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CircRNA EZH2通过调控miR-30c-5p促进前列腺癌细胞增殖和迁移

赵斌 段元鹏 张国颖 毕城伟 杨李波 施致裕 杨勇 张建朋 高婷

赵斌, 段元鹏, 张国颖, 毕城伟, 杨李波, 施致裕, 杨勇, 张建朋, 高婷. CircRNA EZH2通过调控miR-30c-5p促进前列腺癌细胞增殖和迁移[J]. 昆明医科大学学报, 2022, 43(7): 25-32. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20220731
引用本文: 赵斌, 段元鹏, 张国颖, 毕城伟, 杨李波, 施致裕, 杨勇, 张建朋, 高婷. CircRNA EZH2通过调控miR-30c-5p促进前列腺癌细胞增殖和迁移[J]. 昆明医科大学学报, 2022, 43(7): 25-32. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20220731
Cui WANG, Lu YANG, Dongmei WU, Simin YANG, Qunsong KANG. The Mediating Effect of Hospital Unit Safety Climate between the Nursing Work Environment and Job Satisfaction[J]. Journal of Kunming Medical University, 2024, 45(6): 175-181. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20240625
Citation: Bin ZHAO, Yuanpeng DUAN, Guoying ZHANG, Chengwei BI, Libo YANG, Zhiyu SHI, Yong YANG, Jianpeng ZHANG, Ting GAO. CircRNA EZH2 Promotes Proliferation and Migration of Prostate Cancer Cells by Regulating miR-30c-5p[J]. Journal of Kunming Medical University, 2022, 43(7): 25-32. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20220731

CircRNA EZH2通过调控miR-30c-5p促进前列腺癌细胞增殖和迁移

doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20220731
基金项目: 云南省科技厅 - 昆明医科大学应用基础研究联合专项基金资助项目 (202001AY070001-069);云南省教育厅科学研究基金资助项目(2020J0207)
详细信息
    作者简介:

    赵斌(1976~),男,云南蒙自人,医学硕士,副教授,主要从事泌尿外科肿瘤的研究与临床诊治研究工作

    通讯作者:

    高婷,E-mail:330155226@qq.com

  • 中图分类号: R737.25

CircRNA EZH2 Promotes Proliferation and Migration of Prostate Cancer Cells by Regulating miR-30c-5p

  • 摘要:   目的  探究circRNA EZH2通过调控miR-30c-5p对前列腺癌细胞的增殖和迁移的影响及其相关作用机制。  方法  通过TCGA数据库分析circRNA EZH2在前列腺癌组织中的表达差异及生存曲线;转染siRNA敲降前列腺癌LNCaP细胞中的circRNA EZH2表达后,CCK-8实验和划痕实验观察LNCaP细胞增殖和迁移,RT-qPCR和Western blot法测定miR-30c-5p、JAK1和PI3K蛋白的表达。  结果  在前列腺癌组织中circRNA EZH2的表达显著上调(P < 0.0001),且高表达circRNA EZH2的患者生存率降低;沉默circRNA EZH2的LNCaP细胞较正常LNCaP细胞的增殖和迁移能力下降(P < 0.0001),miR-30c-5p表达增高(P < 0.0001),JAK1表达降低(P < 0.0001),PI3K信号受抑制。  结论  EZH2在前列腺癌中高表达,通过调控miR-30c-5p激活PI3K信号通路促进前列腺癌LNCaP细胞的增殖和迁移。
  • 胆管细胞癌(cholangiocarcinoma,CCA)是一种具有高度恶性的难治性肝胆系统肿瘤,起源于胆管上皮细胞,约占所有原发性肝胆肿瘤的15%[1]。尽管在大多数国家胆管癌被认为是一种发病率 < 6/100000的相对冷僻的疾病,但在全球范围内其发病率及死亡率不断上升[2-4]。CCA主要生物学特征是在癌症早期就有淋巴结和远处转移扩散的侵袭性行为,尽管通过近几十年的研究,对于CCA的认识、诊断及治疗有了很大程度提升,但在过去的10 a中,患者的预后并没有实质性的进展,5 a生存率(7%~20%)及术后复发率依然不尽人意[5-9]。近些年,在上皮起源的癌细胞侵袭转移过程中,观察到上皮细胞间连接、黏附的分解和细胞角蛋白丝的丢失,同时伴随着迁移功能的获得并产生大量细胞外基质成分,转化成间质细胞,细胞就可以离开其在上皮中的原始定位,从而向其它区域扩散,这一过程被命名为上皮-间质转化(epithelial-mesenchymal transition,EMT)[10]。其中Snail作为EMT过程中的关键转录因子,在体内通过抑制E-钙黏蛋白表达诱导上皮细胞发生EMT的表型变化,使肿瘤细胞在进展期间获得侵袭性和转移性[11]。最新的研究发现,LOXL2参与了Snail的基因表达及其所诱导的EMT的调控,因此LOXL2是Snail的上游调节因子。

