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2种方法建立慢性肾衰竭动物模型的对比研究

陶怡婷 白鸽 余丹 周竹

陶怡婷, 白鸽, 余丹, 周竹. 2种方法建立慢性肾衰竭动物模型的对比研究[J]. 昆明医科大学学报.
引用本文: 陶怡婷, 白鸽, 余丹, 周竹. 2种方法建立慢性肾衰竭动物模型的对比研究[J]. 昆明医科大学学报.
Yiting TAO, Ge BAI, dan YU, Zhu ZHOU. A Comparative Study on the Establishment of Animal Models of Chronic Renal Failure by Two Methods[J]. Journal of Kunming Medical University.
Citation: Yiting TAO, Ge BAI, dan YU, Zhu ZHOU. A Comparative Study on the Establishment of Animal Models of Chronic Renal Failure by Two Methods[J]. Journal of Kunming Medical University.

2种方法建立慢性肾衰竭动物模型的对比研究

基金项目: 云南省临床医学研究中心子课题(202102AA100060)
详细信息
    作者简介:

    陶怡婷(1987~),女,云南普洱人,内科学博士,主治医师,主要慢性肾脏病及其并发症研究

    通讯作者:

    周竹,E-mail:zhouzhu21@163.com

  • 中图分类号: R-33;R-692

A Comparative Study on the Establishment of Animal Models of Chronic Renal Failure by Two Methods

  • 摘要:   目的  分别使用2种方法建立慢性肾衰竭(chronic renal failure,CRF)大鼠模型,对比2种模型的稳定性,旨在为建立一种稳定性高的CRF动物模型提供依据。  方法  分别使用单侧肾切除+腺嘌呤灌胃+高磷饲料喂养法、高磷+腺嘌呤饲料喂养法建立CRF大鼠模型。于造模结束时及造模结束后6周检测模型动物的红细胞、血红蛋白,血清尿素、肌酐,并行肾脏、骨组织病理学检查,计算肾小管间质纤维化指数(tubulointerstitial fibrosis index,TBI)、肾组织胶原纤维面积百分比;采用SPSS 26.0版软件包处理数据。  结果  模型一组(单侧肾切除+腺嘌呤灌胃+高磷饲料喂养法)造模结束时,与正常对照组比,红细胞、血红蛋白明显下降,血清尿素、肌酐明显升高,TBI、肾组织胶原纤维面积百分比轻度升高;HE染色可见肾小管上皮细胞空泡变性、刷状缘消失,肾小管管腔扩张,肾小管呈灶状萎缩,肾间质水肿并伴有少量纤维化、可见炎症细胞浸润;可见骨小梁排列紊乱,破骨细胞数量增加;Masson染色可见肾间质内少量胶原纤维沉积。造模结束后6周,与正常对照组比,模型一组红细胞、血红蛋白轻度下降,血清尿素、肌酐、TBI、肾组织胶原纤维面积百分比轻度升高;HE染色可见部分肾小管管腔轻度扩张,肾间质轻度水肿并伴有少量纤维化;股骨组织未见明显病变 ;Masson染色可见肾间质内有少量胶原纤维沉积。模型二组(高磷+腺嘌呤饲料喂养法)造模结束时,与正常对照组比,红细胞、血红蛋白明显下降,血清尿素、肌酐、TBI、肾组织胶原纤维面积百分比明显升高;HE染色可见肾小管上皮细胞空泡变性、刷状缘消失,肾小管管腔扩张,肾小管呈灶状萎缩,肾间质轻度水肿并伴有明显纤维化,可见大量炎症细胞浸润;可见骨小梁排列紊乱、局部破骨细胞数目增多、溶骨改变明显;Masson染色可见肾间质内有大量胶原纤维沉积。造模结束后6周,与正常对照组比,模型二组红细胞、血红蛋白较正常对照组明显下降,血清尿素、肌酐、TBI、肾组织胶原纤维面积百分比较正常对照组明显升高;HE染色可见部分肾小管上皮细胞脱落、刷状缘消失,肾间质轻度水肿并伴有明显纤维化,可见大量炎症细胞浸润;可见破骨细胞数目增多、有溶骨改变;Masson染色可见肾间质内有大量胶原纤维沉积。造模结束后6周,与模型一组比,模型二组大鼠红细胞、血红蛋白明显降低,血清尿素、肌酐、TBI、肾组织胶原纤维面积百分比明显升高;HE染色可见肾间质大量炎症细胞浸润;可见骨小梁排列紊乱、局部破骨细胞数目增多、溶骨改变明显;Masson染色可见肾间质内明显胶原纤维沉积。  结论  高磷+腺嘌呤饲料喂养法可建立稳定性较高的CRF大鼠模型。
  • 图  1  肾脏大体形态

