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miR-218-5p通过调控LAYN抑制结肠癌发展的机制

蔡冰 张伟 刘静 刘屹

蔡冰, 张伟, 刘静, 刘屹. miR-218-5p通过调控LAYN抑制结肠癌发展的机制[J]. 昆明医科大学学报, 2023, 44(12): 32-40. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20231206
引用本文: 蔡冰, 张伟, 刘静, 刘屹. miR-218-5p通过调控LAYN抑制结肠癌发展的机制[J]. 昆明医科大学学报, 2023, 44(12): 32-40. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20231206
Bing CAI, Wei ZHANG, Jing LIU, Yi LIU. miR-218-5p Inhibits the Development of Colon Cancer by Regulating LAYN[J]. Journal of Kunming Medical University, 2023, 44(12): 32-40. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20231206
Citation: Bing CAI, Wei ZHANG, Jing LIU, Yi LIU. miR-218-5p Inhibits the Development of Colon Cancer by Regulating LAYN[J]. Journal of Kunming Medical University, 2023, 44(12): 32-40. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20231206

miR-218-5p通过调控LAYN抑制结肠癌发展的机制

doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20231206
基金项目: 陕西省卫生健康委员会重点基金资助项目(2022A016)
详细信息
    作者简介:

    蔡冰(1983~) ,女,陕西渭南人,主治医师,医学学士,主要从事常见恶性肿瘤的病理诊断研究工作

  • 中图分类号: R735.3

miR-218-5p Inhibits the Development of Colon Cancer by Regulating LAYN

  • 摘要:   目的  探讨miR-218-5p和LAYN在结肠癌中的表达水平以及二者的调控关系对结肠癌进展的影响。  方法  采用RT-qPCR对结肠癌组织、癌旁组织以及细胞系中的miR-218-5p的表达进行检测。采用Western blot对结肠癌组织、癌旁组织和细胞系中的LAYN蛋白表达水平进行检测。采用原位杂交(in situ hybridizsation,ISH)实验对结肠癌组织和癌旁组织中的miR-218-5p的表达进行检测。采用免疫组化(immunohistochemistry,IHC)实验对结肠癌组织和癌旁组织中的LAYN蛋白分布和表达进行检测。采用双荧光素酶实验对miR-218-5p与LAYN的3’ -非翻译区(rn-translation region,UTR)的结合关系进行检测。采用CCK-8对细胞的增殖进行检测;采用Transwell法对细胞的侵袭能力进行检测;采用流式细胞术对细胞的凋亡水平进行检测;采用Western blot对细胞中cleaved Caspase3表达水平进行检测。  结果  在结肠癌组织和结肠癌细胞系中,miR-218-5p表达降低并且HT-29细胞中表达最低(P < 0.0001),LAYN表达升高并且HT-29细胞中表达最高(P < 0.05)。双荧光素酶报告基因实验结合Western blot实验表明miR-218-5p可以结合在LAYN的3′ UTR区域并抑制其蛋白表达(P < 0.01)。在细胞实验中,过表达miR-218-5p抑制细胞增殖(P < 0.05)、侵袭(P < 0.001)并增加凋亡(P < 0.01)和cleaved Caspase3蛋白的表达(P < 0.01);过表达LAYN促进细胞增殖(P < 0.05)、侵袭(P < 0.001)并减少凋亡(P < 0.0001)和cleaved Caspase 3蛋白的表达(P < 0.01),同时过表达miR-218-5p和LAYN部分逆转了上述变化。  结论  在结肠癌组织中,miR-218-5p表达水平降低,细胞实验表明miR-218-5p通过靶向调控LAYN抑制细胞的侵袭和增殖,促进其凋亡。
  • 图  1  miR-218-5p和LAYN在结肠癌组织及癌旁组织中的表达情况

    A:RT-qPCR检测miR-218-5p的相对表达量;B:临床结肠癌组织和癌旁组织中miR-218-5p的原位杂交结果(200×);C和D:Western blot检测LAYN蛋白的结果;E和F:临床结肠癌组织和癌旁组织中LAYN的IHC检测结果(200×);与癌旁组织比较,*P < 0.05,****P < 0.0001。

