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硫利达嗪抗宫颈癌的潜在作用机制

谢芹 赵春阳 张葆溯 赵洪波

谢芹, 赵春阳, 张葆溯, 赵洪波. 硫利达嗪抗宫颈癌的潜在作用机制[J]. 昆明医科大学学报, 2022, 43(3): 13-20. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20220317
引用本文: 谢芹, 赵春阳, 张葆溯, 赵洪波. 硫利达嗪抗宫颈癌的潜在作用机制[J]. 昆明医科大学学报, 2022, 43(3): 13-20. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20220317
Liu Yu . The Value of Renal Tubular Injury Biomarkers in Diagnosis of Primary Nephrotic Syndrome[J]. Journal of Kunming Medical University, 2016, 37(06).
Citation: Qin XIE, Chunyang ZHAO, Baosu ZHANG, Hongbo ZHAO. Potential Mechanism of Thioridazine in Anti-cervical Cancer[J]. Journal of Kunming Medical University, 2022, 43(3): 13-20. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20220317

硫利达嗪抗宫颈癌的潜在作用机制

doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20220317
基金项目: 云南省科技厅-昆明医科大学应用基础研究联合专项基金资助项目(202101AY070001-075);云南省教育厅科学研究基金资助项目(2021J0226)
详细信息
    作者简介:

    谢芹(1997~),女,四川安岳人,在读硕士研究生,主要从事生物信息,网络药理学研究工作

    通讯作者:

    赵洪波,E-mail:zhaohongbo@kmmu.edu.cn

  • 中图分类号: R737.3

Potential Mechanism of Thioridazine in Anti-cervical Cancer

  • 摘要:   目的  运用生物信息学分析, 探讨硫利达嗪抗宫颈癌的潜在作用机制。  方法  通过PharmMapper工具预测能够与硫利达嗪相互作用的靶基因,然后使用STRING在线工具对靶基因进行通路和组织表达富集分析。使用GeneCards和DisGeNET数据库筛选宫颈癌相关基因,与硫利达嗪的靶基因取交集,得到硫利达嗪可能作用于宫颈癌的交互基因。通过STRING构建蛋白互作(PPI)网络,推测核心靶点,评估其重要性。使用clusterProfiler软件进行GO和KEGG通路分析。  结果  通过PharmMapper预测得到47个靶基因,富集到肿瘤相关通路和宫颈癌细胞。与669个宫颈癌基因取交集,获得硫利达嗪和宫颈癌交互基因21个,其中10个关键节点基因为EGFR、PPARG、AR、NOS3、ALB、ESR1、MAPK1、MAPK14、ANXA5和MAPK8,且在宫颈癌PPI网络中处于重要位置。交互基因涉及到的生物进程主要有负离子转运的正调控、丝氨酸肽基磷酸化、类固醇代谢过程、血液凝固、细胞对化学应激的反应等。富集的KEGG通路包括调控癌症通路、松弛素信号通路、内分泌耐药、蛋白聚糖与肿瘤、细胞衰老、GnRH信号通路和VEGF信号通路等。  结论  硫利达嗪具有潜在的抗肿瘤作用,可能通过多靶点和多信号通路的方式在宫颈癌的治疗上发挥作用。
  • 宫颈癌是常见的妇科恶性肿瘤之一,2020年全球癌症统计显示,宫颈癌仍是女性发病率和死亡率第四高的恶性肿瘤,全球每年新发宫颈癌病例高达60余万例,其中超过34万患者将最终死于宫颈癌[1]。早期宫颈癌以手术治疗为主,对于局部中、晚期宫颈癌,主要通过放疗和化疗的综合治疗。应用广泛的以顺铂为基础的联合化疗,治疗后大多数患者为部分缓解或缓解时间较短,超过30%的患者肿瘤持续存在、复发或转移[2],因此需要寻找新的药物或方法来提高疗效。