    Figure  1.  General morphology of kidneys

    图  2  肾脏组织HE染色(100×)

    Figure  2.  HE staining of renal tissue (100×)

    图  3  肾脏组织Masson染色(100×)

    Figure  3.  Masson staining of renal tissue (100×)

    图  4  股骨HE染色(200×)

    Figure  4.  HE staining of femur (200×)

    表  1  肾组织TBI评分和胶原纤维百分比($ \bar x \pm s $)

    Table  1.   TBI scores and percentage of collagen fibers of renal tissue ($ \bar x \pm s $)

    时间 正常对照组
    n = 10)
    模型一组
    n = 10)
    模型二组
    n = 13)
    F P
    TBI评分
    造模结束时 0.00 ± 0.00 1.69 ± 0.12# 2.58 ± 0.06#* 2876.793 < 0.001
    造模结束后6周 0.00 ± 0.00 0.39 ± 0.19#¥ 2.04 ± 0.14#*¥ 743.100 < 0.001
    胶原纤维百分比(%)
    造模结束时 0.53 ± 0.13 5.77 ± 1.03# 35.20 ± 4.49#* 492.517 < 0.001
    造模结束后6周 0.85 ± 0.09 7.33 ± 0.94#¥ 37.21 ± 4.98#* 433.534 < 0.001
      注:与正常对照组比较,#P < 0.05;与模型一组比较,*P< 0.05;与造模结束时比较,P < 0.05。
    下载: 导出CSV

    表  2  2种实验方法大鼠红细胞和血红蛋白水平比较($ \bar x \pm s $)

    Table  2.   Comparison of erythrocyte and hemoglobin levels between the two methods

    时间 正常对照组
    n = 10)
    模型一组
    n = 10)
    模型二组
    n = 13)
    F P
    红细胞 (×1012/L)
    造模结束时 7.55 ± 0.45 5.21 ± 1.27# 4.57 ± 0.71# 32.128 < 0.001
    造模结束后6周 7.67 ± 0.29 6.34 ± 0.65#¥ 4.88 ± 1.11*# 34.416 < 0.001
    血红蛋白 (g/L)
    造模结束时 171.40 ± 9.51 109.90 ± 27.20# 83.40 ± 10.34*# 65.217 < 0.001
    造模结束后6周 168.60 ± 9.25 144.60 ± 11.29#¥ 98.85 ± 16.50*#¥ 84.366 < 0.001
      注:与正常对照组比较,#P < 0.05;与模型一组比较,*P < 0.05;与造模结束时比较,P < 0.05。
    下载: 导出CSV

    表  3  2种实验方法大鼠血清肌酐和尿素值($ \bar x \pm s $)

    Table  3.   Comparison of serum creatinine and urea values between the two methods ($ \bar x \pm s $)