    本实验研究旨在了解LOXL2及Snail在胆管癌中的表达关系以及临床意义,分析LOXL2及Snail与临床病理特征的关系,初步探讨LOXL2及Snail在胆管癌的研究意义,为进一步在临床前及临床研究提供实验数据。

    收集云南省第一人民医院于2014年1月至2021年4月肝胆外科收治并行根治性手术切除的胆管癌患者的病理组织标本31例。31例患者年龄46~76岁,平均年龄60.1岁,其中男性16例,女性15例。同时收集记录临床病理参数,包括肿瘤部位、肿瘤大小(以肿瘤最大直径表示)、淋巴结转移、肿瘤分化程度、患者性别、年龄、术后生存时间。31例患者在行根治性手术切除前均未接受放疗、化疗或其他辅助治疗。所有病例均经云南省第一人民医院病理科确诊为胆管癌。以癌旁正常胆管组织作对照。随访日期到2022年3月1日结束。

    病理组织采用10%甲醛固定、脱水透明后石蜡包埋、制作3 μm厚组织切片,67 ℃烤片40 min,二甲苯溶液浸泡2次各15 min,依次不同浓度乙醇(100%、100%、95%、85%、75%)各2 min,抗原修复采用柠檬酸钠缓冲液(福州迈新生物,0.01 M pH6.0)高火加热3 min,后自然冷却至室温,3%过氧化氢(福州迈新生物)避光孵育15 min阻断内源性过氧化物酶,5%牛血清蛋白(德国Biofroxx公司)封闭非特异性抗原位点60 min,孵育一抗:单克隆鼠抗Snail+SLUG抗体(1∶500,英国Abcam公司,货号ab224731)4 ℃过夜;孵育一抗:多克隆兔抗LOXL2抗体(1∶100,英国Abcam公司,货号ab96233)4 ℃过夜,孵育二抗(抗小鼠/兔IgG聚合物,福州迈新生物,货号KIT-9921)18 min,显微镜下控制DAB显色(北京中杉金桥公司),苏木素复染,盐酸乙醇分化,温水浸泡反蓝,脱水,二甲苯透明,中性树胶(福州迈新生物)封片,正置荧光显微镜(德国ZEISS公司)下镜检采集数据。

    评分方法参考既往研究[12-14]所述,对染色结果使用Image pro plus软件进行判定,综合2种蛋白的染色面积和强度分别进行评分,随后得分相加得到2种蛋白此次免疫组织化学染色结果。染色强度评判标准:棕褐色2分,棕黄色1分,淡黄色或无染色0分。染色面积评判标准:棕色面积 < 50%得分为0分,棕色面积 > 50%得分为1分。染色结果分别交给2名病理科医师评估,染色面积和染色强度分值相加,总分≥2分判定为高表达, < 2分为低表达。

    使用SPSS 26.0软件进行统计学分析,2种蛋白表达强度相关性分析采用Spearman法,LOXL2、Snail蛋白表达强度与临床病理参数相关性分析使用Fisher确切概率法。绘制Kaplan-Meier总体生存曲线,Log-rank检验分析总体生存率差异,采用Cox回归模型进行多因素生存分析。P < 0.05为差异有统计学意义。

