Molecular Epidemiological Investigation of the Fourth Human Case of Eurasian Avian-like H1N1 Swine Influenza Virus Infection in Yunnan Province
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摘要:
目的 对2022年云南省境内发现的1例(全省第4例)欧亚类禽猪流感病例进行分子流行病学调查,掌握其基因特征,揭示该新亚型欧亚类禽猪流感病毒对人类健康潜在影响。 方法 使用实时荧光定量PCR检测技术对病例的咽拭子标本、密切接触者和居住环境标本进行核酸检测。使用MDCK细胞进行阳性标本病毒分离,使用豚鼠血红细胞凝集实验和实时荧光定量RT-PCR方法对细胞培养物进行鉴定。通过Illumina Miseq二代基因测序平台进行全基因组测序,使用MEGA7.0软件构建系统发育树并分析其基因分子特征。 结果 成功分离云南省首例G5基因型欧亚类禽猪流感病毒,并获得该病毒全基因组序列。该病毒具有在哺乳动物的适应性或毒力、传播性增强的相关分子特征,与江苏分离的一株猪源毒株序列具有99.2%~99.7%的核苷酸一致性。该病毒在人群中传播的风险进一步增加。 结论 加强猪流感监测工作对于预防可感染人类的新型流感病毒亚型具有重要意义。 -
关键词:
- 欧亚类禽H1NI猪流感 /
- 二代测序 /
- 系统发育分析 /
- 氨基酸特征
Abstract:Objective To conduct a unique and pioneering molecular epidemiological investigation of a case of Eurasian avian-like H1N1 swine influenza identified in Yunnan Province in 2022 (the fourth such case in the province) and to understand its genetic characteristics so as to reveal its potential impact on human health. Methods Real-time fluorescent quantitative PCR detection technology was used for the nucleic acid testing of the case's pharyngeal swab samples, close contacts, and environmental samples from the living area. Positive samples were subjected to virus isolation using MDCK cells. Cell cultures were authenticated using erythrocyte agglutination assay with guinea pig blood and real-time fluorescence quantitative RT-PCR. Whole genome sequencing was performed using the Illumina MiseqNext-generation sequencing platform, and a phylogenetic tree was constructed using MEGA 7.0 software to analyze the genetic molecular characteristics. Results The first G5 genotype Eurasian avian-like H1N1 swine influenza virus in Yunnan Province was successfully isolated, and the whole genome sequence of the virus was obtained. This virus possessed the molecular characteristics associated with increased adaptability, virulence, or transmissibility in mammals and had a nucleotide consistency of 99.2%~99.7% with a porcine strain isolated in Jiangsu province. These findings underscored the potential threat this virus poses to human health. Conclusion The study underscores the importance of further monitoring swine influenza in preventing new influenza virus subtypes that can infect humans. -