    硫利达嗪是一种吩噻嗪类化合物,作为多巴胺受体阻断剂,曾被广泛应用于精神分裂症等精神疾病的治疗[3]。近年研究显示硫利达嗪在体外可抑制多种肿瘤细胞的增殖,如结肠癌、乳腺癌、胃癌、肝癌、胶质母细胞瘤及宫颈癌等[4-8],提示其潜在的抗肿瘤作用。在宫颈癌中,早在1988年就有应用硫利达嗪成功治疗宫颈癌患者的病例报告[9],Mao等[10]发现硫利达嗪可通过阻断多巴胺受体介导的信号转导,从而显著诱导宫颈癌SiHa细胞发生凋亡。但还未有研究从网络药理学的角度系统分析硫利达嗪抗宫颈癌的机制。因此,本研究通过生物信息学方法对硫利达嗪进行靶基因的预测,进一步分析其可能作用于宫颈癌相关的靶基因,对这些靶基因进行分析,阐明该药物可能的治疗宫颈癌的作用机制。

    通过PharmMapper(http://www.lilab-ecust.cn/pharmmapper/)工具预测与硫利达嗪相互作用的靶基因[11]。将硫利达嗪的SDF格式文件上传至PharmMapper服务器,利用反向分子对接方法预测硫利达嗪可能的作用靶点,靶点范围设置“Human Protein Targets Only(v2010, 2241)”,其余参数保持默认设置。匹配结果按照Normalized Fit Score打分的高低,代表小分子与蛋白药效团模型的契合程度,打分越高,说明该蛋白作为药物小分子的潜在靶标的可能性越大。本文将Normalized Fit Score设置为 > 0.7。

    交互基因检索工具(Search Tool for the Retrieval of Interacting Genes,STRING))是一种用于评价蛋白相互作用的工具[12]。将预测得到的靶基因输入STRING(https://string-db.org),通过“KEGG Pathways”模块分析这些蛋白的通路富集情况,通过“Disease-gene associations(DISEASES)”模块分析疾病富集情况,通过“Tissue expression(TISSUES)”模块查看这些靶基因在不同组织的表达富集情况。

    本研究从2个疾病数据库收集宫颈癌相关基因。GeneCards(https://www.genecards.org/)是包含有HUGO/GDB (Human Genome Organization/Genome Database)命名委员会认可的人类基因Web智能检索系统,该数据库综合了包括所有已知和预期人类基因的基因组、转录、蛋白质组、遗传和功能信息[13]。应用GeneCards数据库筛选宫颈癌相关基因,设定Score > 10为标准筛选。DisGeNET是一个综合性疾病基因数据库[14],整合了来自专家库、全基因组关联分析(Genome-wide association study,GWAS)、动物模型和相关学术文献的数据,通过“Cervical cancer”进行检索,得到宫颈癌相关基因。为获得稳健的基因集,筛选出在两个数据库中都出现的基因用于后续分析。

    将预测得到的硫利达嗪的靶基因与宫颈癌基因取交集,得到硫利达嗪可能影响宫颈癌的靶基因。将交互基因输入到STRING数据库,选择物种为Homo sapiens,设置置信度阈值大于0.4,检索目标基因的蛋白互作网络(protein-protein interaction,PPI),用Cytoscape3.8.2软件的cytoHubba插件分析关键节点[15],按degree数值大小选择网络中前10位的靶基因作为硫利达嗪抗癌治疗的关键节点基因。

    对硫利达嗪预测的靶基因通过clusterProfiler软件包进行GO和KEGG通路富集分析[16],采用超几何分布计算各通路富集结果的显著性,并使用Bonferroni方法进行多重假设检验校正,按错误发现率(false discovery rate,FDR)小于0.05为阈值,对富集结果进行筛选,分析这些靶基因可能参与的生物过程、细胞组分、分子功能和通路。

    将宫颈癌基因通过STRING工具构建蛋白互作网络,通过Cytoscape软件中的AnalyzeNetwork插件计算每个蛋白的degree值,并评估关键靶基因在整个网络中的排名。

    使用PharmMapper工具对硫利达嗪进行靶基因预测,得到可能与硫利达嗪相互作用的靶基因47个。KEGG通路富集分析,发现这些靶基因主要富集在松弛素信号通路、肿瘤相关通路、内分泌耐药、细胞衰老等(表1)。在疾病-基因关联分析结果中,排在前两位的是肿瘤和细胞增殖相关疾病(表2)。在组织表达富集中,宫颈癌细胞排在首位(表3)。