    LOXL2表达集中在胞质和核周,以胞质为主,见图1;Snail表达集中在胞质及胞核,癌旁正常胆管组织未见2种蛋白表达,见图1。LOXL2高表达有16例,低表达有15例;Snail高表达有13例,低表达有18例。其中10例样本同时存在2种蛋白的高表达,12例同时存在2种蛋白的低表达。LOXL2蛋白的表达与Snail蛋白的表达存在着一定的正相关关系(r = 0.430,P = 0.016),差异具有统计学意义(P < 0.05),见表1

    图  1  胆管癌病理组织和癌旁正常胆管组织LOXL2和Snail表达(×200)
    A:胆管癌组织中LOXL2低表达(箭头所示部位胞质);B:胆管癌组织中LOXL2高表达(黑色箭头所示部位胞质,红色箭头所示部位核周);C:癌旁正常胆管组织中LOXL2无表达(箭头所示癌旁正常胆管细胞)D:胆管癌组织中Snail低表达(箭头所示部位胞质);E:胆管癌组织中Snail高表达(黑色箭头所示部位胞质,红色箭头所示部位胞核);F:癌旁正常胆管组织中Snail无表达(箭头所示癌旁正常胆管细胞)。
    Figure  1.  Expression of LOXL2 and Snail in pathological tissues and adjacent normal bile duct tissues of cholangiocarcinoma(×200)
    表  1  胆管癌病理组织中LOXL2和Snail表达相关性(n)
    Table  1.  Correlation between LOXL2 and Snail expression in pathological tissues of cholangiocarcinoma (n)
    表达情况LOXL2rP
    高表达(n = 16)低表达(n = 15)
    Snail
    高表达(n = 13) 10 3 0.430 0.016*
    低表达(n = 18) 6 12
      *P < 0.05。
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    Snail高表达与胆管癌淋巴结转移存在密切联系(P = 0.025),差异具有统计学意义(P < 0.05),与其余临床病理参数均无显著相关性(P > 0.05);LOXL2表达与肿瘤大小、肿瘤位置、分化程度、淋巴结转移、患者性别、年龄等临床病理特征均无显著相关性(P > 0.05),见表2

    表  2  胆管癌病理组织中LOXL2和Snail表达与临床病理参数相关性[n(%)]
    Table  2.  Correlation between LOXL2 and Snail expression and clinicopathological parameters in pathological tissues of cholangiocarcinoma [n(%)]
    临床病理参数nSnail表达PLOXL2表达P
    高表达低表达高表达低表达
    性别 16 6(37.5) 10(62.5) 0.722 9(56.3) 7(43.7) 0.724
    15 7(46.7) 8(53.3) 7(46.7) 8(53.3)
    年龄(岁) ≥60 16 8(50.0) 8(50.0) 0.473 11(68.7) 5(31.3) 0.076
    < 60 15 5(33.3) 10(66.7) 5(33.3) 10(66.7)
    肿瘤大小(cm) ≥5.7 17 6(35.3) 11(64.7) 0.481 7(41.2) 10(58.8) 0.285
    < 5.7 14 7(50.0) 7(50.0) 9(64.3) 5(35.7)
    肿瘤位置 肝内 26 10(38.5) 16(61.5) 0.625 13(50.0) 13(50.0) 1.000
    肝外 5 3(60.0) 2(40.0) 3(60.0) 2(40.0)
    肿瘤分化程度 高中 14 5(35.7) 9(64.3) 0.717 8(57.1) 6(42.9) 0.722
    中低 17 8(47.1) 9(52.9) 8(47.1) 9(52.9)
    淋巴结转移 15 10(66.7) 5(33.3) 0.025* 10(66.7) 5(33.3) 0.156
    16 3(18.7) 13(81.3) 6(37.5) 10(62.5)
      *P < 0.05。
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    LOXL2与Snail免疫组化染色结果与生存结果分析表明,Snail高表达的病例术后总体生存率较低(LogRankP = 0.032),见图2,同时LOXL2高表达的病例术后总体生存率较低(LogRankP = 0.046),见图3。单因素总体生存率分析结果表明Snail高表达、有淋巴结转移与胆管癌患者更差的预后相关(P < 0.05);多因素Cox回归模型分析结果表明淋巴结转移可能是影响胆管癌患者预后的独立因素(P = 0.017),见表3