    Figure  1.  The expression of miR-218-5p and LAYN in colon cancer tissues and paracancerous tissues

    图  2  miR-218-5p和LAYN在结肠癌细胞系中的表达情况

    A:结肠癌细胞系和正常结肠上皮细胞FHC中miR-218-5p的相对表达量;B和C:结肠癌细胞系和正常结肠上皮细胞FHC中LAYN蛋白的Western blot检测结果;与FHC细胞比较,**P < 0.01,***P < 0.001,****P < 0.0001;与HT-29细胞比较,#P < 0.05,####P < 0.0001。

    Figure  2.  The expression of miR-218-5p and LAYN in colon cancer cell lines

    图  3  过表达miR-218-5p抑制HT29细胞增殖、侵袭并诱导凋亡

    A:RT-qPCR检测miR-218-5pmimic的转染效率;B:CCK-8检测细胞的增殖能力;C:Transwell检测细胞的侵袭能力;D:Annexin V FITC/PI细胞凋亡实验检测细胞的凋亡水平;E:Western blot检测cleaved Caspase3表达水平;与mimic NC组比较,*P < 0.05,**P < 0.01,***P < 0.001,****P < 0.0001。

    Figure  3.  Overexpression of miR-218-5p inhibits the proliferation,invasion and induces apoptosis of HT29 cells

    图  4  miR-218-5p靶向LAYN

    A:Starbase3.0数据库预测miR-218-5p和LAYN的靶向结合序列;B:双荧光素酶报告基因实验检测miR-218-5p与LAYN的靶向结合关系;C和D:Western blot检测过表达miR-218-5p后LAYN蛋白表达水平;与mimic NC组比较,**P < 0.01。

    Figure  4.  miR-218-5p targeted LAYN

    图  5  miR-218-5p靶向调控LAYN抑制HT29细胞增殖、侵袭

    A和B:Western blot检测细胞中的LAYN蛋白表达水平变化;C:CCK-8检测细胞的增殖能力;D:Transwell检测细胞的侵袭能力;与mimic NC+pcDNA3.1组比较, ***P < 0.001;与pcDNA3.1-LAYN+mimic NC组比较,#P < 0.05,##P < 0.01。

    Figure  5.  miR-218-5p inhibited proliferation,metastasis of HT-29 cells by targeting LAYN

    图  6  miR-218-5p靶向调控LAYN诱导HT-29细胞凋亡

    A:Annexin V FITC/PI细胞凋亡实验检测细胞的凋亡水平;B:Western blot检测细胞中的LAYN蛋白表达水平变化;与mimic NC+pcDNA3.1组比较,*P < 0.05,****P < 0.0001;与pcDNA3.1-LAYN+mimic NC组比较,#P < 0.05,##P < 0.01。