根据国际糖尿病联盟的分析,预计到2045年,糖尿病患者的数量将从2030年的5.78亿增加到7.00亿人,这意味着世界各地的公共卫生威胁日益增加[1]。其中2型糖尿病(type 2 diabetes mellitus,T2DM)约占全球所有糖尿病患者的90%, 是一种受遗传和环境风险综合影响的复杂疾病,越来越多的研究表明微生物失调在T2DM 发病机制中的作用[2]。前期研究发现:恒古骨伤愈合剂具有降血糖功效,可改善2型糖尿病db/db小鼠肠道微生态平衡[3]。广谱抗生素引起宿主肠道菌群失调。因此,本实验进一步探索恒古骨伤愈合剂联合广谱抗生素对糖尿病小鼠的作用,为进一步的药物开发提供理论依据。
1. 材料与方法
1.1 实验动物
SPF级10周龄雄性 db/db小鼠和野生型小鼠,购于北京斯贝福公司[SCXK(京)2019-0010],在昆明医科大学[许可证SYXK(滇)2020-0006]饲养:室温(23±2)℃,湿度(52±10)%,明暗交替时间为12 h。小鼠自由采食和饮水。相关操作遵守动物福利要求,试验方案通过伦理委员会批准(KMMU20220903)。
1.2 药物和仪器
恒古骨伤愈合剂(批号:20211211)来自克雷斯制药公司。抗生素(万古霉素,氨苄西林,甲硝唑,新霉素)来自美国Sigma公司。小鼠胰岛素酶联免疫吸附测定试剂盒购自齐一生物科技(上海)公司。血糖检测仪为三诺生物公司制造。
1.3 实验方法
1.3.1 分组与样本采集
适应性饲养2 w后,野生型小鼠为对照组(wt),24只db/db小鼠随机分为模型组(db组)、恒古骨伤愈合剂组(OK组)、广谱抗生素组(ABX组)、恒古骨伤愈合剂与抗生素联合干预组(AO组)(n = 6)。OK组以临床成人常用剂量(按60 kg计算),并按人和动物体表面积换算法折算等效剂量为15.3 g/(kg.2 d),ABX组灌胃等体积广谱抗生素(甲硝唑1 g/L、氨苄西林1 g/L、0.5 g/L 万古霉素和1 g/L新霉素)、对照组、模型组灌胃等体积0.9 %氯化钠溶液,每2 d给药1次。AO组给与恒古骨伤愈合剂与抗生素交替灌胃,共11周。禁食 12 h,测量小鼠体重、空腹血糖,3% 戊巴比妥钠麻醉,采心脏血离心,收集血清检测胰岛素,计算胰岛素抵抗指数(HOMA-IR)。公示为HOMA-IR = 空腹血糖 (mmol/L)× 空腹胰岛素(μU/mL )/ 22.5(校正因子)。取盲结肠内容物0.5 g~1.0 g,分装至无菌 EP 管,过液氮,-80 ℃保存。
1.3.2 肠道菌群16S rDNA测序
由上海百趣公司利用Illumina NovaSeq测序平台测序进行。具体使用Hipure Stool DNA Kits 提取DNA,对16S rDNA V3 + V4区扩增,用AxyPrep DNA Gel Extraction Kit纯化PCR产物,ABI StepOnePlus System定量。原始数据提交SRA数据库,获得ASVs[4],物种注释。并进行菌群多样性分析、差异分析及功能预测。
1.4 统计学处理
采用SPSS 22.0分析数据,计量数据用平均数±标准差表示,组间比较采用单因素方差分析(方差齐) 或秩和检验(方差不齐),多重比较用LSD法或Nemenyi法,P < 0.05为差异有统计学意义。
2. 结果
2.1 广谱抗生素、恒古骨伤愈合剂单独和联合使用改善db/db小鼠胰岛素抵抗
与野生型比较,db/db 小鼠体重(图1A)、空腹血糖(图1B)和胰岛素抵抗指数(图1C)升高,血清胰岛素(图1D)含量降低,差异具有统计学意义(P < 0.05),提示db/db 小鼠出现T2DM的病理症状。与模型组(db/db )比较,广谱抗生素组、恒古骨伤愈合剂组和联合用药组空腹血糖和胰岛素抵抗指数降低,血清胰岛素含量升高,差异具有统计学意义( P < 0.05),但各处理组体重与模型组差异无统计学意义( P > 0.05)( 图1A)。
2.2 肠道菌群测序ASVs和韦恩图
5组小鼠韦恩图呈现小鼠间共有、特有的ASVs,其中对照组
1283 个ASVs;ABX、db/db、OK、AO组的ASVs依次增加(824个、878个、946个、1 330个),ABX组肠道菌群ASVs最少而AO组最多。提示抗生素抑制肠道菌群,恒古骨伤愈合剂改善这种抑制作用。2.3 肠道菌群丰富度和均匀性
与对照组wt小鼠比较,db/db组肠道菌群丰富度和均匀性相关指标chao1、shannon、simpson和pielou-e指数降低(P < 0.05)。与db/db组比较,OK组菌群丰富度和均匀性增加( P < 0.05);ABX组菌群丰富度和均匀性最低,差异具有统计学意义( P < 0.01);AO组菌群丰富度和均匀性介于db/db与ABX组之间,其中chao1和simpson指数与db/db组无统计学差异( P > 0.05)。提示恒古骨伤愈合剂改善抗生素作用下的db/db菌群的丰富度和均匀性。各组样本覆盖度大于99.7%,提示样本中的物种均被检测到( 表1)。