    图  2  胆管癌患者术后总生存期与Snail表达的关系
    Figure  2.  Association between postoperative overall survival and Snail expression in patients with cholangiocarcinoma
    图  3  胆管癌患者术后总生存期与LOXL2表达的关系
    Figure  3.  Association between postoperative overall survival and LOXL2 expression in patients with cholangiocarcinoma
    表  3  胆管癌患者总生存率预后因素的单因素和多因素分析
    Table  3.  Univariate and multivariate analysis of prognostic factors for overall survival of patients with cholangiocarcinoma

    因数
    单因素分析 多因素分析
    HR(95% CIP HR(95% CIP
    性别 1.042(0.467~2.323) 0.920 - -
    年龄 1.354(0.605~3.301) 0.461 - -
    肿瘤大小 0.882(0.391~1.993) 0.764 - -
    肿瘤位置 0.665(0.226~1.960) 0.460 - -
    分化程度 0.724(0.319~1.643) 0.440 - -
    淋巴转移 0.267(0.115~0.621) 0.002** 0.244(0.077~0.776) 0.017*
    Snail表达 0.437(0.194~0.983) 0.045* 1.135(0.377~3.420) 0.822
    LOXL2表达 0.445(0.192~1.030) 0.059 - -
      *P < 0.05。
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    由于胆管癌早期就表现出侵袭性行为,导致手术相关风险较大、根治性手术切除率低、术后复发率高以及较低的术后总生存率。因此了解胆管癌中导致侵袭性行为的相关机制是目前研究的一个重点,从而为预防癌症进展和复发提供一些新的治疗靶点,进而改善胆管癌的治疗效果。

    2003年,G Akiri等[15]首次证明LOXL2可以促进肿瘤纤维化并增强乳腺癌的侵袭性。自那时以来,LOXL2因其在肿瘤发生发展中复杂且关键作用而引起了越来越多的关注。在许多癌症中观察到LOXL2异常高表达。以往的研究发现,在头颈部鳞状细胞癌[16]、乳腺癌[17]、肺癌[18]、结肠癌[19]、胃癌[20]、宫颈癌[21]、肝癌[22]和食管癌[23]中,LOXL2高表达与生存时间缩短和预后不良有关。LOXL2促进肿瘤的增殖、迁移、侵袭和转移,导致癌症的恶性进展[24-25]。LOXL2可以通过多种信号通路促进EMT并参与肿瘤微环境的组成,是肿瘤进展和转移的“帮凶”,其高表达是许多癌症患者的风险因素[26]。同时,高应鸿等[27]研究发现在48例胆管癌患者中,LOXL2的高表达与肿瘤的侵袭转移有关。D Bergeat等[28]通过对80例肝内胆管癌患者进行研究发现,LOXL2的高表达与不良预后有关,LOXL2高表达是影响肝内胆管癌患者总生存期和无病生存期的独立预后因素,并提出LOXL2有希望成为肝内胆管癌新的预后标志物和治疗靶点。在本研究中,LOXL2在胆管癌病理组织中呈现异常表达,然而其高表达与患者临床病理参数无明显相关性,这可能与本研究的样本容量小、免疫组织化学染色半定量分析结果准确性的差异有关,希望未来能有多中心、更大样本量以及更精细的实验设计进行更深入的研究。对胆管癌患者术后生存的随访分析显示,LOXL2高表达患者的术后生存率相对较低,提示在一定程度上LOXL2的表达可以预测胆管癌患者的预后。