    表  1  排名前10的靶基因通路分析结果
    Table  1.  Top10 pathways results of target genes
    ID号名称基因数FDR
    hsa04926松弛素信号通路91.50E-08
    hsa05200肿瘤通路134.88E-08
    hsa01522内分泌耐药76.70E-07
    hsa05205蛋白聚糖与肿瘤83.01E-06
    hsa05166人类T细胞白血病
    病毒1感染
    84.18E-06
    hsa04218细胞衰老76.70E-06
    hsa04912促性腺激素释放
    激素信号通路
    66.70E-06
    hsa04914孕酮介导的卵
    母细胞成熟
    67.36E-06
    hsa05161乙型肝炎77.36E-06
    hsa04933糖尿病并发症中
    的AGE-RAGE信号通路
    67.85E-06
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    表  2  排名前10的靶基因疾病富集分析结果
    Table  2.  Top10 disease enrichment results of target genes
    ID号名称基因数FDR
    DOID:162肿瘤120.0022
    DOID:14566细胞增殖疾病130.0022
    DOID:4疾病310.0022
    DOID:65结缔组织疾病100.0064
    DOID:7解剖实体疾病250.0064
    DOID:0050636家族性内脏
    淀粉样变性
    30.0183
    DOID:28内分泌系统疾病70.0183
    DOID:0080001骨疾病80.0184
    DOID:11801蛋白质-能量营
    养不良
    20.0184
    DOID:0060075雌激素受体
    阳性乳腺癌
    20.0244
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    表  3  排名前10的靶基因组织表达富集分析
    Table  3.  Top10 tissue expression enrichment results of target genes
    ID号名称基因数FDR
    BTO:0000180宫颈癌细胞102.03E-06
    BTO:0000174胚胎结构222.03E-06
    BTO:0000759202.71E-06
    BTO:0000132血小板104.54E-06
    BTO:0001078胎盘164.54E-06
    BTO:0001546慢性淋巴细胞
    白血病细胞
    88.77E-06
    BTO:0001489全身469.93E-06
    BTO:0000345消化腺221.02E-05
    BTO:0001491脏器301.07E-05
    BTO:0000522腺体341.77E-05
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    通过GeneCards和DisGeNET数据库,得到669个宫颈癌相关基因。与硫利达嗪靶基因取交集,获得21个交互基因,见图1

    图  1  宫颈癌基因和硫利达嗪靶基因的Upset图
    Figure  1.  Upset map of cervical cancer genes and thioridazine target genes

    在STRING数据库的“Multiple proteins”模块中输入21个交互基因,设置置信分数 > 0.4,构建交互基因的蛋白互作网络,见图2。将PPI网络文件导入Cytoscap软件,使用cytoHubba插件分析,将结果构建成关键节点基因的PPI网络,共筛选出10个关键节点基因,见图3,分别为EGFR,PPARG,AR,NOS3,ALB,ESR1,MAPK1,MAPK14,ANXA5和MAPK8。颜色越红说明其在网络中越重要。

    图  2  交互基因的蛋白互作网络图
    Figure  2.  PPI network of interacting genes
    图  3  关键靶基因的蛋白互作网络图
    Figure  3.  PPI network of key target genes

    将21个交互基因输入clusterProfiler进行GO和KEGG富集分析。GO富集分析包括生物过程(biological process,BP)、细胞组分(cellular component,CC)和分子功能(molecular function,MF)三部分,结果见图4。生物过程主要与负离子转运的正调控、丝氨酸肽基磷酸化、类固醇代谢过程、血液凝固、细胞对化学应激的反应和脂质定位的负调控等功能有关;细胞组分主要与脂筏、膜微结构域、囊泡腔、粘着斑、钙通道复合体和电压门控钙通道复合体等有关;分子功能主要与蛋白丝氨酸/苏氨酸/酪氨酸激酶活性、核受体活性、配体激活的转录因子活性、ATP酶结合、转录共调控结合、药物结合、MAP激酶活性和RNA聚合酶II转录共调节剂结合等功能有关。

    图  4  GO富集分析结果
    Figure  4.  Results of GO enrichment analysis

    KEGG富集的通路包括调控癌症通路、松弛素信号通路、内分泌耐药、癌症中的蛋白多糖、细胞衰老、GnRH信号通路、孕酮介导的卵母细胞成熟及VEGF信号通路等,见图5

    图  5  KEGG通路富集分析结果
    Figure  5.  Results of KEGG pathway enrichment analysis

    将669个宫颈癌基因输入STRING数据库,构建PPI网络,整个网络包含525个节点和20827条边。通过Cytoscape软件对PPI网络进行分析,发现10个关键靶基因都参与其中且排名均比较靠前(表4),说明这些关键靶基因在宫颈癌PPI网络中起重要作用。