表 1 各组小鼠肠道菌群丰富度和均匀性指数( $ \bar x \pm s $)Table 1. Alpha-diversity index of gut microbiota in the 5 groups ( $ \bar x \pm s $)组别 chao1指数 shannon指数 simpson指数 Pielou-e指数 样本覆盖度 对照组(wt) 557.81 ± 78.59 7.16 ± 0.47 0.98 ± 0.0044 0.79 ± 0.039 1.00 模型组(db/db) 363.52 ± 28.91* 5.87 ± 0.64* 0.92 ± 0.0087 *0.69 ± 0.047* 1.00 广谱抗生素组(ABX) 193.04 ± 32.41## 3.70 ± 0.14## 0.84 ± 0.0091 ##0.49 ± 0.018## 1.00 恒古骨伤愈合剂组(OK) 467.39 ± 51.07# 6.84 ± 0.82# 0.96 ± 0.041# 0.78 ± 0.080# 1.00 联合用药组(AO) 311.28 ± 33.87 4.50 ± 0.50# 0.91 ± 0.013 0.59 ± 0.032# 1.00 F 4.01 15.75 13.41 11.69 — P 0.0132 < 0.0001 < 0.0001 < 0.0001 — 与对照组比较,*P < 0.05;与模型组比较, #P < 0.05, ##P < 0.01。 2.4 门与科水平的肠道菌群丰度
门水平上(图2A),db/db 和OK组厚壁菌门(Firmicutes)(0.471,0.644)和拟杆菌门(Bacteroidota)相对丰度最高(0.366,0.259)。ABX组变形菌门(Proteobacteria)的相对丰度高达0.934,AO组变形菌门相对丰度为0.667,其次为拟杆菌门(0.209)。进一步分析发现各组小鼠肠道菌门构成有明显差异,相对与db/db 组,OK组厚壁菌门(P < 0.05)、ABX( P < 0.01)和AO组( P < 0.01)变形菌门的丰度升高,OK组( P < 0.05)、AO组( P < 0.01)和ABX( P < 0.01)的拟杆菌门相对丰度降低。
科层面(图2B),db/db 小鼠和OK组毛螺菌科(Lachnospiraceae)(0.333、0.472)和Muribaculaceae科(0.219、0.159)群丰度最高。ABX组肠杆菌科(Enterobacteriaceae)和萨特菌科(Sutterellaceae)(0.650,0.178)丰度最高,AO组肠杆菌科、坦纳菌科(Tannerellaceae)和萨特菌科(0.390、0.162、0.130)丰度最高。5组小鼠肠道菌科构成差异明显,与db/db 组比较,OK组毛螺菌科(P < 0.05)、ABX和AO组肠杆菌科、萨特菌科及AO组坦纳菌科的丰度均升高( P < 0.01),而OK组Muribaculaceae丰度降低( P < 0.05)。
2.5 差异菌属筛
LEFse分析组间菌群差异(图3),野生型小鼠肠道菌群的优势物种为拟杆菌门Muribaculaceae属和厚壁菌门瓦丁梭菌BB60群(VadinBB60-group)、杜氏乳杆菌(Dubosiella)、瘤胃球菌属(Ruminococcus)。db/db小鼠的优势菌属为弯曲杆菌门螺旋杆菌属(Helicobacter)和拟杆菌门另枝菌属(Alistipes)和拟杆菌属(Bacteroides)。OK组的优势菌种为厚壁菌门毛螺菌科NK4A136组(Lachnospiraceae NK4A136 group)和乳杆菌属(Lactobacillus),脱硫杆菌门(Desulfobacterota)脱硫杆菌科(Desulfobacteraceae) )和拟杆菌门的普雷沃氏菌科(Prevotellaceae)等。ABX组的优势菌均为变形菌门,包括γ-变形菌纲肠杆菌科(Enterobacteriaceae)、气单胞菌科(Aeromonadaceae)和β-变形菌纲的萨特氏菌科(Sutterellaceae)等。AO组肠道菌群的优势物种包括古氏副拟杆菌(Parabacteroides gordonii),疣微菌门阿克曼菌属(Akkermansia)和变形菌门γ-变形菌纲肠杆菌目的摩根菌科(Morganellaceae)及α-变形菌纲(Alphaproteobacteria)等。 3. 讨论
糖尿病在中医学中属于“消渴病”范畴,由于先天不足、劳倦内伤、饮食失节、情志失调等导致。中医药治疗糖尿病已千余年,在“天人合一”的整体观念指导下,注重对患者全身功能的调节[5]。彝药恒古骨伤愈合剂由陈皮、红花、三七、杜仲、人参、黄芪、洋金花、钻地风、鳖甲等配方制成,功能主治为活血益气、补肝肾,符合中药治疗糖尿病的原则。课题前期发现恒古骨伤愈合剂改善db/db小鼠糖尿病性骨代谢异常和降低空腹血糖[3]。由于胰岛素在糖脂代谢中发挥重要作用,胰岛素抵抗指数(homeostasis model assessment-insulin resistance,HOMA-IR)是判断胰岛素抵抗的有效指标[6],本实验进一步发现恒古骨伤愈合剂改善db/db小鼠胰岛素抵抗。