    Snail最早在黑腹果蝇中被发现[29],并被证明对中胚层的形成至关重要[30]。EMT可由不同的信号分子触发,如WNTs、成纤维细胞生长因子(fibroblast growth factor,FGF)、表皮生长因子(epidermal growth factor)、骨形态发生蛋白(bone morphogenetic protein,BMP)、转化生长因子β(transforming growth factor-β,TGF-β)、Notch、肝细胞生长因子(hepatocyte growth factor,HGF),并且这些信号分子都已被证实可以在不同的细胞环境中诱导Snail,从而使得肿瘤细胞获得侵袭性,向远处转移。过往研究表明,Snail在正常胆管细胞中不表达,但在胆管癌细胞中存在过表达情况,且其过表达促进肿瘤细胞侵袭、转移能力增强。康强等[14]对55例肝内胆管癌患者病理组织标本进行Snail蛋白免疫组织化学染色研究,结果提示肝内胆管癌患者病理组织标本Snail高表达与肿瘤的侵袭转移及不良预后有关,并认为Snail可以预测肝内胆管癌患者预后,同时也有望成为生物治疗的作用靶点;X Y Huang等[13]对140例肝内胆管细胞癌病理组织标本进行相关EMT指标的研究中,也得到了类似结果。在本次对31例胆管癌病理组织样本研究中,发现胆管癌患者病理组织中Snail呈现异常表达,并且其表达与临床病理参数相关。结果表明,Snail的高表达与侵袭转移性指标有关。对胆管癌患者术后生存的随访分析显示,Snail高表达的胆管癌患者的术后生存率相对较低。对多种变量进行胆管癌患者总生存期预后因素单因素和多因素分析的结果表明,Snail和侵袭性指标可作为预测胆管癌患者预后的指标。结合以往的研究,猜测胆管癌中Snail高表达可能会诱导肿瘤细胞EMT过程的进展,进而提高侵袭和转移能力。因此,笔者预测,对于Snail高表达的胆管癌患者,可以对Snail进行靶向沉默,从而减缓患者肿瘤远处转移和复发,这为胆管癌靶向药物的研究和开发提供了一个潜在位点。同时,对于胆管癌患者,术后对其病理组织常规行免疫组织化学染色,了解Snail表达情况,可对胆管癌患预后进行一定评估并为早期干预提供有力数据,对延长术后总体生存时间具有重要意义。

    Snail在EMT过程中主要抑制E-钙黏蛋白的合成,其可通过Snail和Gfi(SNAG)结构域招募mSin3A协同加压复合物和组蛋白去乙酰化酶(HDAC),以抑制E-钙粘蛋白的表达[31],在这一过程中H Peinado等[32]发现LOXL2可以与SNAG结构域相互作用与Snail协同抑制E-钙黏蛋白,同时Snail介导的EMT依赖于Snail蛋白结构中完整K98和K137两个赖氨酸残基,LOXL2与K98和K137残基相互作用对维持Snail稳定性有着至关重要的作用。此外Snail的稳定性还受到GSK3β依赖性磷酸化和泛素化的精细控制,GSK3β以两种不同的基序磷酸化Snail,诱导其核输出并与β-Trcp结合,从而导致Snail降解,而LOXL2可以抵消这一过程,从而使Snail趋于稳定[33]。在喉癌和乳腺癌中,观察到LOXL2的过度表达促进其在内质网中的积累,并在内质网中与热休克蛋白5(HSPA5)相互作用,从而激活内质网应激反应的IRE1-XBP1信号通路。LOXL2依赖的IRE1-XBP1信号通路进而可以激活诱导几种EMT转录因子如Snail和ZEB的表达上调,进而有利于这些肿瘤的高侵袭性和转移[34]。在肝癌中发现LOXL2能够促进肿瘤通过Snail-FBP1轴上调HIF-1α/VEGF信号通路,促进肝癌的微血管生成和侵袭转移[35]。可以看出LOXL2通过细胞内和细胞外多种通路调节Snail蛋白的表达,然而在胆管癌中关于LOXL2与Snail表达相关性尚不明确,因此收集云南省第一人民医院胆管癌患者病理组织标本并对病理组织中LOXL2及Snail 2种蛋白表达进行免疫组化检测。在31例胆管癌病理组织标本中,研究结果表明,在胆管癌病理组织样本中LOXL2与Snail存在共表达情况,并且LOXL2的表达与Snail的表达存在一定的正相关关系,同时2种蛋白表达对患者术后总生存期的影响具有一定的相似性,因此推测二者在胆管癌中具有一定的协同性,此结果与以往在恶性肿瘤中的研究具有一定的相似性。但对于胆管癌中LOXL2与Snail表达调节涉及的具体方式及信号通路有待通过进一步的实验进行探讨和研究。