    表  4  关键靶基因在宫颈癌PPI网络中的排名
    Table  4.  Ranking of key target genes in the cervical cancer PPI network
    靶基因Degree值排名
    EGFR3296
    ALB27113
    ESR125520
    ANXA520032
    PPARG18237
    AR15953
    MAPK114372
    MAPK1414177
    MAPK813879
    NOS3105127
    合计525
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    化疗是肿瘤治疗中重要的治疗手段,而现有的化疗药物特异性不高,不良反应较大,化疗强度往往与肿瘤患者耐受程度相关,极大地影响着肿瘤的治疗。因此提高化疗药物的敏感度,寻找在化疗过程中对化疗效果起着重要影响的关键基因,对肿瘤的治疗有着积极的意义。本研究首先预测了硫利达嗪的靶基因,KEGG通路富集分析结果表明,这些靶基因主要富集在肿瘤相关通路上,说明了其潜在的抗肿瘤作用。进一步分析发现硫利达嗪的靶基因主要富集在肿瘤相关疾病和宫颈癌细胞中,说明了该药物对宫颈癌具有一定的组织特异性,为进一步分析奠定了基础。

    为增加结果的稳健性,笔者从两个疾病-基因数据库筛选宫颈癌基因,与硫利达嗪潜在靶点取交集,得到21个交互基因,即为硫利达嗪可能发挥治疗宫颈癌的潜在靶点,并构建了PPI网络图。通过进一步拓扑分析筛选确定了10个关键基因,结果发现这10个关键基因均与宫颈癌的进程有关。

    EGFR是属于酪氨酸激酶型受体家族的糖蛋白,其不同的磷酸化位点调节各种下游信号通路,如PI3K/AKT和Ras/Raf/MEK/ERK[17],与宫颈癌的发生密切相关[18],参与了由circ-ATP8A2/miR-433/EGFR轴介导的宫颈癌进展[19]。PPARG能控制脂肪酸的过氧化物酶体β-氧化途径,是脂肪细胞分化和葡萄糖稳态的关键调节器[20],PPARG被激活后,可以促进抗癌特性,抑制宫颈癌细胞的增殖[21]。AR属于类固醇激素受体家族的成员,是配体依赖性的反式转录调节蛋白。已经证明HPV病毒编码的E6和E7蛋白可以直接与AR相互作用,在宫颈癌上皮细胞恶性转变中可能发挥协同、促进作用[22]。NOS3是钙依赖型酶,可调节血管功能[23],并且在激活的同时会产生一氧化氮,能够作用于内皮细胞,参与血管平滑肌松弛、血小板激活、血液凝固的过程[24]。ALB与肿瘤患者的营养状态、免疫功能增强及抗肿瘤密切相关,是一种潜在的药物递送系统[25]。同时,ALB会在肿瘤组织中积累,因此与之结合的药物被携带到患病组织,这降低了正常细胞的毒性作用[26]。雌激素和雌激素受体在致癌步骤中拥有持续重要的作用[27],ESR1与宫颈癌的关系涉及到发病机制、治疗及生物标志物等[28]。过表达ESR1则抑制了宫颈癌细胞的迁移和侵袭[29]。MAPKs是一系列细胞内丝氨酸/苏氨酸蛋白激酶,在进化过程中高度保守,MAPK因子在宫颈癌的进展中起着关键的生物学作用,被认为是癌症治疗干预的潜在靶点[30]。ANXA5具有抗凝活性,并参与抑制磷脂酶A和调节膜转运,调控增殖和信号转导[31]。在宫颈癌中,ANXA5可能作为内源性蛋白激酶C的抑制剂参与细胞分化、增殖和致癌作用[32]。此外,ANXA5也被证明与宫颈癌细胞的治疗效果有关[33]。重要性评估发现这些关键靶基因在宫颈癌整个PPI网络中处于相对重要位置,进一步说明了它们是宫颈癌发生的关键基因,是潜在的硫利达嗪治疗靶点。

    通过KEGG富集分析,选取了10条比较显著的通路。松弛素信号通路涉及许多生物学过程,包括炎症,成肌纤维细胞活化和内皮向间充质转化,具有抑制炎症和纤维化中成纤维细胞活化的机制[34]。VEGF是促进肿瘤血管生成的主要调节因子[35],VEGF信号通路可以调控肿瘤细胞的迁移侵袭、上皮间质转化及肿瘤干细胞,是宫颈癌治疗的重要研究靶点[36]。此外,硫利达嗪具有逆转多重耐药性的作用[37],而内分泌耐药通路也出现在笔者的结果中。