肠道菌通过微生物-宿主共代谢系统影响药物代谢。通过抗生素处理杀灭微生物是研究肠道菌群变化的替代方法。抗生素可通过种类、剂量、给药途径及时间的不同,影响肠道菌群组成和结构[7]。抗生素诱导的肠道群的改变与代谢性疾病相关,如肥胖、糖尿病等[4]。选择广谱抑菌且肠道内吸收率相对缓慢的抗生素,其中包括万古霉素、氨苄西林、甲硝唑、新霉素的组合,已被证明对肠道菌群有杀伤作用[8]。本实验选择了以上混合抗生素,通过比对抗生素、恒古骨伤愈合剂单独和联合作用于db/db小鼠的效应。结果显示:经11周干预,抗生素、恒古骨伤愈合剂单独和联合作用,均降低2型糖尿病db/db小鼠空腹血糖和胰岛素抵抗,联合用药组效果更优。与本实验结果类似,出生至成年的长期抗生素暴露,通过调节肠道菌群在一定程度上抵抗高脂饮食负荷小鼠的糖代谢失调[9]。万古霉素降低NOD小鼠的糖尿病发病率[10]。广谱抗生素(给药12 d)降低db/db小鼠随机血糖,改变肠道微生物群组成[11]。本实验也表明广谱抗生素降低 db/db小鼠肠道菌群的丰富度与均匀性。广谱抗生素主要通过抑制拟杆菌门等常见的共生专性厌氧菌,并扩大正常情况下丰度较低变形杆菌门等兼性厌氧菌重塑肠道微生态[12-13]。相似地,本实验也发现ABX和AO组拟杆菌门相对丰度降低,变形菌门的丰度升高。而恒古骨伤愈合剂改善抗生素作用下的菌群的多样性。
LEFse分析显示野生型小鼠拟杆菌门Muribaculaceae属和厚壁菌门瓦丁梭菌BB60群(VadinBB60 -group)、杜氏乳杆菌(Dubosiella)、瘤胃球菌属(Ruminococcus)等益生菌富集。Muribaculaceae属在肠道的能量代谢、血糖血脂等发挥作用。Dubosiella的代谢产物为丁酸,可预防、改善肥胖。VadinBB60-group的代谢产物为短链脂肪酸,与丙酸盐比例呈正相关[14]。较高比例的丙酸盐会导致糖异生增加,减低肥胖[15]。提示野生型小鼠的标志菌在调节血糖中发挥作用。在中国人群中,拟杆菌属(Bacteroides)和另枝菌属(Alistipes)在2型糖尿病患者中比在糖代谢正常的人中更为丰富。另外,它们也与胆固醇水平升高相关[16]。糖尿病患者的幽门螺旋杆菌感染率明显更高[17]。以上临床结果与本实验中db/db小鼠螺旋杆菌属、Alistipes和Bacteroides富集相符。大豆不溶性膳食纤维通过增加乳杆菌属(Lactobacillus)和毛螺菌科NK4A136组(Lachnospiraceae _NK4A136_group)与肥胖相关的潜在有益菌的相对丰度,预防高脂肪饮食喂养小鼠肥胖[18]。黄芩和黄连处理增加产生短链脂肪酸的细菌Prevotellaceae UCG-001等的富集,改善2型糖尿病大鼠糖脂代谢[19]。提示本实验恒古骨伤愈合剂通过Lachnospiraceae NK4A136 group、Lactobacillus和Prevotellaceae等的富集,调节糖脂代谢。而广谱抗生素组中变形菌门γ-和β-变形菌纲的相关致病菌富集,提示抗生素虽然降低血糖,但可能导致重要的肠道微生物共生体从各群体中消失,使能够提供重要健康益处的细菌物种减少[20]。此外,本实验发现恒古骨伤愈合剂联合广谱抗生素干预组中,表现为有益菌Parabacteroides、Akkermansia和有害菌Morganellaceae、Alphaproteobacteria并存富集的状态。提示尽管ABS、OK和联合干预下db/db小鼠血糖及胰岛素抵抗均有所改善,但从肠道优势菌群富集的角度,各干预组涉及的具体调控机制可能有所不同。已有研究表明狄氏副拟杆菌胞外多糖粗提物具良好的免疫调节功能,由可减轻肥胖、缓解结肠炎[21]。阿克曼菌与肥胖、糖尿病、肝脏和心血管疾病等的发生发展相关,在调节机体代谢紊乱方面发挥着至关重要的作用[22-23]。恒古骨伤愈合剂改善抗生素导致肠道微生态紊乱,增加改善糖代谢的有益微生物的富集。推测恒古骨伤愈合剂改善血糖、胰岛素抵抗与这些有益微生物的富集有关,值得进一步探讨。
综上,广谱抗生素、恒古骨伤愈合剂单独和联合作用,均降低2型糖尿病db/db小鼠空腹血糖和胰岛素抵抗。且恒古骨伤愈合剂可改善抗生素对db/db肠道微生态损害。
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表 1 不同型别的欧亚类禽猪流感基因型分型依据
Table 1. Genotyping basis of different types of eurasian avian-like swine influenza genotypes
分离株不同来源的基因片段 HA NA PB2 PB1 PA NP M NS 基因型 A/Jiangsu/1/2011a EA EA EA EA EA EA EA EA 1 A/swine/Hong_Kong/72/2007a EA EA EA EA EA EA EA CS 2 A/Hunan/ 42443 /2015aEA EA PDM PDM PDM PDM EA CS 3 A/swine/Guangdong/ 1361 /2010aEA EA PDM PDM PDM PDM PDM PDM 4 A/Fujian-cangshan/SWL624/2016a EA EA PDM PDM PDM PDM PDM CS 5 A/swine/Guangdong/1/2010a EA EA CS CS CS CS EA CS 6 A/swine/Hong_Kong/ 2421 /2012aEA EA EA EA EA EA PDM EA 7 A/swine/Guangdong/NS2897/2012a EA EA PDM EA PDM PDM PDM EA 8 A/swine/Guangxi/S2/2013a EA EA EA EA PDM PDM EA CS 9 A/swine/Hong_Kong/268/2012a EA EA CS CS CS CS CS CS 10 A/swine/Hong_Kong/201/2010a EA PDM CS CS CS CS CS CS 11 A/Yunnan-Lincang/ASWL01/2022b EA EA PDM PDM PDM PDM PDM CS 5 a:欧亚禽猪流感基因型分型参考株;b:云南临沧人感染欧亚禽猪流感分离株;EA:基因片段来源于欧亚类禽猪流感病毒;CS:基因片段来源于经典猪流感病毒;PDM:基因片段来源于A(H1N1)pdm09流感病毒。 表 2 A/Yunnan-Lincang/ASWL01/2022毒株的氨基酸分子特征分析
