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过表达及敲减LncRNA RP11-521C20.3的非小细胞肺癌A549稳转细胞株的构建

李春桃 张雪梅 苏琰迪 张剑青

刘晓琳, 谢青昕, 李漂, 张茜, 杨艾, 鲁卫东. 流感疫苗脂质体的制备方法及粒径对免疫原性的影响[J]. 昆明医科大学学报, 2022, 43(5): 7-11. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20220508
引用本文: 李春桃, 张雪梅, 苏琰迪, 张剑青. 过表达及敲减LncRNA RP11-521C20.3的非小细胞肺癌A549稳转细胞株的构建[J]. 昆明医科大学学报, 2023, 44(10): 1-9. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20231016
Xiaolin LIU, Qingxin XIE, Piao LI, Qian ZHANG, Ai YANG, Weidong LU. Studies on the Preparation Method of Influenza Vaccine Liposome and the Effect of Particle Size on Immunogenicity[J]. Journal of Kunming Medical University, 2022, 43(5): 7-11. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20220508
Citation: Chuntao LI, Xuemei ZHANG, Yandi SU, Jianqing Zhang. Construction of Stable Transfected Cell Line A549 of Non-small Cell Lung Cancer by Overexpressing and Knocking Down LncRNA RP11-521C20.3[J]. Journal of Kunming Medical University, 2023, 44(10): 1-9. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20231016

过表达及敲减LncRNA RP11-521C20.3的非小细胞肺癌A549稳转细胞株的构建

doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20231016
基金项目: 国家自然科学基金资助项目(81860013)
详细信息
    作者简介:

    李春桃(1988~),女,云南临沧人,医学硕士,主治医师,主要从事慢性气道疾病基础及临床研究工作

    张雪梅与李春桃对本文有同等贡献

    张剑青,教授,博士生导师,博士后合作导师,2016年毕业于昆明医科大学,现任昆明医科大学第一附属医院呼吸与危重症二科科主任。中华医学会呼吸病学分会烟草病学学组副组长;中国医师协会呼吸分会首届中青年医师工作委员会常委;中国研究型医院学会间质性肺疾病多学科诊治专委会委员;中国抗癌协会肿瘤呼吸病学专委会委员;中国呼吸肿瘤协作组委员;中国初级卫生保健基金会南区呼吸罕见病专委会副主任委员;中国慢阻肺联盟委员;云南慢阻肺联盟副主席;云南省万人计划名医、云南省医学领军人才;云南女医师协会呼吸病学分会主任委员;云南省医学会呼吸病学分会副主任委员;国家自然科学基金评委;ERS会员;Thorax及Chest中文版编委、国际呼吸杂志编委。主持国家自然科学基金2项,省部级自然科学基金 6 项;发表论文 50 余篇,SCI 收录 10 余篇,国家发明专利 1 项;获云南省自然科学 三等奖 2 项,云南省卫生科技成果二等奖 1 项

    通讯作者:

    张剑青,E-mail:ydyyzjq@163.com

  • 中图分类号: R34

Construction of Stable Transfected Cell Line A549 of Non-small Cell Lung Cancer by Overexpressing and Knocking Down LncRNA RP11-521C20.3