    Figure  6.  miR-218-5p induced apoptosis of HT-29 cells by targeting LAYN

  • [1] 顾晋,汪建平. 中国结直肠癌诊疗规范(2023版)[J]. 协和医学杂志,2023,14(4):706-733.
    [2] Sung H,Ferlay J,Siegel R L,et al. Global cancer statistics 2020: GLOBOCAN estimates of incidence and mortality worldwide for 36 cancers in 185 countries[J]. CA Cancer J Clin,2021,71(3):209-249. doi: 10.3322/caac.21660
    [3] Yang Y,Meng W J,Wang Z Q. MicroRNAs in colon and rectal cancer - novel biomarkers from diagnosis to therapy[J]. Endocr Metab Immune Disord Drug Targets,2020,20(8):1211-1226. doi: 10.2174/1871530320666200506075219
    [4] Garo L P,Ajay A K,Fujiwara M,et al. MicroRNA-146a limits tumorigenic inflammation in colorectal cancer[J]. Nat Commun,2021,12(1):2419. doi: 10.1038/s41467-021-22641-y
    [5] Zhou X G,Huang X L,Liang S Y,et al. Identifying miRNA and gene modules of colon cancer associated with pathological stage by weighted gene co-expression network analysis[J]. Onco Targets Ther,2018,11:2815-2830. doi: 10.2147/OTT.S163891
    [6] Tammi M I,Oikari S,Pasonen-Seppänen S,et al. Activated hyaluronan metabolism in the tumor matrix - causes and consequences[J]. Matrix Biol,2019,78-79:147-164. doi: 10.1016/j.matbio.2018.04.012
    [7] Pan J H,Zhou H,Cooper L,et al. LAYN is a prognostic biomarker and correlated with immune infiltrates in gastric and colon cancers[J]. Front Immunol,2019,10:6. doi: 10.3389/fimmu.2019.00006
    [8] 李哲轩, 张阳, 周彤, 等. 2020全球癌症统计报告解读[J]. 2021, 7(2): 14.
    [9] Iacona J R, Lutz C S. miR‐146a‐5p: Expression, regulation, and functions in cancer[J], 2019, 10(4): e1533.
    [10] Huang X,Zhu X,Yu Y,et al. Dissecting miRNA signature in colorectal cancer progression and metastasis[J]. Cancer Lett,2021,501:66-82. doi: 10.1016/j.canlet.2020.12.025
    [11] Payandeh Z,Khalili S,Somi M H,et al. PD-1/PD-L1-dependent immune response in colorectal cancer[J]. J Cell Physiol,2020,235(7-8):5461-5475. doi: 10.1002/jcp.29494
    [12] Wang H. MicroRNAs and apoptosis in colorectal cancer[J]. Int J Mol Sci,2020,21(15):5353. doi: 10.3390/ijms21155353
    [13] Zhang N,Hu X,Du Y,et al. The role of miRNAs in colorectal cancer progression and chemoradiotherapy[J]. Biomed Pharmacother,2021,134:111099. doi: 10.1016/j.biopha.2020.111099
    [14] Ilm K,Fuchs S,Mudduluru G,et al. MACC1 is post-transcriptionally regulated by miR-218 in colorectal cancer[J]. Oncotarget,2016,7(33):53443-53458. doi: 10.18632/oncotarget.10803
    [15] Yu H,Gao G,Jiang L,et al. Decreased expression of miR-218 is associated with poor prognosis in patients with colorectal cancer[J]. Int J Clin Exp Pathol,2013,6(12):2904-2911.
    [16] Deng M,Zeng C,Lu X,et al. miR-218 suppresses gastric cancer cell cycle progression through the CDK6/Cyclin D1/E2F1 axis in a feedback loop[J]. Cancer Lett,2017,403:175-185. doi: 10.1016/j.canlet.2017.06.006
