 V;喷雾器压力为45 psi。

    1.4.3   方法学考察

    (1)线性和灵敏度考察。 在1.4.1检测条件下,分别测定1.3.3得到的校准系列样品(浓度为0.1 µg/mL、0.15 µg/mL、0.2 µg/mL、0.5 µg/mL、1 µg/mL、2.5 µg/mL、5 µg/mL、10 µg/mL、25 µg/mL、50 µg/mL),以峰面积比值(各目标物的定量离子峰面积/内标定量离子峰面积)为纵坐标(Y)、以校准系列样品中添加的对应目标物浓度为横坐标(X),进行线性回归,计算得到3种目标物的校准曲线。检出限、定量限确定:依据校准曲线最低浓度点的信噪比,配制低浓度空白血添加样品,在1.4.1检测条件下检测,以信噪比(signal-noise ratio,S/N)大于3作为检出限(limit of detection,LOD)的检验水准,以(S/N)大于10,且相对误差≤±20%,作为最低定量限(limit of quantification,LOQ)的检验水准,分别计算得到3种目标物的检出限和定量限。(2)基质效应和回收率考察。配制浓度为1 µg/mL、5 µg/mL、25 µg/mL的GHB、1,4-BD和GBL的混标溶液;另取6份1.3.1制备得到的空白血样残渣,分别添加适量的3种目标物混合标准溶液,配制成3种目标物浓度均为1 µg/mL、5 µg/mL、25 µg/mL的空白血基质后添加样品(每个浓度2份平行样);同时按1.3.2制备3种目标物浓度均为1 µg/mL、5 µg/mL、25 µg/mL的空白血添加样品(每个浓度2份平行样),在1.4.1检测条件下测定上述样品,分别计算不同浓度混标溶液中各目标物定量离子峰面积平均值Astd、不同浓度空白血基质后添加样品中各目标物定量离子峰面积平均值Am、不同浓度空白血添加样品中各目标物定量离子峰面积平均值As,依据公式As/Am×%100计算提取回收率、依据(Am/Astd-1)×%100计算基质效应。(3)精密度考察。按1.3.2制备3种目标物浓度均为1 µg/mL、5 µg/mL、25 µg/mL的空白血添加样品(n=6),在1.4.1检测条件下进行5个批次的检测。前3个批次分别在同1 d内的早、中、晚进行样品检测,后两个批次分别在接下来的2 d进行检测。分别记录各目标物定量离子峰面积,计算相同目标物对应浓度定量离子峰面积的相对标准偏差(RSD),精密度用相对标准偏差(relative standard deviation,RSD)表示。不同浓度各目标物定量离子峰面积,经线性方程计算获得各样品中3种目标物的测定值,再计算准确度(偏倚值表示)。(4)稳定性考察。据文献报道[5],在样本储存过程中,血液中GHB的浓度中会增加,因此,取适量空白血液,加入不同浓度的3种目标物的混标应用液及氟化钠溶液,配制质量浓度分别为5 µg/mL、25 µg/mL、40 µg/mL的空白血添加样27份,每个浓度9份(每份样品内含1%的氟化钠)。将样品分成3组:1组于-20 ℃冷冻24 h后在37 ℃水浴溶解,经历3次冷冻循环;2组于-20 ℃冷冻保存15 d,第3组即时按1.3.2处理后测定。每组每1浓度进样分析3次,进样后室温放置24 h后再次进样分析,以第3组样品的保留时间、离子丰度比的相对误差为定性判定参照,以各目标物对应浓度定量离子峰面积为定量参照,计算第1、2组3个目标物不同浓度定量离子峰面积的相对标准偏差。

    采用SPSS26.0软件对数据进行处理,计量资料用均数±标准差($ \bar x \pm s $)表示,饮酒前后差异采用配对t检验。检验水准α取0.05,以 P < 0.05为差异有统计学意义。

    2.1.1   质谱条件的优化

    采用ESI电离源,运用d-MRM扫描模式,优化碎裂电压、碰撞能量等质谱参数,使目标物和内标的准分子离子与特征碎片离子产生的离子对响应值最大,得到4种化合物的质谱参数,见表2