  • 摘要:   目的  构建过表达及敲减LncRNA RP11-521C20.3的非小细胞肺癌A549稳转细胞株。  方法  根据lncRNA RP11-521C20.3基因序列,设计合成引物并进行扩增。将目的基因与Sbf I和EcoRI酶切的载体连接,构建pcSLenti-pA-RP11-521C20.3-CMV-SFH-EGFP-P2A-Puro-WPRE重组质粒,转染293T细胞,包装含lncRNA RP11-521C20.3质粒重组体的慢病毒。构建shRNA(RP11-521C20.3),连接到AgeI和EcoRI双酶切后的pSLenti-U6-shRNA-CMV-EGFP-F2A-Puro-WPRE载体上,经鉴定后转染293T细胞。再利用慢病毒介导,构建重组质粒pcSLenti-pA-RP11-521C20.3-CMV-SFH-EGFP-P2A-Puro-WPRE和pSLenti-U6-shRNA(RP11-521C20.3)-CMV-EGFP-F2A-Puro-WPRE,导入A549细胞。最后采用RT-qPCR技术在基因水平检测lncRNA RP11-521C20.3的表达。  结果  OV-lncRNA RP11-521C20.3组(过表达组)的lncRNA RP11-521C20.3 mRNA表达量高于NC-lncRNA RP11-521C20.3组(过表达对照组)(P < 0.001),差异倍数为(20.43±0.69)。sh-lncRNA RP11-521C20.3组(敲减组)的lncRNA RP11-521C20.3mRNA表达量低于sh-NC组(敲减对照组)(P < 0.001),差异倍数为(0.21±0.08)。  结论  成功构建了lncRNA RP11-521C20.3过表达及敲减稳转细胞株。为后续研究lncRNA RP11-521C20.3在慢性阻塞性肺疾病(COPD)发病机制中的作用奠定重要基础。
  • 生殖道沙眼衣原体(chlamydia trachomatis,CT)感染是我国重点监测的性传播疾病,也是全球最常见的性传播疾病,全世界每年新增病例超过1.3亿例[1]。云南省的生殖道沙眼衣原体发病率也呈逐年上升趋势,2012年至2017年生殖道沙眼衣原体感染发病率年均增长率25.35%,且感染者也主要集中在15~44岁年龄组[2-3]。生殖道沙眼衣原体感染可引发眼结膜、咽部、直肠等多器官感染,若治疗不及时,还可导致女性盆腔炎、异位妊娠、不孕不育等并发症[4]。同时,由于感染引发的生殖器部位炎症或溃疡,也使HIV的易感性和传播风险大大增加[5-6]。研究表明[7-10],沙眼衣原体感染可无任何局部或全身症状,导致感染者未能接受到有效治疗,增加了二次感染其他病原体包括HIV的可能性,同时HIV感染也会增加CT持续感染及全身散播的危险,其中HIV阳性女性中感染沙眼衣原体的流行率为9.7%~16.2%。婚检人群包含了一般适婚人群和主要的性活跃人群,对该人群进行性传播疾病的监测有助于评估普通人群的感染状况。为此,本研究对云南省2019年部分州(市)婚检人群开展了生殖道沙眼衣原体感染调查,为制定疾病控制措施和分析防控效果提供依据。

    云南省按照其地理位置可分为滇南、滇西、滇东以及滇中地区,本次研究根据地理位置,结合云南省各州市近3 a暗娼人群HIV平均感染率在全省的排序情况将全省各州市分为高中低3个流行水平,分别选取高流行地区(红河州和临沧市)、中流行地区(德宏州和西双版纳州)和低流行地区(保山市和普洱市)共6个州市作为调查现场。

    采用固定场所连续抽样方式,招募前往所选取的6个调查州市当地医疗保健机构进行婚前检查,并愿意参加调查并签署知情同意书者作为调查对象。本次调查共纳入1671人,其中红河州343人(20.5%),临沧市315人(18.9%),德宏州301人(18.0%),西双版纳州69人(4.1%),保山市316人(18.9%),普洱市327人(19.6%)。其中,男性841人(50.3%),女性830人(49.7%),年龄为18~57岁,平均(27.74±6.317)岁;以汉族为主,占61.6%(1030/1671),文化程度主要以初中为主,占46.2%(772/1671);以云南省为主,占96.0%(1604/1671),职业主要为农民,占56.9%(951/1671),月平均收入主要在2000~3000元之间,占39.6%(662/1671)。

    采用通过专家咨询、KMO和巴特利特检验(KMO = 0.691,P < 0.001)等方法确保效度和信度达到要求的问卷收集调查对象的一般人口学信息、性行为情况、是否感染性病和就医情况等信息。问卷调查结束后,采集调查对象尿液样本,对于已有性行为的女性,同时采集宫颈分泌物标本,用于生殖道沙眼衣原体核酸检测。

    生殖道沙眼衣原体核酸检测使用罗氏核酸检测试剂盒,检测原理为PCR荧光探针法。使用Cobas x480自动核酸提取仪从罗氏配套的尿液和宫颈拭子保存管中直接提取核酸,Cobas z480荧光定量PCR仪扩增核酸并判定结果。采用试剂盒配套的阳性对照、阴性对照和内参标准品对扩增检测进行全面过程质控,所有操作均按照说明书严格执行。

    使用EpiData3.1软件建立数据库,SPSS19.0软件进行数据统计学分析。计数资料以例数或百分比[n(%)]表示。一般人口学特征和性行为特征、性病感染和就医等情况比较采用单因素Logistic回归进行分析,以是否感染CT作为因变量(是 = 1,否 = 0),以相关因素作为自变量。将单因素分析中P < 0.1的变量进行多因素Logistic回归分析,计算各因素校正后的比值比(AOR)及95%的可信区间(95%CI),检验水准为α = 0.05,P < 0.05为差异有统计学意义。