    综上所述,LOXL2和Snail在胆管癌中呈现过表达,Snail过表达与胆管癌淋巴结转移有关,同时淋巴结转移是影响胆管癌患者预后的独立因素。在胆管癌中LOXL2和Snail表达存在一定的正相关关系。LOXL2和Snail过表达的胆管癌患者术后生存率相对较低,提示LOXL2和Snail可能是胆管癌患者预后的影响因素,有望成为生物治疗的新靶点。

  • 图  1  CircRNA EZH2在前列腺癌中高表达

    A:CircRNA EZH2在前列腺癌组织中的表达差异;B:CircRNA EZH2在前列腺癌患者中的生存曲线;C:circRNA EZH2在前列腺癌LNCaP细胞和正常前列腺上皮RWPE1细胞中的表达。*** P < 0.001。

    Figure  1.  circRNA EZH2 in prostate cancer

    图  2  qRT-PCR检测LNCaP细胞总RNA经RNase R处理后circRNA EZH2及线性EZH2的表达

    ***P < 0.001。

    Figure  2.  qRT-PCR detected the expression of circRNA EZH2 and linear EZH2 after RNase treatment total RNA from LNCaP cells

    图  3  CircRNA EZH2对前列腺癌细胞增殖和迁移的影响

    A:circRNA EZH2的RT-qPCR结果分析图;B:CCK-8实验结果;D:LNCaP细胞生长情况图;C和E:LNCaP细胞划痕实验及其结果分析。****P < 0.0001。

    Figure  3.  The effects of circRNA EZH2 on proliferation and migration of prostate cancer cells

    图  4  CircRNA EZH2靶向miR-30c-5p

    A:circRNA EZH2和miR-30c-5p的配对序列;B:双荧光素酶报告基因检测WT/MUT-circRNA EZH2插入的报告基因和miR-30c-5p mimic及其阴性对照共转染LNCaP细胞后的荧光素酶活性;C:RT-qPCR实验检测miR-30c-5p抑制剂的干扰效果;D:miR-30c-5p的RT-qPCR结果分析;E:circRNA EZH2的RT-qPCR结果分析。**P < 0.01;***P < 0.001;****P < 0.0001。

    Figure  4.  CircRNA EZH2 targeted miR-30c-5p

    图  5  CircRNA EZH2调控miR-30c-5p轴对前列腺癌细胞增殖和迁移的影响

    A:CCK-8实验结果;B:LNCaP细胞生长情况图; C和D:LNCaP细胞划痕实验及其结果分析。*P < 0.05;****P < 0.0001。

    Figure  5.  CircRNA EZH2 regulated cell proliferation and migration via miR-30c-5p in prostate cancer cell

    图  6  CircRNA EZH2对JAK1和PI3K的调控

    A:JAK1的RT-qPCR结果分析;B-D:JAK1和PI3K的western blot及其结果分析。*P < 0.05;**P < 0.01;***P < 0.001;****P < 0.0001。