    表  2  GHB、GHB-d6、1,4-BD、GBL的d-MRM离子、碎裂电压及碰撞能
    Table  2.  The acquisition parameters ,fragmentation voltage and collision energy of d-MRM ,GHB,GHB-d6,1,4-BD,GBL
    目标物 扫描模式 母离子(m/z) 子离子(m/z) 碎裂电压(v) 碰撞能(ev)
    GHB ESI- 103.0 103.0/85.1* 65 8
    103.0/57.1 12
    GHB-d6 ESI- 109.0 109.0/61.1* 60 8
    109.0/90.0 16
    1,4-BD ESI+ 91.1 91.1/73.0* 30 4
    91.1/55.0 12
    GBL ESI+ 87.0 87.0/45* 66 20
    87.0/43 24
      注:*为定量离子。
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    2.1.2   流动相的选择

    研究发现,选用甲醇为有机相,其分离度和色谱峰型优于乙腈。本实验还分别考察了0.2 mL/min、0.25 mL/min、0.3 mL/min、0.35 mL/min、0.4 mL/min的流速及流动相洗脱梯度的分析效果,结果表明在0.3 mL/min流速条件下,采用表1的洗脱梯度,可实现GHB、1,4-BD和GBL的保留和有效分离,见图1图2

    图  1  GHB、GHB-d6、1,4-BD和GBL 4种混标(1 µg/mL)的TIC色谱峰图
    Figure  1.  TIC chromatograms of GHB,GHB-d6,1,4-BD,and GBL mixed standards (1 µg/mL)
    图  2  GHB、GHB-d6、1,4-BD、GBL 4种混标(1 µg/mL)的d-MRM色谱图
    Figure  2.  D-MRM chromatograms of GHB,GHB-d6,1,4-BD,and GBL mixed standards (1 µg/mL)
    2.2.1   线性关系、方法的检出限、定量限

    经1.4.3(1)标准曲线绘制得到3种目标物的校准曲线,见表3。结果表明:GHB在0.1~50 µg/mL浓度范围、GBL和1,4-BD在0.15~50 µg/mL浓度范围内线性关系良好(R2 > 0.999)。可得GHB、GBL和1,4-BD的检出限分别为0.015 µg/mL,0.025 µg/mL和0.01 µg/mL;定量限分别为0.1 µg/mL,0.15 µg/mL和0.15 µg/mL。

    表  3  血液中GHB、1,4-BD、GBL的校准曲线、检出限和定量限
    Table  3.  Calibration curve ,detection limit and quantitation limit of GHB 1,4-BD GBL in blood
    化合物 线性范围(µg/mL) 线性回归方程 R2 检出限(µg/mL) 定量限(µg/mL)
    GHB 0.1~50 У=22.288925X−0.955609 0.9993 0.015 0.1
    1,4BD 0.15~50 У=151049.912950X+57464.367658 0.9992 0.01 0.15
    GBL 0.15~50 У=16316.378144X+105811.540171 0.9995 0.025 0.15
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    2.2.2   基质效应和回收率

    经1.4.1(2)结果表明:3种目标物的提取回收率在81.6 %~92.3 %之间,基质效应均在18.2%~20.1%以内,其相对标准偏差(RSD)在7.0%以内(<15%),该方法的提取回收率高,基质效应影响在可接受范围内(<±25%),见表4

    表  4  3种目标物的基质效应与提取回收率 (%)
    Table  4.  Matrix effects and extraction recovery rates of three target substances(%)
    化合物
    名称
    浓度
    (µg/mL)
    基质
    效应
    相对标准
    偏差RSD
    提取
    回收率
    相对标准
    偏差RSD
    GHB120.04.681.96.3
    520.13.886.24.2
    2519.86.192.34.8
    1,4-BD118.24.681.66.4
    518.43.987.44.5
    2519.02.389.36.7
    GBL119.26.283.74.4
    518.91.385.63.2
    2518.25.184.54.6
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    2.2.3   日内精密度和日间精密度

    经1.4.1(3)结果显示各目标物峰面积的日内精密度的RSD在1.2 %~8.8%,日间精密度的RSD在1.4 %~9.8%;日内日间RSD均在15%以内,见表5。不同浓度各目标物定量离子峰面积,经线性方程计算获得各样品中3种目标物的测定值,再计算准确度(偏倚值表示),结果表明,GHB、1,4-BD和GBL的偏倚值分别为-4%~0.8%、-5.8~-0.52%、-0.08~7%,偏倚值均在允许范围内(<±15%)。