    在调查的1671例研究对象中,共检测出CT核酸阳性111例,其中男性42例,女性通过宫颈检测出29例,尿液54例,指南[11]指出,宫颈和尿液检测中其中任一项为阳性,则判定为阳性,因此女性共检测出69例。总的人群感染率为6.64%(111/1671,95%CI:5.40%~7.80%)男性感染率4.99%(42/841,95%CI:3.50%~6.50%),女性感染率8.31%(69/830,95%CI:6.40%~10.20%)。普洱市和德宏州的感染率较高,分别为8.87%(29/327,95%CI:5.80%~12.00%),8.64%(26/301,95%CI:5.40%~11.80%)。18~20岁的感染率为20.83%(20/96,95%CI:12.60%~29.10%)。文化程度为初中及以下的婚检人群CT的感染率为7.83%(85/1085,95%CI:6.20%~9.40%),见表1

    表  1  婚检人群CT感染影响因素分析
    Table  1.  Analysis of influencing factors of CT infection in premarital examination population
    变量 合计感染人数(n感染率(%)单因素分析多因素分析
    POR(95%CIPAOR(95%CI
    州市 0.054 0.043*
    保山市 316 12 3.80 1.000 1.000
    红河州 343 15 4.37 0.971 0.986(0.468~2.078) 0.556 1.301(0.542~3.119)
    西双版纳州 69 4 5.80 0.333 1.685(0.586~4.846) 0.202 2.200(0.655~7.382)
    德宏州 301 26 8.64 0.012* 2.317(1.119~4.477) 0.014* 2.649(1.219~5.755)
    临沧市 315 25 7.94 0.178 1.612(0.804~3.232) 0.160 1.877(0.780~4.518)
    普洱市 327 29 8.87 0.048* 1.954(1.005~3.801) 0.013* 2.708(1.231~5.954)
    年龄(岁) < 0.001* < 0.001*
    ≥41 89 5 5.62 1.000 1.000
    31~40 324 19 5.86 0.930 1.047(0.380~2.886) 0.738 1.192(0.426~3.341)
    21~30 1162 67 5.77 0.952 1.029(0.404~2.622) 0.558 1.332(0.510~3.480)
    18~20 96 20 20.83 0.005* 4.364(1.562~12.194) 0.007* 4.346(1.468~12.707)
    性别
    841 42 4.99 1.000 1.000
    830 69 8.31 0.007* 1.725(1.161~2.564) 0.084 1.446(0.952~2.196)
    民族
    汉族 1030 61 5.92 1.000
    其他 641 50 7.80 0.178 1.299(0.888~1.900)
    文化程度
    高中及以上 586 26 4.44 1.000 1.000
    初中及以下 1085 85 7.83 0.009* 1.831(1.166~2.875) 0.028* 1.854(1.071~3.211)
    户籍
    本省 1604 106 6.61 1.000
    非本省 67 5 7.46 0.783 1.140(0.449~2.895)
    职业
    农民 951 72 7.57 1.000 1.000
    其他 720 39 5.42 0.081 0.699(0.468~1.045) 0.454 1.243(0.703~2.199)
    月平均经济收入(元) 0.408
    ≥5000 235 12 5.11 1.000
    3000~5000 461 26 5.64 0.709 1.104(0.657~1.855)
    2000~3000 662 51 7.70 0.433 0.791(0.440~1.422)
    ≤2000 313 22 7.01 0.358 0.712(0.345~1.469)
    *P < 0.05。
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    使用Logistic回归分析感染CT的相关因素,单因素分析后将P < 0.1的因素纳入多因素分析中。多因素分析结果显示,相比保山市,德宏州(AOR = 2.649,95%CI:1.219~5.755)和普洱市(AOR = 2.708,95%CI:1.231~5.954)CT的感染率相对较高;年龄18~20岁(AOR = 4.346,95%CI:1.468~12.707)和文化程度为初中及以下的(AOR = 1.854,95%CI:1.071~3.211)更可能感染CT,见表1

    本研究对云南省婚检人群中CT感染情况进行了调查,婚检人群在一定程度上可以代表一般人群,从而对评估一个地区的性传播疾病的水平具有参考价值。根据以往的调查,云南省暗娼人群中CT的感染率为14.43%[12],而男男性行为人群(men who have sex with men,MSM)中CT感染率为18.2%[13]。本调查显示,云南省婚检人群中CT的感染率为6.64%,低于重点人群暗娼和MSM中CT的感染率,但与青年学生中CT的感染率8.52%(68/798)差异无统计学意义(χ2 = 2.150,P = 0.084)[14]。女性CT的感染率高于男性,这与以往病例报告的情况相一致[3]。该结果可能是与本次研究中女性阳性感染者首次性行为平均年龄(20.23±3.077)岁,低于男性阳性患者的首次性行为平均年龄(21.44±3.095)岁有关,由于女性首次发生性行为的年龄较小,可能会导致在发生性行为时缺少相应的保护措施,从而进一步增加了女性感染CT的可能性,与本文的研究结果也呈现出一致性。