    Figure  6.  CircRNA EZH2 regulated JAK1 and PI3K

    表  1  RT-qPCR所需引物序列

    Table  1.   Primer sequences

    基因引物序列(5′-3′)
    circRNA EZH2 Forward Primer:GGACCACAGTGTTACCAGCAT
    Reversed Primer:GTGGGGTCTTTATCCGCTCAG
    miR-30c-5p Forward Primer:GCAGTGTAAACATCCTACACTCT
    Reversed Primer:TCCAGTTTTTTTTTTTTTTTGCTGA
    JAK1 Forward Primer:ATGTCCTTGTTGAGAGTGA
    Reversed Primer:CATCCTTGACGGTGTAATAC
    GAPDH Forward Primer:TGTGGGCATCAATGGATTTGG
    Reversed Primer:ACACCATGTATTCCGGGTCAAT
    U6 Forward Primer:GCTTCGGCAGCACATATACTAAAAT
    Reversed Primer:CGCTTCACGAATTTGCGTGTCAT
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  • [1] Rebello R J,Oing C,Knudsen K E,et al. Prostate cancer[J]. Nat Rev Dis Primers,2021,7(1):9.
    [2] Swami U,McFarland T R,Nussenzveig R,et al. Advanced prostate cancer:Treatment advances and future directions[J]. Trends Cancer,2020,6(8):702-715.
    [3] Rebbeck,T R. Prostate cancer genetics:Variation by race,ethnicity,and geography[J]. Semin Radiat Oncol,2017,27(1):3-10.
    [4] Wang C,Tan S,Li J,et al. CircRNAs in lung cancer - Biogenesis,function and clinical implication[J]. Cancer Lett,2020,492:106-115.
    [5] Liu Y,Chen S,Zong Z H,et al. CircRNA WHSC1 targets the miR-646/NPM1 pathway to promote the development of endometrial cancer[J]. J Cell Mol Med,2020,24(12):6898-6907.
    [6] Huang,G,Liang M,Liu H,et al. CircRNA hsa_circRNA_104348 promotes hepatocellular carcinoma progression through modulating miR-187-3p/RTKN2 axis and activating Wnt/β-catenin pathway[J]. Cell Death Dis,2020,11(12):1065.
    [7] Wen J,Li X,Ding Y,et al. Lidocaine inhibits glioma cell proliferation,migration and invasion by modulating the circEZH2/miR-181b-5p pathway[J]. Neuroreport,2021,32(1):52-60.
    [8] Zhou Y,Shi H,Du Y,et al. lncRNA DLEU2 modulates cell proliferation and invasion of non-small cell lung cancer by regulating miR-30c-5p/SOX9 axis[J]. Aging (Albany NY),2019,11(18):7386-7401.
    [9] Herichova I,Reis R,Hasakova K,et al. Downregulation of miR-30c-5p expression in colorectal cancer tissue is sex-dependent[J]. Physiol Res,2020,69(Suppl 3):S479-S487.
    [10] Tanaka T,Okada R,Hozaka Y,et al. Molecular pathogenesis of pancreatic ductal adenocarcinoma:impact of miR-30c-5p and miR-30c-2-3p regulation on oncogenic genes[J]. Cancers (Basel),2020,12(10):2731.
    [11] Liu J,Lichtenberg T,Hoadley K A,et al. An integrated TCGA Pan-Cancer clinical data resource to drive high-quality survival outcome analytics[J]. Cell,2018,173(2):400-416.
    [12] Chen B,Lai J,Dai D,et al. JAK1 as a prognostic marker and its correlation with immune infiltrates in breast cancer[J]. Aging (Albany NY),2019,11(23):11124-11135.
    [13] Ma X,Zhao X,Zhang Z,et al. Differentially expressed non-coding RNAs induced by transmissible gastroenteritis virus potentially regulate inflammation and NF-κB pathway in porcine intestinal epithelial cell line[J]. BMC Genomics,2018,19(1):747.
    [14] Gao F,Du Y,Zhang Y,et al. Circ-EZH2 knockdown reverses DDAH1 and CBX3-mediated cell growth and invasion in glioma through miR-1265 sponge activity[J]. Gene,2020,726:144196.