    表  5  3种目标物的精密度及准确度
    Table  5.  Precision and accuracy of 3 target substances
    目标物 添加浓度(µg/mL) 日内精密度 日间精密度
    平均检测浓度
    (µg/mL)
    相对标准偏差
    RSD (%)
    偏倚值
    (%)
    平均检测浓度
    (µg/mL)
    相对标准偏差
    RSD (%)
    偏倚值
    (%)
    GHB 1 0.96 5.4 −4.0 1.02 4.8 −2.0
    5 5.04 6.4 0.8 4.93 9.5 1.4
    25 24.83 7.7 −0.68 24.92 3.8 −0.32
    1,4-BD 1 0.95 4.3 −5.0 0.98 7.4 −2.0
    5 4.71 2.2 −5.8 4.93 7.3 −1.4
    25 24.87 2.6 −0.52 24.96 7.3 −0.16
    GBL 1 1.07 8.8 7.0 0.98 9.8 −2.0
    5 5.01 4.6 0.2 5.03 5.6 0.6
    25 24.98 1.2 −0.08 25.02 1.4 −0.08
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    2.2.4   稳定性

    经1.4.3(4)得到第1、2组3个目标物不同浓度定量离子峰面积RSD<5.0%,定量偏倚值均<15.0%,结果表明,血液中的GHB冻融稳定性、长期稳定性、处理后样品的稳定性均符合生物样品测定的要求。

    2.3.1   饮酒前后血液中GHB含量测定

    在1.4.1检测条件下,分别测定1.3.4制备得到的22名健康受试者饮酒前、饮酒7 h后的待测样品,采用2.2.1的校准曲线进行各待测样品中3种目标物的定量分析,得到的22名健康受试者饮酒前、饮酒7 h后血液中GHB浓度,见表6

    表  6  饮酒前和饮酒7 h后血液中GHB和酒精含量检测结果(µg/mL)
    Table  6.  GHB and alcohol content in blood before and 7 hours after drinking alcohol (µg/mL)
    志愿者 性别 实验分组 饮酒量(mL) 饮酒前 饮酒7 h后
    GHB GHB量
    1 低剂量组 1000 0.63 0.84
    2 0.66 0.81
    3 0.84 1.22
    4 0.34 0.71
    5 1.69 2.02
    6 0.86 0.99
    7 0.71 0.77
    8 中剂量组 2000 0.28 1.26
    9 0.76 1.58
    10 0.49 1.34
    11 1.29 1.71
    12 1.52 3.81
    13 1.14 3.14
    14 1.50 1.87
    15 0.96 2.86
    16 高剂量组 4000 0.71 0.86
    17 1.22 1.67
    18 0.62 0.87
    19 1.86 2.26
    20 1.68 1.88
    21 1.49 2.36
    22 1.11 2.80
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    2.3.2   饮酒对血液中内源性GHB含量的影响

    饮酒对血液中内源性GHB含量的影响有统计学意义,饮酒7h后血液中内源性GHB的含量高于饮酒前血液中内源性GHB的含量(P < 0.05),见表7

    表  7  饮酒前和饮酒7 h后血液中内源性GHB含量的情况[($ \bar x \pm s $),µg/mL]
    Table  7.  The content of endogenous GHB levels in the blood before and 7 hours after drinking [($ \bar x \pm s $),µg/mL]
    组别 n 饮酒前 饮酒7 h后 饮酒前后差值 t P
    实验组 22 1.02±0.47 1.71±0.87 0.69±0.40 −4.840 0.000*
      *P < 0.05。
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    案例:xx年xx月x日,一女子饮酒后不明原因落水,48 h后被发现并打捞,尸体解剖后提取锁骨下静脉血进行毒物分析检验,检验结果为:锁骨下静脉血中检出酒精浓度为96.0 mg/100 mL,未检出其他常见毒物毒品。后经案情调查了解到:该女子落水前9 h曾3次(用餐后2 h第1次饮酒,3次饮酒间隔时间均接近2 h,饮酒7 h后落水)在不同场所餐后或随餐饮酒,其间均同时饮用冰红茶/苏打水等饮料;该女子3次共饮用酒精度为4度的啤酒4瓶(500 mL/瓶),且涉嫌饮用添加有GHB的啤酒及饮料的可能。因此,应用本文中建立的LC-MS/MS法对血液中GHB进行检测,检测结果见表8