    调查的结果显示,不同州(市)的CT感染率存在显著的差异。与保山市相比,德宏州和普洱市婚检人群CT感染率相对较高,虽然没有统计学差异,但临沧市的CT感染率也达到了7.94%,反应了这些地区具有较高的性病传播风险。对云南省2010年至2017年淋病的时空聚集分析也显示,云南省的西南地区是一个一类聚集地区,包括了普洱市、德宏州和临沧市的大部分县(市、区)[15],这在一定程度上也反应了这些地区性病传播处于较高的水平。但根据2012~2017年生殖道沙眼衣原体病例报告的情况来看,报告发病率前3位的是昆明市、西双版纳州和德宏州,而普洱市和临沧市的报告发病率只有1.44%和0.83%[3],这可能与不同州(市)医疗机构衣原体检测能力和主动筛查意识及力度存在差异有关,提示在全省还需要进一步加强性病的检测能力,加大筛查力度和动员检测,尽可能地发现传染源,并进行规范化的治疗。

    本次研究调查中,相比于文化程度为高中及以上的人群而言,文化程度为初中及以下的人群属于婚检人群CT感染的危险因素。研究结果显示[16-17],由于该人群文化程度较低,对于性病的传播和防治知识了解较少,缺少自我保护意识,更加易发生高危行为。因此需要针对该人群的特点,加强性病防治知识的健康教育,提高自我保护意识,减少高危性行为的发生,从而减少CT等相关性病的感染和传播。

    2015~2019年我国生殖道沙眼衣原体发病率年均增长10.45%[18],同时部分重点监测的性病低年龄段发病率也在呈逐年上升的趋势[14]。本次调查结果显示,相比于年龄在41岁及其以上人群而言,18~20岁人群是婚检人群CT感染的危险因素,这与珠海市的研究[19]结果相符,同时也与美国、日本等国家的感染情况相一致[20]。本次研究中年龄≤20岁人群,由于缺乏相关的性病防治知识,导致发生首次性行为年龄均在20岁之前(96/96),且近87.5%(84/96)的青少年不能坚持使用安全套,由此可以看出,大多青少年发生首次性行为的年龄较小,且不能坚持使用安全套,这与岑平等[21]的研究结果相一致,这可能与20岁以下人群属于性活跃人群有关。因此应加强对青少年的相关性病防治知识的健康教育,扩大生殖道沙眼衣原体检测的范围。由于CT感染是导致女性生殖感染的常见病原体以及导致女性不孕不育的主要因素之一[22],还会导致男性出现尿道炎、附睾炎、前列腺炎、性功能减退及不育[11],从而影响到生育。目前早发现、早诊断、早治疗是性病防控的最有效措施[12],应加强对婚检人群,尤其是性活跃人群的性病感染情况进行监测,联合各级相关部门,采取多种手段为该人群提供疾病检测,尽可能减少CT的感染与传播,进一步促进优生优育。

    由于本次调查是根据云南省暗娼人群HIV平均感染率,在高、中、低流行区中各任意选取了2个州市的部分县区进行样本的采集,虽然同属于性传播疾病,但两者有各自的传播特点,对样本的代表性可能有潜在的影响,但本研究首次在云南省对婚检人群进行CT感染率的调查,为进一步深入研究CT的流行,制定防治措施提供了基础数据。

  • 图  1  LncRNA RP11-521C20.3过表达质粒图谱

    Figure  1.  LncRNA RP11-521C20.3 overexpression plasmid

    图  2  LncRNA RP11-521C20.3敲减表达质粒图谱

    Figure  2.  LncRNA RP11-521C20.3 knockdown expression plasmid map

    图  3  lncRNA RP11-521C20.3过表达重组质粒测序结果

    Figure  3.  Sequencing results of lncRNA RP11-521C20.3 overexpressed recombinant plasmid

    图  4  lncRNA RP11-521C20.3敲减重组质粒测序结果

    Figure  4.  Sequencing results of lncRNA RP11-521C20.3 knockdown recombinant plasmid

    图  5  293T细胞中慢病毒滴度检测荧光图片(100×)

    Figure  5.  Fluorescent image of lentivirus titer detection in 293T cells (100×)

    图  6  LncRNA RP11-521C20.3过表达慢病毒载体转染A549细胞明场图像和荧光图像(100×)