    [15] Yang J,Nie J,Ma X,et al. Targeting PI3K in cancer:mechanisms and advances in clinical trials[J]. Mol Cancer,2019,18(1):26.
    [16] Taylor B S,Schultz N,Hieronymus H,et al. Integrative genomic profiling of human prostate cancer[J]. Cancer Cell,2010,18(1):11-22.
    [17] Tang Y,Pan J,Huang S,et al. Downregulation of miR-133a-3p promotes prostate cancer bone metastasis via activating PI3K/AKT signaling[J]. J Exp Clin Cancer Res,2018,37(1):160.
    [18] Liu J M,Yu C P,Chuang H C,et al. Androgen deprivation therapy for prostate cancer and the risk of autoimmune diseases[J]. Prostate Cancer Prostatic Dis,2019,22(3):475-482.
    [19] Edlind M P,Hsieh A C. PI3K-AKT-mTOR signaling in prostate cancer progression and androgen deprivation therapy resistance[J]. Asian J Androl,2014,16(3):378-386.
  • [1] 周锟, 刘亚丽, 李自良, 钱丽萍, 冉丽权, 任娅岚.  miR-34a对人牙周膜干细胞增殖和成骨分化的影响, 昆明医科大学学报.
    [2] 翟瑜如, 白艳, 李云云.  FGF2通过PERK/EIF2α/ATF4信号通路调节缺氧诱导的巩膜成纤维细胞增殖和胶原代谢, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20241004
    [3] 王玲, 秦祥川, 李金秋, 阿仙姑·哈斯木.  CD147通过AIM2炎症小体介导宫颈癌细胞焦亡和增殖, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20240103
    [4] 秦祥川, 李金秋, 黄晓婧, 忽吐比丁·库尔班, 阿仙姑·哈斯木.  HPV E6通过Rap1信号通路影响宫颈癌细胞增殖、侵袭及迁移的研究, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20240902
    [5] 胡滔, 吴怡, 耿文达, 章意坚, 贺瑄, 李珊珊, 习杨彦彬, 邓丽玲.  自主运动训练通过调节Caspase-3的活性抑制人BRCA1突变乳腺癌的增殖与生长, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20230419
    [6] 张晔琳, 马丽娅, 彭旭晖, 杨禾丰, 佘睿.  hsa-let-7a-5p调控牙周膜干细胞增殖及凋亡, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20231028
    [7] 张梁, 王保全, 雷喜锋, 王旭, 柯阳, 张玮.  miR-29c-3p/IGF1分子轴对肝星状细胞活化,增殖和凋亡的作用机制, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20230926
    [8] 刘邦卿, 李剑锋, 刘晓辉, 张劲男, 梁金屏.  miR-196b靶向ERG促进肺腺癌的增殖和迁移, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20231023
    [9] 王保全, 张伟, 田园, 雷喜锋, 王旭.  miR-142-5p通过CCND1调控胆囊癌细胞的增殖和转移, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20220223
    [10] 张玮, 王保全, 雷喜锋, 王旭, 张梁.  miR-125b-5p调控HK2抑制胆囊癌细胞增殖和糖酵解, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20221206
    [11] 廖周俊, 杨少华, 刘立鑫, 胡晟, 陈轶晖, 康强, 张小文.  AK4对肝内胆管癌细胞HUCCT1增殖、迁移的影响, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20220611
    [12] 杨兰, 贾霄, 姜奕彤, 崔琪, 刘光赐, 何颖红.  UBE2C基因沉默表达对人胃癌AGS细胞增殖和迁移的影响, 昆明医科大学学报. doi: 10.12259/j.issn.2095-610X.S20210504
    [13] 庞月文, 巩会杰, 王玲, 时京, 段珺耀, 冯营营, 闫永吉.  老鹳草素对去势抵抗性前列腺癌细胞增殖与迁移能力的影响, 昆明医科大学学报.
    [14] 赵斌, 李瑞乾, 张国颖, 雷永虹, 王启林, 刘志敏.  过表达miR-4328抑制前列腺癌细胞的增殖、迁移和上皮间质转化, 昆明医科大学学报.
    [15] 贾楠楠.  Gnaq对SH-SY5Y细胞增殖的作用及机制, 昆明医科大学学报.
    [16] 刘立鑫.  二甲双胍对肝癌细胞HCCLM3生物学行为的影响, 昆明医科大学学报.
    [17] 王海峰.  上调microRNA-101沉默EZH2基因表达对人膀胱癌T24细胞系增殖和凋亡的影响, 昆明医科大学学报.
    [18] 孙健玮.  PTEN基因与前列腺癌, 昆明医科大学学报.
    [19] 刘鹏杰.  内分泌治疗在89 SrCl2治疗前列腺癌骨转移中的作用, 昆明医科大学学报.
    [20] 刘佳鑫.  SDF-1/CXCR4在恶性胶质瘤细胞体外增殖、迁移及侵袭中的作用, 昆明医科大学学报.
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出版历程
  • 收稿日期:  2022-04-27
  • 网络出版日期:  2022-06-24
  • 刊出日期:  2022-07-14

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