    表  8  案例血液样品中GHB(μg/mL)、酒精(mg/100 mL)的含量
    Table  8.  Contents of GHB (μg/mL)and alcohol (mg/100 mL)in case blood samples
    样品名称目标物检测结果
    锁骨下静脉血GHB10
    锁骨下静脉血酒精96
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    本研究建立了人体血液中GHB及其2种前体物质GBL和1,4-BD的LC-MS/MS检测方法,方法验证结果表明方法的灵敏度高、准确性好,适用于实际案件人体血液中GHB及其2种前体物质的检测。采用本文建立的LC-MS/MS方法测定模拟实际案例饮酒方式的22名健康受试者饮酒前、饮酒7 h后血液中GHB的含量,饮酒前静脉血中GHB的浓度范围为0.28~1.86 µg/mL,平均值为1.02 µg/mL,饮酒7 h后静脉血中GHB的浓度范围为0.71~3.81 µg/mL,平均值为1.71 µg/mL,统计学分析表明饮酒7 h后血液中GHB含量高于饮酒前(P < 0.05),但浓度增幅范围为8.0%~350.0%,可能与样本量有限、乙醇体内代谢、个体差异、饮酒方式有关。

    本研究结果说明,模拟实际案例饮酒7 h后人体血液中GHB的含量会升高,但浓度均低于4 µg/mL;而实际案例尸体血液(锁骨下静脉血)中的GHB含量为10.0 g/mL,比模拟案例的研究结果(<4 µg/mL)更高。分析原因可能与实际案例尸体所处环境的温湿度及生前饮酒有关。例如有研究发现,死后尸体会产生GHB,且死后产生的GHB与性别、年龄和死亡方式无关,但与生前摄入毒物、尸体的储存环境、尸体的腐败程度相关[ 791213]。 Darke S[14]等分析了生前口服过GHB的74例尸体血中GHB的浓度,发现生前有酒精、新精神活性物质和安眠药等摄入史均会引起血液中GHB的显著升高,平均浓度达到210 μg/mL(浓度范围为13~1350 μg/mL),实际案例检测结果(10.0 μg/mL)在文献报道值[791216]的范围内,结合实际案例中死者落水时的河水水温约为20 ℃,尸体在水中浸泡了48 h,结合尸体征象及解剖所见,不能排除死后产生GHB导致其血液中GHB升高的可能。因此,结合本研究结果可以初步判定实际案例血中GHB为内源性或死后产生,该结论与后续案情调查结果吻合,可为后续实际案例的性质判定和侦破提供证据和线索。

    模拟实际案例饮酒方式的22名健康受试者饮酒7 h后静脉血液中内源性GHB的含量均较饮酒前高,表明乙醇可诱导内源性GHB的释放增加,其机制可能和酒精与GABA受体结合后刺激GABA的产生,造成血液中GABA转化产生的GHB增多[17],具体机制有待进一步研究。因本研究主要为解决实际案例问题而设计,故未研究饮酒后不同时间血液中内源性GHB的变化,因此不能解释乙醇诱导内源性GHB增加的原因。但本研究结果可以说明,对于未摄入过GHB的人体,饮酒方式与本研究相似时,饮酒7 h后静脉血中内源性GHB的浓度常低于4 µg/mL,在法医学实践中,当血液中GHB的浓度大于4 µg/mL时应综合考虑案情、饮酒时间、饮酒方式、血液采集时间、样本来源、尸体保存条件等因素对血液中GHB的影响,才能客观科学的判定血液中GHB的来源。

  • 图  1  GHB、GHB-d6、1,4-BD和GBL 4种混标(1 µg/mL)的TIC色谱峰图

    Figure  1.  TIC chromatograms of GHB,GHB-d6,1,4-BD,and GBL mixed standards (1 µg/mL)

    图  2  GHB、GHB-d6、1,4-BD、GBL 4种混标(1 µg/mL)的d-MRM色谱图

    Figure  2.  D-MRM chromatograms of GHB,GHB-d6,1,4-BD,and GBL mixed standards (1 µg/mL)

    表  1  HPLC梯度洗脱条件

    Table  1.   HPLC gradient elution conditions

    时间/min流动相A(%)流动相B(%)
    0.009010
    0.59010
    2.51090
    3.01090
    3.19010
    6.09010
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    表  2  GHB、GHB-d6、1,4-BD、GBL的d-MRM离子、碎裂电压及碰撞能

    Table  2.   The acquisition parameters ,fragmentation voltage and collision energy of d-MRM ,GHB,GHB-d6,1,4-BD,GBL

    目标物 扫描模式 母离子(m/z) 子离子(m/z) 碎裂电压(v) 碰撞能(ev)
    GHB ESI- 103.0 103.0/85.1* 65 8
    103.0/57.1 12
    GHB-d6 ESI- 109.0 109.0/61.1* 60 8
    109.0/90.0 16
    1,4-BD ESI+ 91.1 91.1/73.0* 30 4
    91.1/55.0 12
    GBL ESI+ 87.0 87.0/45* 66 20
    87.0/43 24
      注:*为定量离子。
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    表  3  血液中GHB、1,4-BD、GBL的校准曲线、检出限和定量限