Table 2. The amino acid molecular characteristics of A/Yunnan-Lincang/ASWL01/2022 strain
基因 氨基酸
突变位点意义 毒株 CA/07/09 HN/42443/15 GD/1/10 FJ/624/16 JS/HD11/20 YN/01/22 HA E190D
G225D/E病毒受体结合特异性从α-2,
3-唾液酸转变为α-2,6-唾液酸[20]D
DD
EV
ED
ED
ED
ENA H275Ya
N295Sa神经氨酸酶抑制剂耐药位点 H
NH
NH
NH
NH
NH
NPB2 L89V
T271A G590S
Q591R
D701N被证明对增加聚合酶活性、
增强病毒复制和传播性至关重要。V
A
S
R
DV
A
G
R
DV
A
S
R
DV
A
S
Q
DV
A
S
R
DV
A
S
R
DT588I 除增加哺乳动物细胞中的聚合酶活性外,
还被证明介导干扰素-β表达的抑制T I T T I I 627 宿主特异性的决定因素,
禽流感是E,人类流感是KE E E E E E NS1 P42S
D92E增加哺乳动物病毒毒力或适应性 S
DS
DS
DS
DS
DS
DM2 S31N 金刚烷胺类抗病毒药物耐药 N N N N N N M1 T215A 增加哺乳动物病毒毒力或适应性 A A A A A A PA L336M
K356R
S409N增加聚合酶活性、增强病毒复制
和传播性至关重要M
R
NM
R
NL
K
NM
R
NM
R
NM
R
NPB1 X99H
I368R物种之间传播 H
IH
IH
IH
IH
IH
INP Q357K 增加哺乳动物病毒毒力或适应性 K K K K K K a:H1 Numbering。 表 3 中国人感染EA H1N1SIV病例
Table 3. The cases infected EA H1N1SIV in China
年份 省份 毒株名 基因型 参考文献 2011 江苏 A/Jiangsu/1/2011 1 Yang et al.[10] 2012 河北 A/Hebei-Yuhua/SWL1250/2012 1 Wang et al.[11] 2015 湖南 A/Hunan/ 42443 /20153 Zhu et al.[13] 2015 云南 A/Yunnan-Longyang/SWL1982/2015 3 Zhu et al.[14] 2015 云南 A/Yunnan-Wuhua/SWL1869/2015 3 2016 福建 A/Fujian-Cangshan/SWL624/2016 5 Xie et al.[12] 2018 天津 A/Tianjin-baodi/ 1606 /2018(H1N1)5 Li et al.[15] 2020 云南 A/Yunnan⁃Mengzi/ 1462 /20204 Li,et al.[17] 2022 云南 A/Yunnan-Lincang/ASWL01/2022 5 孙艳红,等 -
[1] Schnitzler S U,Schnitzler P. An update on swine-origin influenza virus A/H1N1: A review[J]. Virus Genes,2009,39(3):279-292. doi: 10.1007/s11262-009-0404-8 [2] Li H,Leng H,Tang S,et al. Prevalence,genetics and evolutionary properties of Eurasian avian-like H1N1 swine influenza viruses in Liaoning[J]. Viruses,2022,14(3):643 doi: 10.3390/v14030643 [3] Scholtissek C,B ü rger H,Kistner O,et al. The nucleoprotein as a possible major factor in determining host specificity ofinfluenza H3N2 viruses[J]. Virology,1985,147(2):287-294. doi: 10.1016/0042-6822(85)90131-X [4] Dawood F S,Jain S,Finelli L,et al. Emergence of a novel swine-origin influenza A (H1N1) virus in humans[J]. N Engl J Med,2009,360(25):2605-2615. doi: 10.1056/NEJMoa0903810 [5] Pensaert M,Ottis K,Vandeputte J,et al. Evidence for the natural transmission of influenza A virus from wild ducts toswine and its potential importance for man[J]. Bull World Health Organ,1981,59(1):75-78. [6] Zhu H,Webby R,Lam T T,et al. History of Swine influenza viruses in Asia[J]. Curr Top Microbiol Immunol,2013,370:57-68. [7] Feng Z,Zhu W,Yang L,et al. Epidemiology and genotypic diversity of Eurasian avian-like H1N1 swine influenza viruses in China[J]. Virol Sin,2021,36(1):43-51. doi: 10.1007/s12250-020-00257-8 [8] Yang H,Chen Y,Qiao C,et al. Prevalence,genetics,and transmissibility in ferrets of Eurasian avian-like H1N1swine influenza viruses[J]. Proc Natl Acad Sci U S A,2016,113(2):392-397. doi: 10.1073/pnas.1522643113 [9] Gregory V,Bennett M,Thomas Y,et al. Human infection by a swine influenza A (H1N1) virus in Switzerland[J]. Arch Virol,2003,148(4):793-802. doi: 10.1007/s00705-002-0953-9 [10] Yang H,Qiao C,Tang X,et al. Human infection from avian-like influenza A (H1N1) viruses in pigs,China[J]. Emerg Infect Dis,2012,18(7):1144-1146. doi: 10.3201/eid1807.120009 [11] Wang D Y,Qi S X,Li X Y,et al. Human infection with Eurasian avian-like influenza A(H1N1) virus,China[J]. Emerg Infect Dis,2013,19(10):1709-1711. doi: 10.3201/eid1910.130420 [12] Xie J F,Zhang Y H,Zhao L,et al. Emergence of Eurasian avian-like swine influenza A (H1N1) virus from an adultcase in Fujian province,China[J]. Virol Sin,2018,33(3):282-286. doi: 10.1007/s12250-018-0034-1 [13] Zhu W,Zhang H,Xiang X,et al. Reassortant Eurasian avian-like influenza A(H1N1) virus from a severely illchild,hunan province,China,2015[J]. Emerg Infect Dis,2016,22(11):1930-1936. doi: 10.3201/eid2211.160181 [14] Zhu W,Feng Z,Chen Y,et al. Mammalian-adaptive mutation NP-Q357K in Eurasian H1N1 swine influenza virusesdetermines the virulence phenotype in mice[J]. Emerg Microbes Infect,2019,8(1):989-999. doi: 10.1080/22221751.2019.1635873 [15] Li X,Guo L,Liu C,et al. Human infection with a novel reassortant Eurasian-avian lineage swine H1N1 virusin northern China[J]. Emerg Microbes Infect,2019,8(1):1535-1545. doi: 10.1080/22221751.2019.1679611 [16] Qi X,Cui L,Jiao Y,et al. Antigenic and genetic characterization of a European avian-like H1N1 swine influenza virus from a boy in China in 2011[J]. Arch Virol,2013,158(1):39-53. doi: 10.1007/s00705-012-1423-7 [17] 李梓,赵晓南,黄维娟,等. 