    本研究通过生物信息学方法预测了硫利达嗪作用于宫颈癌中的靶基因,进一步阐明了硫利达嗪对宫颈癌的可能作用机制和关键基因,初步揭示了硫利达嗪多通路、多机制治疗宫颈癌的药理学作用,为应用硫利达嗪辅助宫颈癌的治疗提供了参考依据。但由于每个数据库都有其局限性,部分作用靶点尚未有研究报道。此外,通过网络药理学的方法,不能确定硫利达嗪剂量与潜在靶标之间的相关性。因此,相关研究结果还需要后续的实验验证。

  • 图  1  宫颈癌基因和硫利达嗪靶基因的Upset图

    Figure  1.  Upset map of cervical cancer genes and thioridazine target genes

    图  2  交互基因的蛋白互作网络图

    Figure  2.  PPI network of interacting genes

    图  3  关键靶基因的蛋白互作网络图

    Figure  3.  PPI network of key target genes

    图  4  GO富集分析结果

    Figure  4.  Results of GO enrichment analysis

    图  5  KEGG通路富集分析结果

    Figure  5.  Results of KEGG pathway enrichment analysis

    表  1  排名前10的靶基因通路分析结果

    Table  1.   Top10 pathways results of target genes

    ID号名称基因数FDR
    hsa04926松弛素信号通路91.50E-08
    hsa05200肿瘤通路134.88E-08
    hsa01522内分泌耐药76.70E-07
    hsa05205蛋白聚糖与肿瘤83.01E-06
    hsa05166人类T细胞白血病
    病毒1感染
    84.18E-06
    hsa04218细胞衰老76.70E-06
    hsa04912促性腺激素释放
    激素信号通路
    66.70E-06
    hsa04914孕酮介导的卵
    母细胞成熟
    67.36E-06
    hsa05161乙型肝炎77.36E-06
    hsa04933糖尿病并发症中
    的AGE-RAGE信号通路
    67.85E-06
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    表  2  排名前10的靶基因疾病富集分析结果

    Table  2.   Top10 disease enrichment results of target genes

    ID号名称基因数FDR
    DOID:162肿瘤120.0022
    DOID:14566细胞增殖疾病130.0022
    DOID:4疾病310.0022
    DOID:65结缔组织疾病100.0064
    DOID:7解剖实体疾病250.0064
    DOID:0050636家族性内脏
    淀粉样变性
    30.0183
    DOID:28内分泌系统疾病70.0183
    DOID:0080001骨疾病80.0184
    DOID:11801蛋白质-能量营
    养不良
    20.0184
    DOID:0060075雌激素受体
    阳性乳腺癌
    20.0244
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    表  3  排名前10的靶基因组织表达富集分析

    Table  3.   Top10 tissue expression enrichment results of target genes

    ID号名称基因数FDR
    BTO:0000180宫颈癌细胞102.03E-06
    BTO:0000174胚胎结构222.03E-06
    BTO:0000759202.71E-06
    BTO:0000132血小板104.54E-06
    BTO:0001078胎盘164.54E-06
    BTO:0001546慢性淋巴细胞
    白血病细胞
    88.77E-06
    BTO:0001489全身469.93E-06
    BTO:0000345消化腺221.02E-05
    BTO:0001491脏器301.07E-05
    BTO:0000522腺体341.77E-05
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    表  4  关键靶基因在宫颈癌PPI网络中的排名