    Figure  6.  LncRNA RP11-521C20.3 overexpressed lentiviral vector transfected A549 cells with bright field image and fluorescence image (100×)

    图  7  RT-qPCR检测A549稳转株中lncRNA RP11-521C20.3表达量

    *** P<0.001。

    Figure  7.  The expression of lncRNA RP11-521C20.3 in stable A549 strain was detected by RT-qPCR

    图  8  RP11-521C20.3敲减慢病毒载体转染A549细胞明场图像和荧光图像(100×)

    Figure  8.  RP11-521C20.3 knockdown virus vector transfected A549 cells bright field image and fluorescence image(100×)

    图  9  RT-qPCR检测A549稳转株中lncRNA RP11-521C20.3表达量

    ***P < 0.001。

    Figure  9.  The expression of lncRNA RP11-521C20.3 in stable A549 strain detected by RT-qPCR

    表  1  LncRNA RP11-521C20.3 PCR扩增引物序列步骤

    Table  1.   LncRNA RP11-521C20.3 PCR amplification primer sequence

    步骤引物与试剂
    扩增引物Forward 5′-CCCTGCTTTGGGGTTGTGA-3′
    Reverse 5′-GGAGGCTTTGTGGCTTGCT-3′
    PCR扩增体系 5×PrimeSTAR®Buffer 10 µL,dNTP Mixtur 4 µL,正、反向引物各1 µL,模板
    DNA < 200 ng,PrimeSTAR® HS DNA Polymerase 0.5 µL,灭菌蒸馏水加至50 µL
    反应条件 98℃ 10sec,55℃ 5sec,72℃ 1 min/kb,30个循环
    扩增产物凝胶电泳 1.5%琼脂糖凝胶电泳
    胶回收 TaKaRaMiniBEST Agarose Gel DNA Extraction Kit Ver.3.0
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    表  2  过表达重组载体构建酶切反应体系

    Table  2.   Enzyme digestion reaction system for construction of overexpressed recombinant vectors

    试剂体积
    质粒 2 μg
    10 x反应Buffer 5 µL
    SbfI 1 µL
    EcoRI 1 µL
    ddH2O Up to 50 µL
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    表  3  过表达重组质粒反应体系

    Table  3.   Overexpressed recombinant plasmid reaction system

    试剂体积
    5x反应Buffer 4 µL
    插入片段 2 µL
    线性化体 1 µL
    无缝克隆酶 2 µL
    CCH2O Up to 20 µL
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    表  4  过表达重组质粒鉴定体系

    Table  4.   Identification system of overexpressed recombinant plasmid

    试剂体积
    Premix Tag 25 µL
    模板 1 µL
    引物1(20 µM) 1 µL
    引物2(20 µM) 1 µL
    超纯水 Up to 50 µL
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    表  5  慢病毒包装试剂

    Table  5.   Lentivirus packaging reagent

    试剂体积
    载体质粒 20 μg
    pHelper 1. 0载体质粒 15 μg
    pHelper2. 0载体质粒 10 μg
    转染试剂 Up to 1mL
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    表  6  shRNA序列

    Table  6.   shRNA sequence

    名称序列(5′-3′)
    Y16185-FCcggCCAGATCTGTTGACCAACTTTCAAGAGAAGTTGGTCAACAGATCTGGTTTTTTg
    Y16185-RaattcaaaaaaCCAGATCTGTTGACCAACTTCTCTTGAAAGTTGGTCAACAGATCTGG
    GL427NC2-FCcggCCTAAGGTTAAGTCGCCCTCGCTCGAGCGAGGGCGACTTAACCTTAGGTTTTTTg
    GL427NC2-RaattcaaaaaaCCTAAGGTTAAGTCGCCCTCGCTCGAGCGAGGGCGACTTAACCTTAGG
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    表  7  敲减载体构建酶切反应体系

    Table  7.   Enzyme digestion reaction system for knockdown vector construction

    试剂体积
    质粒 2 μg
    10x反应Buffer 5 μL
    AgeI 1 μL
    EcoRI 1 μL
    ddH2O Up to 50 μL
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    表  8  敲减重组体PCR鉴定体系

    Table  8.   Knock-down recombinant PCR identification system

    试剂体积
    Premix Tag 2 μg
    模板 1 μL
    引物1(20 μM) 1 μL
    引物2(20 μM) 1 μL
    ddH2O Up to 50 μL
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出版历程
  • 收稿日期:  2022-12-13
  • 网络出版日期:  2023-09-12
  • 刊出日期:  2023-10-25

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