    时间 正常对照组
    n = 10)
    模型一组
    n = 10)
    模型二组
    n = 13)
    F P
    肌酐(μmol/L)
    造模结束时 53.95 ± 7.82 381.33 ± 112.45# 390.50 ± 40.30# 76.945 < 0.001
    造模结束后6周 58.73 ± 4.05 71.55 ± 13.86 213.53 ± 51.14*#¥ 78.604 < 0.001
    尿素(mmol/L)
    造模结束时 5.85 ± 1.52 58.33 ± 5.65# 45.23 ± 9.35*# 184.134 < 0.001
    造模结束后6周 5.83 ± 1.34 8.35 ± 1.78 35.25 ± 15.65*# 31.580 < 0.001
      注:与正常对照组比较,#P < 0.05;与模型一组比较,*P < 0.05;与造模结束时比较,P < 0.05。
    下载: 导出CSV
  • [1] Chen T K,Hoenig M P,Nitsch D,et al. Advances in the management of chronic kidney disease[J]. BMJ,2023,383:e074216.
    [2] Ku E,Del Vecchio L,Eckardt K U,et al. Novel anemia therapies in chronic kidney disease: conclusions from a Kidney Disease: Improving Global Outcomes (KDIGO) Controversies Conference[J]. Kidney Int,2023,104(4):655-680. doi: 10.1016/j.kint.2023.05.009
    [3] Kaur R,Singh R. Mechanistic insights into CKD-MBD-related vascular calcification and its clinical implications[J]. Life Sci,2022,311(Pt B): 121148.
    [4] GBD Chronic Kidney Disease Collaboration. Global,regional,and national burden of chronic kidney disease,1990-2017: a systematic analysis for the Global Burden of Disease Study 2017[J]. Lancet,2020,395(10225):709-733. doi: 10.1016/S0140-6736(20)30045-3
    [5] Ruiz-Ortega M,Rayego-Mateos S,Lamas S,et al. Targeting the progression of chronic kidney disease[J]. Nat Rev Nephrol,2020,16(5):269-288. doi: 10.1038/s41581-019-0248-y
    [6] Adam R J,Williams A C,Kriegel A J. Comparison of the surgical resection and infarct 5/6 nephrectomy rat models of chronic kidney disease[J]. Am J Physiol Renal Physiol,2022,322(6):F639-f654. doi: 10.1152/ajprenal.00398.2021
    [7] Atteia H H,Alamri E S,Sirag N,et al. Soluble guanylate cyclase agonist,isoliquiritigenin attenuates renal damage and aortic calcification in a rat model of chronic kidney failure[J]. Life Sci,2023,317:121460. doi: 10.1016/j.lfs.2023.121460
    [8] Diwan V,Mistry A,Gobe G,et al. Adenine-induced chronic kidney and cardiovascular damage in rats[J]. J Pharmacol Toxicol Methods,2013,68(2):197-207. doi: 10.1016/j.vascn.2013.05.006
    [9] Yazgan B,Avcı F,Memi G,et al. Inflammatory response and matrix metalloproteinases in chronic kidney failure: Modulation by adropin and spexin[J]. Exp Biol Med (Maywood),2021,246(17):1917-1927.
    [10] Radford M G,Jr. ,Donadio J V,Jr. ,Bergstralh E J,et al. Predicting renal outcome in IgA nephropathy[J]. J Am Soc Nephrol,1997,8(2): 199-207.
    [11] Zhu J,Chen A,Gao J,et al. Diffusion-weighted,intravoxel incoherent motion,and diffusion kurtosis tensor MR imaging in chronic kidney diseases: Correlations with histology[J]. Magn Reson Imaging,2024,106:1-7. doi: 10.1016/j.mri.2023.07.002
    [12] Yokozawa T,Zheng P D,Oura H,et al. Animal model of adenine-induced chronic renal failure in rats[J]. Nephron,1986,44(3):230-234.