    Table  4.   Ranking of key target genes in the cervical cancer PPI network

    靶基因Degree值排名
    EGFR3296
    ALB27113
    ESR125520
    ANXA520032
    PPARG18237
    AR15953
    MAPK114372
    MAPK1414177
    MAPK813879
    NOS3105127
    合计525
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  • [1] Sung H,Ferlay J,Siegel R L,et al. Global cancer statistics 2020:GLOBOCAN estimates of incidence and mortality worldwide for 36 cancers in 185 countries[J]. CA Cancer J Clin,2021,71(3):209-249. doi: 10.3322/caac.21660
    [2] de Foucher T,Bendifallah S,Ouldamer L,et al. Patterns of recurrence and prognosis in locally advanced FIGO stage IB2 to IIB cervical cancer:Retrospective multicentre study from the FRANCOGYN group[J]. Eur J Surg Oncol,2019,45(4):659-665. doi: 10.1016/j.ejso.2018.11.014
    [3] Fenton M,Rathbone J,Reilly J,et al. Thioridazine for schizophrenia[J]. Cochrane Database Syst Rev,2007,2007(3):CD001944.
    [4] Duarte D,Cardoso A,Vale N. Synergistic growth inhibition of HT-29 colon and MCF-7 breast cancer cells with simultaneous and sequential combinations of antineoplastics and CNS drugs[J]. Int J Mol Sci,2021,22(14):7408. doi: 10.3390/ijms22147408
    [5] Tegowski M,Fan C,Baldwin A S. Selective effects of thioridazine on self-renewal of basal-like breast cancer cells[J]. Sci Rep,2019,9(1):18695. doi: 10.1038/s41598-019-55145-3
    [6] Mu J,Xu H,Yang Y,et al. Thioridazine,an antipsychotic drug,elicits potent antitumor effects in gastric cancer[J]. Oncol Rep,2014,31(5):2107-2114. doi: 10.3892/or.2014.3068
    [7] Lu M,Li J,Luo Z,et al. Roles of dopamine receptors and their antagonist thioridazine in hepatoma metastasis[J]. Onco Targets Ther,2015,8(default):1543-1552.
    [8] Cheng H W,Liang Y H,Kuo Y L,et al. Identification of thioridazine,an antipsychotic drug,as an antiglioblastoma and anticancer stem cell agent using public gene expression data[J]. Cell Death Dis,2015,6(5):e1753. doi: 10.1038/cddis.2015.77
    [9] Hercbergs A. Thioridazine:a radiation enhancer in advanced cervical cancer?[J]. Lancet,1988,2(8613):737.
    [10] Mao M,Yu T,Hu J,et al. Dopamine D2 receptor blocker thioridazine induces cell death in human uterine cervical carcinoma cell line SiHa[J]. J Obstet Gynaecol Res,2015,41(8):1240-1245. doi: 10.1111/jog.12691
    [11] Wang X,Shen Y,Wang S,et al. PharmMapper 2017 update:a web server for potential drug target identification with a comprehensive target pharmacophore database[J]. Nucleic Acids Res,2017,45(W1):W356-W360. doi: 10.1093/nar/gkx374
    [12] Szklarczyk D,Gable A L,Lyon D,et al. STRING v11:protein-protein association networks with increased coverage,supporting functional discovery in genome-wide experimental datasets[J]. Nucleic Acids Res,2019,47(D1):D607-D613. doi: 10.1093/nar/gky1131
    [13] Stelzer G,Rosen N,Plaschkes I,et al. The gene cards suite:From gene data mining to disease genome sequence analyses[J]. Curr Protoc Bioinformatics,2016,54:1.30.1-1.30.33.
    [14] Piñero J,Ramírez-Anguita J M,Saüch-Pitarch J,et al. The DisGeNET knowledge platform for disease genomics:2019 update[J]. Nucleic Acids Res,2020,48(D1):D845-D855.
    [15] Chin C H,Chen S H,Wu H H,et al. cytoHubba:identifying hub objects and sub-networks from complex interactome[J]. BMC Syst Biol,2014,8(Suppl 4):S11.