    Table  3.   Calibration curve ,detection limit and quantitation limit of GHB 1,4-BD GBL in blood

    化合物 线性范围(µg/mL) 线性回归方程 R2 检出限(µg/mL) 定量限(µg/mL)
    GHB 0.1~50 У=22.288925X−0.955609 0.9993 0.015 0.1
    1,4BD 0.15~50 У=151049.912950X+57464.367658 0.9992 0.01 0.15
    GBL 0.15~50 У=16316.378144X+105811.540171 0.9995 0.025 0.15
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    表  4  3种目标物的基质效应与提取回收率 (%)

    Table  4.   Matrix effects and extraction recovery rates of three target substances(%)

    化合物
    名称
    浓度
    (µg/mL)
    基质
    效应
    相对标准
    偏差RSD
    提取
    回收率
    相对标准
    偏差RSD
    GHB120.04.681.96.3
    520.13.886.24.2
    2519.86.192.34.8
    1,4-BD118.24.681.66.4
    518.43.987.44.5
    2519.02.389.36.7
    GBL119.26.283.74.4
    518.91.385.63.2
    2518.25.184.54.6
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    表  5  3种目标物的精密度及准确度

    Table  5.   Precision and accuracy of 3 target substances

    目标物 添加浓度(µg/mL) 日内精密度 日间精密度
    平均检测浓度
    (µg/mL)
    相对标准偏差
    RSD (%)
    偏倚值
    (%)
    平均检测浓度
    (µg/mL)
    相对标准偏差
    RSD (%)
    偏倚值
    (%)
    GHB 1 0.96 5.4 −4.0 1.02 4.8 −2.0
    5 5.04 6.4 0.8 4.93 9.5 1.4
    25 24.83 7.7 −0.68 24.92 3.8 −0.32
    1,4-BD 1 0.95 4.3 −5.0 0.98 7.4 −2.0
    5 4.71 2.2 −5.8 4.93 7.3 −1.4
    25 24.87 2.6 −0.52 24.96 7.3 −0.16
    GBL 1 1.07 8.8 7.0 0.98 9.8 −2.0
    5 5.01 4.6 0.2 5.03 5.6 0.6
    25 24.98 1.2 −0.08 25.02 1.4 −0.08
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    表  6  饮酒前和饮酒7 h后血液中GHB和酒精含量检测结果(µg/mL)

    Table  6.   GHB and alcohol content in blood before and 7 hours after drinking alcohol (µg/mL)

    志愿者 性别 实验分组 饮酒量(mL) 饮酒前 饮酒7 h后
    GHB GHB量
    1 低剂量组 1000 0.63 0.84
    2 0.66 0.81
    3 0.84 1.22
    4 0.34 0.71
    5 1.69 2.02
    6 0.86 0.99
    7 0.71 0.77
    8 中剂量组 2000 0.28 1.26
    9 0.76 1.58
    10 0.49 1.34
    11 1.29 1.71
    12 1.52 3.81
    13 1.14 3.14
    14 1.50 1.87
    15 0.96 2.86
    16 高剂量组 4000 0.71 0.86
    17 1.22 1.67
    18 0.62 0.87
    19 1.86 2.26
    20 1.68 1.88
    21 1.49 2.36
    22 1.11 2.80
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    表  7  饮酒前和饮酒7 h后血液中内源性GHB含量的情况[($ \bar x \pm s $),µg/mL]

    Table  7.   The content of endogenous GHB levels in the blood before and 7 hours after drinking [($ \bar x \pm s $),µg/mL]

    组别 n 饮酒前 饮酒7 h后 饮酒前后差值 t P
    实验组 22 1.02±0.47 1.71±0.87 0.69±0.40 −4.840 0.000*
      *P < 0.05。
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    表  8  案例血液样品中GHB(μg/mL)、酒精(mg/100 mL)的含量

    Table  8.   Contents of GHB (μg/mL)and alcohol (mg/100 mL)in case blood samples

    样品名称目标物检测结果
    锁骨下静脉血GHB10
    锁骨下静脉血酒精96
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出版历程
  • 收稿日期:  2024-01-12
  • 网络出版日期:  2024-04-29
  • 刊出日期:  2024-05-31

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