    [13] Diwan V,Brown L,Gobe G C. Adenine-induced chronic kidney disease in rats[J]. Nephrology (Carlton),2018,23(1):5-11. doi: 10.1111/nep.13180
    [14] Levey A S,Stevens L A,Coresh J. Conceptual model of CKD: applications and implications[J]. Am J Kidney Dis,2009,53(3 Suppl 3): S4-16.
    [15] López-Novoa J M,Rodríguez-Peña A B,Ortiz A,et al. Etiopathology of chronic tubular,glomerular and renovascular nephropathies: clinical implications[J]. J Transl Med,2011,9:13.
    [16] Kim K,Anderson E M,Thome T,et al. Skeletal myopathy in CKD: a comparison of adenine-induced nephropathy and 5/6 nephrectomy models in mice[J]. Am J Physiol Renal Physiol,2021,321(1):F106-f119. doi: 10.1152/ajprenal.00117.2021
    [17] Barratt J,Andric B,Tataradze A,et al. Roxadustat for the treatment of anaemia in chronic kidney disease patients not on dialysis: a Phase 3,randomized,open-label,active-controlled study (DOLOMITES)[J]. Nephrol Dial Transplant,2021,36(9):1616-1628. doi: 10.1093/ndt/gfab191
  • [1] 李漂, 刘晓琳, 杨艾, 张茜, 鲁卫东.  PEG6000修饰的流感疫苗脂质体的制备和稳定性, 昆明医科大学学报. 2022, 43(3): 32-36. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20220307
    [2] 闫明, 于建云, 聂胜洁, 瞿勇强, 王尚文, 王蕊, 舒俊杰, 刘欢, 李树华.  东莨菪碱中毒大鼠的代谢组学, 昆明医科大学学报. 2021, 42(4): 13-19. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20210403
    [3] 陈桢, 高丽萍.  慢性肾衰竭患者血清Cys C、β2-MG、MCP-1及ANGⅡ水平变化及临床意义, 昆明医科大学学报. 2021, 42(2): 130-136. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20210204
    [4] 朱文勇, 王明清, 宋绍辉, 李双丽, 胡文著, 廖国阳.  新工艺制备Hib结合疫苗原液长期稳定性试验, 昆明医科大学学报. 2020, 41(02): 12-15.
    [5] 蒋红樱, 张曦, 张乐航, 曾怡, 彭文芳, 白彝华.  红细胞生成素干预间充质干细胞移植对慢性肾衰竭大鼠的影响, 昆明医科大学学报. 2019, 40(07): 30-35.
    [6] 兰萍, 叶红艳, 付围, 范宇超, 赵祥月, 鲁卫东.  狂犬疫苗脂质体稳定性及稀释比例对脂质体干粉的免疫原性, 昆明医科大学学报. 2017, 38(05): 40-43.
    [7] 黄为民.  高盐饮食对大鼠血浆AngⅡ、CGRP、ICAM-1、VCAM-1和P-S的表达的影响, 昆明医科大学学报. 2015, 36(11): -.
    [8] 曾玉剑.  Toll-like Receptor 9 在大鼠胰腺表达及与大鼠急性胰腺炎相关性的研究, 昆明医科大学学报. 2014, 35(08): -1.
    [9] 李红丽.  蒙脱石散和美沙拉秦对溃疡性结肠炎大鼠血中VIP、SP、5-HT的影响, 昆明医科大学学报. 2014, 35(10): -1.
    [10] 徐剑.  CyPA与慢性肾衰竭相关性及作用研究, 昆明医科大学学报. 2014, 35(11): -1.
    [11] 何瑾.  不同抗凝管对同型半胱氨酸测定结果的影响, 昆明医科大学学报. 2013, 34(11): -.
    [12] 童宗武.  急性甲醇中毒大鼠空间学习记忆功能改变的研究, 昆明医科大学学报. 2012, 33(08): -.
    [13] 赵春梅.  HPLC法测定大鼠血浆中甲硝唑的浓度, 昆明医科大学学报. 2012, 33(05): -.
    [14] 环孢A处理对大鼠横断脊髓cdk4表达的影响, 昆明医科大学学报. 2011, 32(04): -.
    [15] 慢性肾衰竭合并肺部感染65例分析, 昆明医科大学学报. 2011, 32(02): -.
    [16] 徐敬.  同种异体胎肝组织微片移植治疗大鼠急性肝功能衰竭的实验研究, 昆明医科大学学报. 2011, 32(12): -.
    [17] 降浊颗粒对慢性肾衰竭大鼠肾组织Ⅰ型胶原的影响, 昆明医科大学学报. 2011, 32(10): -.
    [18] 殷露玮.  SD大鼠脊髓全横断损伤后神经细胞凋亡的研究, 昆明医科大学学报. 2009, 30(01): -.
    [19] 程建军.  大鼠脊髓挫伤后脊髓和骨骼肌中GAP-43的表达变化, 昆明医科大学学报. 2009, 30(01): -.
    [20] 王昭君.  大鼠脊髓全横断后相关部位的BDNF表达, 昆明医科大学学报. 2007, 28(06): -.
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  • 收稿日期:  2024-04-07

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