    [16] Wu T,Hu E,Xu S,et al. clusterProfiler 4.0:A universal enrichment tool for interpreting omics data[J]. Innovation (N Y),2021,2(3):100141.
    [17] Hartman Z,Geldenhuys W J,Agazie Y M. A specific amino acid context in EGFR and HER2 phosphorylation sites enables selective binding to the active site of Src homology phosphatase 2 (SHP2)[J]. J Biol Chem,2020,295(11):3563-3575. doi: 10.1074/jbc.RA119.011422
    [18] Peng Z,Wang Q,Zhang Y,et al. EBP50 interacts with EGFR and regulates EGFR signaling to affect the prognosis of cervical cancer patients[J]. Int J Oncol,2016,49(4):1737-1745. doi: 10.3892/ijo.2016.3655
    [19] Ding L and Zhang H. Circ-ATP8A2 promotes cell proliferation and invasion as a ceRNA to target EGFR by sponging miR-433 in cervical cancer[J]. Gene,2019,705:103-108. doi: 10.1016/j.gene.2019.04.068
    [20] Mustafa H A,Albkrye A M S,AbdAlla B M,et al. Computational determination of human PPARG gene:SNPs and prediction of their effect on protein functions of diabetic patients[J]. Clin Transl Med,2020,9(1):7.
    [21] Wuertz B R,Darrah L,Wudel J,et al. Thiazolidinediones abrogate cervical cancer growth[J]. Exp Cell Res,2017,353(2):63-71. doi: 10.1016/j.yexcr.2017.02.020
    [22] Noël J C,Bucella D,Fayt I,et al. Androgen receptor expression in cervical intraepithelial neoplasia and invasive squamous cell carcinoma of the cervix[J]. Int J Gynecol Pathol,2008,27(3):437-441. doi: 10.1097/PGP.0b013e318160c599
    [23] Vannini F,Kashfi K,Nath N. The dual role of iNOS in cancer[J]. Redox Biol,2015,6:334-343. doi: 10.1016/j.redox.2015.08.009
    [24] Topchieva L V,Balan O V,Korneva V A,et al. The nitric oxide metabolite level and NOS2 and NOS3 gene transcripts in patients with essential arterial hypertension[J]. Biology Bulletin,2020,47(3):247-252. doi: 10.1134/S1062359020010161
    [25] Gray S,Axelsson B. The prevalence of deranged C-reactive protein and albumin in patients with incurable cancer approaching death[J]. PLoS One,2018,13(3):e0193693. doi: 10.1371/journal.pone.0193693
    [26] Hoogenboezem E N,Duvall C L. Harnessing albumin as a carrier for cancer therapies[J]. Adv Drug Deliv Rev,2018,130:73-89. doi: 10.1016/j.addr.2018.07.011
    [27] Chung S H,Wiedmeyer K,Shai A,et al. Requirement for estrogen receptor alpha in a mouse model for human papillomavirus-associated cervical cancer[J]. Cancer Res,2008,68(23):9928-9934. doi: 10.1158/0008-5472.CAN-08-2051
    [28] Yu P,Wang Y,Li C,et al. Protective effects of downregulating estrogen receptor alpha expression in cervical cancer[J]. Anticancer Agents Med Chem,2018,18(14):1975-1982.
    [29] Chen Y,Gu Y,Gu Y,et al. Long noncoding RNA LINC00899/miR-944/ESR1 axis regulates cervical cancer cell proliferation,migration,and invasion[J]. J Interferon Cytokine Res,2021,41(6):220-233. doi: 10.1089/jir.2021.0023
    [30] Xiao M,Feng Y,Cao G,et al. A novel MtHSP70-FPR1 fusion protein enhances cytotoxic T lymphocyte responses to cervical cancer cells by activating human monocyte-derived dendritic cells via the p38 MAPK signaling pathway[J]. Biochem Biophys Res Commun,2018,503(3):2108-2116. doi: 10.1016/j.bbrc.2018.07.167
    [31] Li X,Chen L,Liang X J,et al. Annexin A5 protein expression is associated with the histological differentiation of uterine cervical squamous cell carcinoma in patients with an increased serum concentration[J]. Mol Med Rep,2012,6(6):1249-1254. doi: 10.3892/mmr.2012.1078