云南省首例人感染G4基因型欧亚类禽H1N1猪流感病毒病原学特征分析[J]. 病毒学报,2022,38(2):290-297. [18] 中国国家流感中心. 全国流感监测技术指南(2017版)[EB/OL]. (2017-09-30). https://ivdc.chinacdc.cn/cnic/fascc/201802/t20180202_158592.htm [19] Gu M,Chen K,Ge Z,et al. Zoonotic threat of G4 genotype Eurasian avian-like swine influenza A(H1N1)viruses,China,2020[J]. Emerg Infect Dis,2022,28(8):1664-1668. doi: 10.3201/eid2808.212530 [20] Matrosovich M,Tuzikov A,Bovin N,et al. Early alterations of the receptor-binding properties of H1,H2,and H3 avianinfluenza virus hemagglutinins after their introduction into mammals[J]. J Virol,2000,74(18):8502-8512. doi: 10.1128/JVI.74.18.8502-8512.2000 [21] Vijaykrishna D,Smith G J,Pybus O G,et al. Long-term evolution and transmission dynamics of swine influenza A virus[J]. Nature,2011,473(7348):519-522. doi: 10.1038/nature10004 [22] Zhu H,Li X,Chen H,et al. Genetic characterization and pathogenicity of a Eurasian avian-like H1N1 swineinfluenza reassortant virus[J]. Virol J,2022,19(1):205. doi: 10.1186/s12985-022-01936-6 [23] Vincent A,Awada L,Brown I,et al. Review of influenza A virus in swine worldwide: A call for increased surveillanceand research[J]. Zoonoses Public Health,2014,61(1):4-17. doi: 10.1111/zph.12049 [24] Yang H,Chen Y,Shi J,et al. Reassortant H1N1 influenza virus vaccines protect pigs against pandemic H1N1influenza virus and H1N2 swine influenza virus challenge[J]. Vet Microbiol,2011,152(3-4):229-234. doi: 10.1016/j.vetmic.2011.04.032 [25] Qiao C,Liu L,Yang H,et al. Novel triple reassortant H1N2 influenza viruses bearing six internal genes of thepandemic 2009/H1N1 influenza virus were detected in pigs in China[J]. J Clin Virol,2014,61(4):529-534. doi: 10.1016/j.jcv.2014.10.014 [26] Sun H,Xiao Y,Liu J,et al. Prevalent Eurasian avian-like H1N1 swine influenza virus with 2009 pandemic viralgenes facilitating human infection[J]. Proc Natl Acad Sci U S A,2020,117(29):17204-17210. doi: 10.1073/pnas.1921186117 [27] Peiris J S,de Jong M D,Guan Y. Avian influenza virus (H5N1): A threat to human health[J]. Clin Microbiol Rev,2007,20(2):243-267. doi: 10.1128/CMR.00037-06 [28] Webster R G,Bean W J,Gorman O T,et al. Evolution and ecology of influenza A viruses[J]. Microbiol Rev,1992,56(1):152-179. doi: 10.1128/mr.56.1.152-179.1992 -