    [17] Pu Y,Wei J,Wu Y,et al. THUMPD3-AS1 facilitates cell growth and aggressiveness by the miR-218-5p/SKAP1 axis in colorectal cancer[J]. Cell Biochem Biophys,2022,80(3):483-494. doi: 10.1007/s12013-022-01074-4
    [18] Liu Q Z,Yu H R,Wang L P,et al. Up-regulation of PUM1 by miR-218-5p promotes colorectal tumor-initiating cell properties and tumorigenesis by regulating the PI3K/AKT axis[J]. J Gastrointest Oncol,2023,14(1):233-244. doi: 10.21037/jgo-23-6
    [19] Liu M,Yin K,Guo X,et al. Diphthamide biosynthesis 1 is a novel oncogene in colorectal cancer cells and is regulated by miR-218-5p[J]. Cell Physiol Biochem,2017,44(2):505-514. doi: 10.1159/000485087
    [20] De Simone M,Arrigoni A,Rossetti G,et al. Transcriptional landscape of human tissue lymphocytes unveils uniqueness of tumor-infiltrating T regulatory cells[J]. Immunity,2016,45(5):1135-1147. doi: 10.1016/j.immuni.2016.10.021
  • [1] 尹小川, 尹瑞扬, 李冉华, 蔡方奇, 崔岳, 毕涛, 童兴和.  恶性胸膜间皮瘤细胞培养条件及CDKN2B对癌细胞的作用, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20240105
    [2] 秦祥川, 李金秋, 黄晓婧, 忽吐比丁·库尔班, 阿仙姑·哈斯木.  HPV E6通过Rap1信号通路影响宫颈癌细胞增殖、侵袭及迁移的研究, 昆明医科大学学报.
    [3] 刘邦卿, 李剑锋, 刘晓辉, 张劲男, 梁金屏.  miR-196b靶向ERG促进肺腺癌的增殖和迁移, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20231023
    [4] 张权昌, 吴乔联, 刘宇, 赵欣.  腹腔镜与开腹完全结肠系膜切除术对结肠癌患者血小板活化、并发症发生率及肿瘤复发的影响, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20230919
    [5] 胡滔, 吴怡, 耿文达, 章意坚, 贺瑄, 李珊珊, 习杨彦彬, 邓丽玲.  自主运动训练通过调节Caspase-3的活性抑制人BRCA1突变乳腺癌的增殖与生长, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20230419
    [6] 张晔琳, 马丽娅, 彭旭晖, 杨禾丰, 佘睿.  hsa-let-7a-5p调控牙周膜干细胞增殖及凋亡, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20231028
    [7] 张梁, 王保全, 雷喜锋, 王旭, 柯阳, 张玮.  miR-29c-3p/IGF1分子轴对肝星状细胞活化,增殖和凋亡的作用机制, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20230926
    [8] 赵斌, 段元鹏, 张国颖, 毕城伟, 杨李波, 施致裕, 杨勇, 张建朋, 高婷.  CircRNA EZH2通过调控miR-30c-5p促进前列腺癌细胞增殖和迁移, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20220731
    [9] 王保全, 张伟, 田园, 雷喜锋, 王旭.  miR-142-5p通过CCND1调控胆囊癌细胞的增殖和转移, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20220223
    [10] 张玮, 王保全, 雷喜锋, 王旭, 张梁.  miR-125b-5p调控HK2抑制胆囊癌细胞增殖和糖酵解, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20221206
    [11] 李珊珊, 全宇航, 龚玲俐, 杨会, 浦劲宏, 王忠慧.  七氟烷对人骨肉瘤Saos2细胞增殖、侵袭、迁移及凋亡的影响, 昆明医科大学学报.
    [12] 戈佳云.  慢病毒介导的FHIT基因过表达调控人肝癌细胞株生长实验研究, 昆明医科大学学报.
    [13] 朱焕利.  VASP信号分子与大肠癌的关系, 昆明医科大学学报.
    [14] 刘立鑫.  二甲双胍对肝癌细胞HCCLM3生物学行为的影响, 昆明医科大学学报.
    [15] 王海峰.  上调microRNA-101沉默EZH2基因表达对人膀胱癌T24细胞系增殖和凋亡的影响, 昆明医科大学学报.
    [16] 刘锋.  槲皮素对人肝癌高转移细胞生长及侵袭能力的影响, 昆明医科大学学报.
    [17] 刘佳鑫.  SDF-1/CXCR4在恶性胶质瘤细胞体外增殖、迁移及侵袭中的作用, 昆明医科大学学报.
    [18] 蒋伟国.  重组表达hTFF2促进结肠癌细胞迁移和失巢增殖作用, 昆明医科大学学报.
    [19] 蒋伟国.  重组表达hTFF2促进结肠癌细胞迁移和失巢增殖作用, 昆明医科大学学报.
    [20] 夏英杰.  SD大鼠髁状突颈部骨折对大鼠髁状突软骨细胞增殖与凋亡的影响, 昆明医科大学学报.
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出版历程
  • 收稿日期:  2023-09-10
  • 网络出版日期:  2023-12-20
  • 刊出日期:  2023-12-25

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