    [32] Li X,Ma W,Wang X,et al. Annexin A5 overexpression might suppress proliferation and metastasis of human uterine cervical carcinoma cells[J]. Cancer Biomark,2018,23(1):23-32. doi: 10.3233/CBM-171040
    [33] Youn M J,So H S,Cho H J,et al. Berberine,a natural product,combined with cisplatin enhanced apoptosis through a mitochondria/caspase-mediated pathway in HeLa cells[J]. Biol Pharm Bull,2008,31(5):789-795. doi: 10.1248/bpb.31.789
    [34] Ng H H,Shen M,Samuel C S,et al. Relaxin and extracellular matrix remodeling:Mechanisms and signaling pathways[J]. Mol Cell Endocrinol,2019,487:59-65. doi: 10.1016/j.mce.2019.01.015
    [35] Claesson-Welsh L,Welsh M. VEGFA and tumour angiogenesis[J]. J Intern Med,2013,273(2):114-127. doi: 10.1111/joim.12019
    [36] Chuai Y,Rizzuto I,Zhang X,et al. Vascular endothelial growth factor (VEGF) targeting therapy for persistent,recurrent,or metastatic cervical cancer[J]. Cochrane Database Syst Rev,2021,2021(3):CD013348.
    [37] Li J,Yao Q Y,Xue J S,et al. Dopamine D2 receptor antagonist sulpiride enhances dexamethasone responses in the treatment of drug-resistant and metastatic breast cancer[J]. Acta Pharmacol Sin,2017,38(9):1282-1296. doi: 10.1038/aps.2017.24
  • [1] 严怡然, 沈成万, 尚香玉, 冯婵, 李金秋, 阿仙姑·哈斯木.  高良姜素通过影响Hippo/YAP通路抑制宫颈癌Hela细胞迁移和侵袭, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20250105
    [2] 曾维兴, 何永文.  青蒿素及其衍生物在癌症治疗中的作用机制研究进展, 昆明医科大学学报.
    [3] 孟丽燕, 王超群, 陈星慧, 何军晶, 牛雅茹, 马丽莎.  早期宫颈癌术后HPV持续感染的危险因素分析, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20240422
    [4] 杨梅, 王平, 杨晖, 何功浩.  心力衰竭的潜在治疗靶点及相关药物研发进展, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20230719
    [5] 许悦, 王婵, 林纾丞, 张慧洁, 澹忆, 张树威, 曾晓锋, 李桢.  α-鹅膏毒肽诱导肝细胞毒性作用机制的研究进展, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20221228
    [6] 刘倩, 哈提拉·吐尔逊, 阿仙姑·哈斯木.  HLA-G通过促进活化性受体的表达增强NK细胞对宫颈癌细胞的杀伤作用, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20220714
    [7] 刘洋, 廖婧, 卢又汇, 孙春意, 孟昱时.  miR-21负向调控宫颈癌HeLa细胞株中hTERT的表达, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20210307
    [8] 张娟, 张红芸.  宫颈管搔刮术在宫颈癌筛查中的价值, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20210822
    [9] 谭丁及, 尹洪莉, 朱锐, 张曦, 余鑫, 飞勇, 李昕, 段铭, 何亮, 杨宏英.  宫颈上皮内瘤变和宫颈癌患者的阴道微生态特点, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20210821
    [10] 郝立君, 徐丽秀, 李金秋, 马俊旗, 阿仙姑·哈斯木.  肽基脯氨酰同分异构酶(Pin1)对子宫颈癌细胞脂质代谢的作用, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20210111
    [11] 卿清, 刘洋, 周红林.  宫颈癌筛查策略的研究进展, 昆明医科大学学报.
    [12] 周栩茹, 王熙, 田洁, 谢玲玲, 许宏宇, 李晓兰.  黏附斑激酶在宫颈癌组织中表达及意义, 昆明医科大学学报.
    [13] 朱胜章.  宫颈液基细胞学检查在贵州黔南地区宫颈癌筛查中的临床运用, 昆明医科大学学报.
    [14] 张祖娴.  昆明市高校女教师宫颈癌认知度与筛查现状分析, 昆明医科大学学报.
    [15] 廉阳秧.  中晚期宫颈癌组织HIF-1α、Twist、MDR1的表达及意义, 昆明医科大学学报.
    [16] 何红芬.  宫颈锥切术治疗IaⅠ期宫颈癌患者术后病灶残余状况及其危险因素, 昆明医科大学学报.
    [17] 肖肖.  YB-1在中晚期宫颈癌组织中的表达及其临床意义, 昆明医科大学学报.
    [18] 魏洁.  Twist在中晚期宫颈癌组织中的表达及临床意义研究, 昆明医科大学学报.
    [19] 刘慧瑾.  宫颈癌组织Vimentin的表达与淋巴转移宫旁浸润的关系研究, 昆明医科大学学报.
    [20] 黄雅.  Brn-3a、PPAR-γ在宫颈癌及癌前病变中的表达, 昆明医科大学学报.
  • 期刊类型引用(1)

    1. 刘淼淼,郜扬,曹先通,王雪,闫炀. del Nido心脏停搏液在主动脉夹层手术中的心肌保护效果. 现代生物医学进展. 2021(09): 1648-1651+1668 . 百度学术

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出版历程
  • 收稿日期:  2022-02-01
  • 网络出版日期:  2022-02-18
  • 刊出日期:  2022-03-22

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